Методическая статья

Очистка субпопуляций внеклеточных везикул: методика очистки субпопуляций внеклеточных везикул с помощью ультрацентрифугирования с градиентом плотности

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Urwitz, S. N. et al. Извлечение внеклеточных везикул из цельной ткани. J. Vis. Exp. (2019)

Это видео демонстрирует метод очистки на основе ультрацентрифугирования градиента плотности для выделения субпопуляций внеклеточных везикул, пригодных для характерных исследований.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Градиентная очистка плотности

  1. Добавьте 1,5 мл 60% йодиксанола (стоковый раствор в воде) в 1,5 мл сахарозы/трис-буфера, содержащего EV, чтобы получить окончательный раствор, содержащий 30% йодиксанола. Проведите пипеткой вверх и вниз несколько раз, чтобы тщательно перемешать раствор.
    заметка: Будьте осторожны, чтобы не потерять раствор в наконечнике пипетки, так как высокая концентрация йодиксанола довольно вязка.
  2. Перенесите 30% йодиксаноловый буферный раствор, содержащий EV, на дно ультрацентрифугирующей пробирки объемом 5,5 мл.
  3. Приготовьте не менее 1,5 мл 20% и 10% растворов йодиксанола на образец в сверхчистой воде из исходного раствора 60% йодиксанола.
  4. Отмерьте 1,3 мл 20% йодиксанола и аккуратно нанесите поверх нижнего градиентного слоя с помощью шприца и иглы 18 G. Чтобы избежать смешивания слоев на границе раздела плотности, держите скос иглы в контакте с внутренней частью ультрацентрифугирующей трубки чуть выше мениска и добавляйте раствор по каплям.
  5. Слой 1,2 мл 10% раствора йодиксанола поверх 20% слоя йодиксанола с использованием той же методики, что и выше.
  6. Тщательно отбалансируйте и загрузите ультрацентрифужные пробирки в роторные ковши и центрифугуйте в ротор с качающимся ковшом при давлении 268 000 x g в течение 50 мин при 4 °C. Установите скорости ускорения и замедления центрифуги на минимальные значения, допустимые во избежание разрушения слоев плотности.
  7. Пометьте десять микроцентрифужных пробирок объемом 1,5 мл для каждого образца в соответствии с долями от 1 до 10 градиентов плотности. Фракция 1 обозначается как самая верхняя фракция, которая будет удалена первой, а фракция 10 — это нижняя фракция, которая будет удалена последней.
  8. После завершения градиентного ультрацентрифугирования аккуратно извлеките пробирки из ведер ротора и поместите в устойчивый держатель. Видимая полоса везикул часто будет видна в интересующей ее части. Пипеткой нанесите десять последовательных фракций по 490 мкл с вершины градиента в соответствующие пробирки. На дне трубки останется небольшое количество жидкости, которая, вероятно, содержит загрязняющие белки. При желании этот образец можно отбраковать или оставить в качестве фракции 11.
  9. Измерьте показатели преломления фракций с помощью рефрактометра. Это также может быть выполнено с помощью параллельного прогона контрольного градиента, если необходимо сохранить образец. Нанесите пипеткой 20–30 мкл каждой фракции, содержащей йодиксанол, на поверхность рефрактометра и оцените плотность, сравнив показатели преломления с известными плотностями йодиксанола.
    заметка: При необходимости фракции могут храниться в течение ночи в растворе, содержащем йодиксанол, прежде чем переходить к следующей стадии промывки ультрацентрифугированием.
  10. Переложите каждую фракцию в чистую ультрацентрифужную пробирку объемом 12 мл. Добавьте 5 мл 1x фосфатно-солевого буфера (PBS; 137 мМ NaCl, 2,7 мМ KCl, 10 мМ Na2HPO4, 2 мМ KH2PO4, pH 7,4) и перемешайте путем медленного пипетирования вверх и вниз><. ПРИМЕЧАНИЕ: PBS, добавляемый в образцы, должен не содержать частиц, что обеспечивается путем фильтрации стерильного PBS через фильтр 0,22 мкм и хранения при комнатной температуре во избежание осаждения солей.
  11. Добавьте еще 6 мл 1x PBS доверху и снова тщательно перемешайте.
  12. Ультрацентрифугирование пробирок при давлении 100 000 x g в течение 2 ч при 4 °C для повторного гранулирования мелких пузырьков. Сцедите надосадочную жидкость и просточите пробирки перед лизисом везикул для анализа белка или повторной суспензией ВВ для морфологического анализа.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Фильтр 0,45 мкмВВРNo 28145-505
Ультрацентрифужные пробирки объемом 12 млБекман Коултер331372
Ультрацентрифужные пробирки объемом 5,5 млБекман Коултер344057
Ротор ФА-45-6-30 Эппендорф5820715006
Ротор с качающимся ковшом MLS-50Бекман Коултер367280 (Английский
Настольная ультрацентрифуга Optima MAX-XP Бекман Коултер393315
Ультрацентрифуга Optima XE-100Бекман КоултерА94516
ОптипрепсигмаД155660% йодиксанол в стерильном водном растворе
Рефрактометр 30PX (рефрактометр)Mettler Toledo51324650
Ротор С-4-104Эппендорф5820759003
SW 41 Ti ротор с качающимся ковшомБекман КоултерНомер 333790 (Английский
Настольная центрифуга 5804RЭппендорф22623508
) )

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

PBS

Похожие статьи