Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Извлечение DRG из позвоночника крысы: процедура извлечения ганглия дорсального корешка из позвоночника модели крысы

13.6K просмотров

⸱

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Schmidt, L. B. et al. Модель хориоаллантоисной мембраны цыплят in vivo для оценки периневральной инвазии при раке головы и шеи. J. Vis. Exp. (2019)

В этом видео мы демонстрируем извлечение ганглия дорсального корешка или DRG из собранного позвоночника крысы для последующих применений.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Сбор урожая и подготовка DRG (ориентировочное время: 2 часа, день 8)

ПРИМЕЧАНИЕ: Эксперименты с мышами и крысами требуют одобрения IACUC. В некоторых странах употребление куриных яиц также требует одобрения.

  1. Возьмите шести-семинедельных крыс Sprague Dawley (весом ~200 г) для извлечения DRG.
    заметка: Одна крыса должна дать ~40 шейных и грудных DRG. DRG мыши также интегрируется в CAM; Однако условия содержания для этого вида нужно оптимизировать самостоятельно.
  2. В ламинарном проточном шкафу соберите DRG из шейного и грудного отделов в соответствии с протоколом экстракции DRG у мышей, опубликованным в других источниках. На рисунке 1 приведена информация о том, как собирать DRG.
    1. Усыпьте крысу путем пункции сердца после введения кетамина/ксилазина, вводимого внутрибрюшинно. Очистите кожу крысы 70% этанолом и удалите позвоночник крысы ножницами. Не выполняйте вывих шейки матки, так как это может повредить шейные DRG.
    2. Разделите шейный, грудной и поясничный отделы с помощью одних и тех же ножниц, следуя схематическому анатомическому изображению и грубым изображениям, представленным на рисунке 1A-D. Поместите срезы позвоночника в 10-сантиметровую чашку для культивирования с 1X PBS, чтобы ткани оставались влажными.
    3. С помощью деликатных ножниц для костей раскройте позвоночные кости в дорсальном и вентральном направлениях, разделив позвоночник на две боковые половины (Рисунок 1E-F). Поместите срезы тканей в чистую 10-сантиметровую посуду со свежим 1X PBS.
    4. С помощью щипцов аккуратно отделите спинной мозг от позвоночных костей, чтобы визуализировать DRG (Рисунок 1G).
    5. С помощью тонких щипцов, проведенных под каждым DRG, захватите его и вытащите из костной полости, в которой он застрял. Не держите DRG напрямую, так как это приведет к повреждению тканей. Не обрезайте пучки аксонов у DRG (рисунок 1H).
      заметка: Избегайте использования поясничных DRG, так как они имеют меньшую интеграцию в CAM. Для определения местоположения области DRG следуйте схематическому рисунку и общим анатомическим изображениям на рисунке 1A-D.
  3. Сразу после сбора урожая поместите каждую DRG в питательную среду DMEM, обогащенную 2% пенициллином/стрептомицином (Pen/Strep) и 10% термоинактивированной фетальной сывороткой крупного рогатого скота (FBS), чтобы предотвратить бактериальное загрязнение DRG. Сгруппируйте все DRG в одну и ту же 6-сантиметровую культуральную чашку с 4 мл питательной среды.
  4. После сбора всех DRG перенесите их в новую культуральную чашку с питательной средой DMEM, дополненной 2% Pen/Strep плюс 10% FBS и содержащей 1,25 мкг/мл красного флуоресцентного красителя. Инкубировать в течение 1 ч в инкубаторе для клеточных культур.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Экстракция DRG на 8 день. А. Схема крысы, иллюстрирующая анатомическое расположение позвоночника. Б. Диаграмма конфигурации позвонков крысы с отображением различных частей тела; Зеленый для шейного отдела, темно-синий для грудного, оранжевый для поясничного отдела и голубой для крестцовых позвонков. К-Д. Вентральная сторона поз...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
PBS (1x) pH 7,4Gibco# 10010-023Фосфатно-солевой буфер
Крысы Спрэг Доули (самки)Лаборатории Чарльза РивераКод штамма: 0016-7 недель (вес 190-210 г)
Тонкие щипцы Dumont #5Инструменты для точных научных исследований (FST)# 11254-20Используется для уборки урожая DRG
Очень тонкие щипцы Грефе, изогнутыеИнструменты для точных научных исследований (FST)# 11151-10Используется для пересадки DRG на CAM на 8-й день и для забора ткани CAM на 17-й день
Щипцы Грефе сверхтонкие, прямыеИнструменты для точных научных исследований (FST)# 11150-10Используется для пересадки DRG на CAM на 8-й день и для забора ткани CAM на 17-й день
DMEM (1шт.)Gibco# 11965-092Модифицированный Eagle Medium от Dulbeecco
Флуоресцентный краситель CellTracker Red CMTPXТехнологии Life# К34552Восстановите 50 г в 40 л ДМСО и храните при -20 °C. Используйте 1 мкл стокового раствора/мл питательной среды
Ручка/стрептококкGibco# 15140-12210 000 ЕД/мл пеницилина, 10 000 мкг/мл стрептомицина
Привет, FBSGibco# 10082-147Термоинактивированная фетальная сыворотка крупного рогатого скота
ДмсоБиореагенты Фишера# ВР231-100Диметилсульфоксид

Теги

Диссекция позвоночника крысыизоляция спинного мозгагидратация тканейразделение тел позвонковизвлечение с помощью тонких пинцетовфосфатно-солевой буфер (PBS)культуральная среда DMEMдобавка пенициллина и стрептомицинафетальная бычья сыворотка