Методическая статья

Выделение кишечных крипт: метод выделения целых крипт из тонкой кишки мышиной модели

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Schewe, M. et al. Анализ восстановления органоидов (ORA) для функционального анализа кишечных стволовых и нишевых клеток. J. Vis. Exp. (2017)

В этом видео мы демонстрируем метод выделения целых крипт из тонкой кишки мыши. Изолированные целые крипты могут быть использованы для размножения долгоживущих и самообновляющихся 3D-органоидов in vitro.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Приготовление инструментов, питательных сред и блюд

  1. Автоклавируйте один набор кишечных ножниц, обычные ножницы и щипцы в стерильную емкость.
  2. Поместите чашку с плоским дном на 96 лунок в инкубатор при температуре 37 °C.
  3. Приготовьте 10 мл полной питательной среды с реагентами, перечисленными в Таблице материалов.
  4. Инкубируйте всю среду при температуре 37 °C на водяной бане.
  5. Восстановите восстановленную базальную мембрану, поместив ее в ведро со льдом. Восстановленная базальная мембрана становится жидкой при 4 °C .
  6. Заполните четыре чашки Петри холодным фосфатно-солевым буфером или PBS (4 °C).

2. Выделение крипт тонкого кишечника

  1. Жертвоприношение путем ингаляции CO2 мыши Lgr5-eGFP-IRES-CreERt2 на фоне C57BL6/J. Рассеките брюшину в продольном направлении ножницами.
  2. Зажмите живот щипцами и разрежьте его поперечно пополам.
  3. С этого момента с помощью ножниц для кишечника вытащите кишечник и поместите его в чашку Петри, содержащую PBS.
    заметка: Ножницы для кишечника имеют острый и тупой кончик. Тупой кончик этих ножниц предназначен для того, чтобы не повредить архитектуру крипта-ворсин при вскрытии кишечника.
  4. Начните с того, что поместите тупой кончик в живот и осторожно протолкните его через привратник. Продолжайте, разрезая ножницами и вытягивая щипцами.
  5. Как только весь тонкий кишечник будет открыт в продольном направлении, промойте его в холодном PBS, удерживая щипцами, и аккуратно промойте в растворе PBS U-образными движениями.
  6. После того, как все остатки стула будут очищены, приступайте к расплющиванию кишечника на разделочной доске просветной стороной вверх. Просветную сторону легко узнать по отсутствию кровеносных сосудов и по ее бледному виду по сравнению с наружной частью.
  7. С помощью предметного стекла аккуратно удалите ворсинки, соскоблив сплющенный кишечник. Проделайте этот шаг дважды по всей длине ткани.
  8. Разрежьте тонкую кишку стерильным хирургическим лезвием на кусочки размером 2–5 мм.
  9. Поместите фрагменты тонкой кишки в пробирку объемом 50 мл, содержащую 10 мл ледяного PBS.
  10. Очистите фрагменты ткани, удалив оставшиеся загрязнения, пипетируя их вверх и вниз в PBS. Выбросьте надосадочную жидкость и повторяйте этот шаг до тех пор, пока PBS не станет полностью чистым.
  11. Добавьте 15 мл холодного PBS, чтобы довести общий итоговый объем PBS до 25 мл. Добавьте 2 мМ этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА) и инкубируйте в течение 45 минут на ролике при 4 °C.
  12. Откажитесь от PBS/EDTA.
  13. Добавьте 10 мл PBS и отделите крипты, резко пипетируя фрагменты ткани вверх и вниз (не менее трех раз). Соберите надосадочную жидкость.
  14. Повторите шаг 2.13 четыре раза. Добавьте питательную среду до конечного объема 50 мл.
  15. Гранулируйте клетки центрифугированием (300 x g в течение 5 минут).
  16. Повторно суспендируйте гранулу в 10 мл питательной среды и гранулируйте крипты центрифугированием (80 x g в течение 3 минут).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Усовершенствованный DMEM/F-12 Thermo Fisher Scientific 12634-010
Пенициллин/стрептомицин Thermo Fisher Scientific15140122Конечная концентрация: 1%
Глутамакс Thermo Fisher Scientific35050061Конечная концентрация: 10 мМ
Хепес Thermo Fisher Scientific15630080Конечная концентрация: 10 мМ
Рекомбинантная мышиная EGF Thermo Fisher ScientificPMG8041Конечная концентрация: 50 нг/мл
Рекомбинантный мышиный Noggin Пепротех250-38Конечная концентрация: 100 нг/мл
У27632 сигмаУ0503Конечная концентрация: 10 мкМ
Зубчатый-1 Биография AnaspecАС-61298Конечная концентрация: 1 μМ
Рекомбинантный мышиный R-спондин Системы НИОКР3474-РС-050Конечная концентрация: 1 мг/мл
B6.129P2-Lgr5tm1(cre/ERT2)Cle/JЛаборатории Джексона8875
Тубы с низким связываниемЭппендорфZ666548-250 шт.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Intestinal Crypts IsolationSmall Intestine CryptsMurine Model CryptsVilli Removal TechniqueEDTA Incubation MethodCrypt Pellet CentrifugationTissue Fragmentation ProtocolPBS Washing StepsCrypt Detachment PipettingCulture Medium Supplementation

Похожие статьи