Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Забор образцов одиночных клеток с помощью микроманипуляций: метод выделения одиночных клеток из суспензии раковых клеток

3.5K просмотров

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Chen S. et al. Предварительное обогащение клеток-мишеней и амплификация всего генома для последующей характеристики одной клетки. J. Vis. Exp. (2018)

В этом видео описывается техника выделения отдельных клеток из пула целевых клеток для проведения последующего анализа. В этом методе используется микроманипулятор, установленный на микроскопе, для высокоточной изоляции одной клетки-мишени.

Протокол

1. Выборка одиночных клеток

  1. Микроманипуляции
    ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы обеспечить последующее применение, такое как анализ всего генома (WGA), изолированные одиночные клетки будут добавлены к 2 мкл мастер-смеси для лизиса клеток. Приготовьте мастер-смесь в соответствии с количеством обрабатываемых ячеек. Рассчитайте дополнительные объемы потерь из-за пипетирования и поместите мастер-смесь для лизиса клеток на лед.
    1. Готовим мастер-смесь для лизиса клеток (компоненты набора WGA, Таблицы материалов и реактивов). Вкратце смешайте 2,0 мкл реакционного буфера, 1,3 мкл октилфеноксиэтоксиэтанола (10% раствор), 1,3 мкл 4-(1,1,3,3-тетраметилбутил) фенил-полиэтиленгликоля (10% раствор), 2,6 мкл раствора протеиназы К и 12,8 мкл воды, не содержащей РНКазы/ДНКазы, чтобы получить мастер-смесь для 10 образцов (общий объем 20 мкл).<бр/> заметка: Для большего количества образцов соответственно увеличьте объемы.      
    2. С помощью смазочного карандаша нарисуйте область, удерживающую суспензию ячейки на месте. Отрегулируйте площадь и объем, если плотность ячеек слишком высока (т.е. отметьте большую площадь на предметном стекле, загрузите 1x PBS и аликвоту клеточной суспензии).
    3. Пипеткой нанесите всю целевую клеточную суспензию на предметное стекло.
    4. Перенесите предметное стекло в микроскоп, оснащенный микроманипулятором. Дайте ячейкам отстояться в течение 5 минут.
    5. Подготовьте 0,2 мл ПЦР-пробирок с 2,0 мкл мастер-смеси для лизиса клеток (приготовленной на шаге 1.1.1.) и храните ее на льду.
    6. Соберите отдельные клетки в 1 мкл 1x PBS с помощью микроманипулятора и перенесите клетки в пробирку, содержащую мастер-смесь для лизиса клеток.
      заметка: Для переноса микрообработанных клеток в буфер для лизиса клеток, поместите капилляр непосредственно в 2 мкл лизисного раствора и выбрасывайте до тех пор, пока не появятся пузырьки.
    7. Кратковременно уменьшите температуру образца при 2000 x g в течение 3 с с помощью настольной микрофуги, чтобы собрать всю жидкость на дне пробирки. Поместите образцы на лед.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Фосфатно-солевой буфер (1x PBS) Thermo Fisher Scientific 10010-015
Вакуумные трубки ЭДТА (или Na-гепарин) БД366450 (или 366480)Используется в качестве реакционной пробирки для захвата клеток мишеней ex vivo
Пастеровские пипетки 150 мм ВолакД810Используется для малообъемного нанесения ячеек в C&R
Ручка для смазки ДакоС2002Используется на стеклянных предметных стеклах для удержания подвеса ячеек на месте
Axiovert M200 с микроманипулятором MMJ и CellTram vario Zeiss/EppendorfИспользуйте микроманипуляции под рукой
Микрокапилляры (диаметр 25 мкм), CustomTip тип I Эппендорф930001201Используется для микроманипуляций с клетками
0,2 мл ПЦР-пробирок Биозим710920

Теги

Метод микроманипуляцииизоляция единичных клетокнаконечник микрокапилляраподготовка предметного стеклапоследующий анализлизис клетокизоляция живых клетокмикроманипуляционный микроскоп