Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.
1. Выделение и культивирование первичных клеток
- Усыпить 6-недельного самца или самку B6; 129-Gt(ROSA)26Sortm1(CAG-cas9*,-EGFP)Fezh/J путем удушения CO₂ или любым другим протоколом, одобренным IACUC.
заметка: У этих мышей с выбиванием CRISPR/Cas9 Cre рекомбиназная экспрессия эндонуклеазы cas9 и EGFP управляется промотором CAG. Предшествующая последовательность Lox-Stop-Lox (LSL), присутствующая в геноме этих мышей, предотвращает экспрессию Cas9 и EGFP в отсутствие рекомбиназы Cre. При использовании в сочетании с одиночными направляющими РНК (sgRNAs) и источником Cre они позволяют редактировать один или несколько мышиных генов in vivo или ex vivo.
- Рассеките язык у усыпленных мышей с помощью хирургических ножниц.
- Вручную диссоциируйте ткань, измельчив ткань языка на очень мелкие фрагменты с помощью скальпеля. Соберите фрагменты ткани в пробирку объемом 15 мл, содержащую 4,5 мл простой среды RPMI (без сыворотки).
- Добавьте тройную смесь ферментов (200 μл) (рецепт см. в Таблице 1) к фрагментам ткани.
- Инкубируйте тканевую и ферментную смесь при температуре 37 °C в течение 30 минут и постукивая по пробирке каждые 10 минут для усиления ферментативной диссоциации ткани.
- Добавьте 5% фетальную бычью сыворотку (FBS), содержащую HBSS/PBS, в тканевую и ферментную смесь, чтобы остановить действие фермента.
- Отфильтруйте вышеуказанную клеточную суспензию через стерильную нейлоновую сетку толщиной 70 мкм, чтобы отделить диспергированные клетки от более крупных фрагментов тканей.
- Промыть отфильтрованную суспензию клеток центрифугированием в течение 300 x g в течение 5 минут в HBSS/PBS при RT.
- Повторно суспендируйте гранулу в питательной среде (10% FBS в RPMI/DMEM) и выращивайте в 60-миллиметровых культуральных чашках до образования отдельных колоний клеток.
- Агрегаты культуральных клеток удерживаются в верхней части фильтра в культуральной чашке диаметром 60 мм, содержащей 3 мл готовой среды (10% FBS в RPMI/DMEM) до образования клеточных колоний.
- Микроскопически исследуют первичные клетки на наличие контаминации фибробластов через 1 неделю культивирования. Обработать первичные клетки, полученные из агрегатов и клеточных суспензий, 0,25 трипсина 0,02% раствором ЭДТА при 37 °С в течение 1 мин для удаления фибробластов><.
заметка: Обычно первичная культура из клеточных агрегатов дает больше колоний по сравнению с одноклеточными суспензиями. Клетки из этих колоний обеспечивают лучшую эффективность трансдукции с помощью AAV-трансдукции.
| 10X Тройной ферментный стоковый раствор: | |
| Коллагеназа | 1 г конс. [10 мг/мл] |
| Гиалуронидаза | 100 мг [1 мг/мл] |
| ДНКаза | 20 000 единиц конечного конс. [200 мг/мл] |
| ПБС 1Х | Составляйте до 100 мл |
Таблица 1: Рецепт буфера, использованного в данном исследовании