Method Article

Выделение внеклеточных везикул, происходящих из микроглии, на основе SEC: метод выделения внеклеточных везикул из кондиционированных питательных сред микроглии

April 30th, 2023

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Lemaire, Q. et al. Характеристика внеклеточных везикул, полученных из иммунных клеток, и изучение функционального влияния на клеточную среду. J. Vis. Exp. (2020)

Это видео описывает метод, основанный на эксклюзионной хроматографии (SEC) для выделения внеклеточных везикул или EV, полученных из иммунных клеток мозга - микроглии. ВВ действуют как молекулярный груз для доставки медиаторов, которые регулируют иммунный ответ. Таким образом, выделенные ВВ могут быть использованы в качестве модели in vitro для изучения перекрестных помех микроглии и нейронов во время иммунного ответа нейронов.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Первичная культура микроглии/макрофагов

  1. Первичная культура микроглии
    1. Культивирование коммерческой первичной микроглии крыс (2 x 106 клеток) (см. Таблицу материалов) в модифицированной среде Dulbecco Eagle (DMEM) с добавлением 10% сыворотки без экзосом, 100 ЕД/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина и 9,0 г/л глюкозы при 37 °C и 5%CO2.
    2. Соберите кондиционированную среду после 48 ч посева и приступайте к изоляции ВВ.
  2. Первичная культура макрофагов
    1. Культивировать первичные макрофаги коммерческих крыс (1 x 106 клеток) в среде, предоставленной производителем (см. Таблицу материалов) при 37 °C и 5%CO2, с сывороткой, не содержащей экзосом.
    2. Соберите кондиционированную среду после 24-часового посева и приступайте к изоляции ВВ.

2. Изоляция электромобилей

  1. Предварительная изоляция электромобилей от кондиционированной среды
    1. Переложите кондиционированную питательную среду из культур микроглии или макрофагов (шаги 1.1.2 или 1.2.2) в коническую пробирку.
    2. Центрифугируйте при давлении 1 200 x g в течение 10 минут при комнатной температуре (RT) для гранулирования ячеек.
    3. Переложите надосадочную жидкость в новую коническую трубку. Центрифугируйте при 1 200 x g в течение 20 мин при RT для устранения апоптотических тел.
    4. Перенесите надосадочную жидкость в поликарбонатную трубку объемом 10,4 мл и перенесите трубку в ротор 70,1 Ti. Ультрацентрифуга при 100 000 x g в течение 90 минут при 4 °C для гранулирования электромобилей.
    5. Выбросьте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте гранулы, содержащие EV, в 200 мкл фильтрованного фосфатного буферного раствора (PBS) 0,20 мкм.
  2. Изоляция электромобилей
    1. Подготовка отечественной колонки эксклюзионной хроматографии (СЭК)
      1. Опорожните стеклянную хроматографическую колонку (длина: 26 см; диаметр: 0,6 см) (см. Таблицу материалов), вымойте и простерилизуйте ее.
      2. Поместите фильтр 60 μм в нижнюю часть колонки.
      3. Уложите колонну с помощью сшитой фильтрационной матрицы из агарозного геля, чтобы создать неподвижную фазу диаметром 0,6 см и высотой 20 см.
      4. Промойте фазу 50 мл фильтрованного PBS 0,20 мкм. Хранить при температуре 4 °C, чтобы при необходимости использовать позже.
    2. Поместите ресуспендированную гранулу EV на вершину неподвижной фазы колонны SEC.
    3. Соберите 20 последовательных фракций по 250 мкл, продолжая добавлять 0,20 мкм отфильтрованного PBS в верхнюю часть неподвижной фазы, чтобы предотвратить высыхание колонны. При необходимости хранить фракции при температуре -20 °C.
      заметка: Более длительное хранение более чем на одну неделю может быть выполнено при температуре -80 °C для сохранения целостности EV для молекулярного анализа.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Среда для культивирования макрофагов и микроглии крысПрименение ячеекР620К-100Клеточный оргин: нормальный здоровый Rat
костный мозг
Первичная микроглия крысЛонзаРГ535
Сефароза CL-2BGE Healthcare17014001
ультрацентрифуга Бекман Коултер А95765
Ротор ультрацентрифуги 70.1 Ti Бекман Коултер 342184
глюкоза Сигма-Олдрич Г8769
Фосфатный буферный раствор Инвитроген 14190094Без кальция, без магния
Поликарбонатные центрифужные пробиркиБекман Коултер 355651
Пенициллин-стрептомицин Gibco 15140-122
Экзо-ФБС Озим ЭКЗО-ФБС-50А-1 Истощенный экзосомами FBS
DMEM Gibco 41966029
центрифуга Эппендорф 5804000010
CO2-инкубаторТермоФишер
pluriStrainer M/ 60 μм pluriSelect 43-50060
Колонна MonoP FPLC GE Healthcare Больше не доступно

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Extracellular VesiclesMicroglia EVsSize Exclusion ChromatographyEV IsolationMicroglia Conditioned MediaUltracentrifugationGel FiltrationEV ElutionProtein AggregatesEV Fractions

Related Articles