Методическая статья

Мышиная модель метастазирования в мозг: метод создания мышиной модели метастазирования в мозг путем инъекции раковых клеток в сонную артерию

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Zhang, C. et al. Инъекция инъекций раковых клеток сонной артерии для создания мышиных моделей метастазов в мозг. J. vis. Exp. (2017)

Это видео демонстрирует создание мышиной модели метастазирования в мозг путем внутрикаротидного введения флуоресцентно меченых раковых клеток. Мышиная модель может быть использована для изучения эффектов новых методов лечения и лежащих в их основе физиологических механизмов.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Подготовка мышей к инъекции опухолевых клеток

  1. Обезболите мышь путем внутрибрюшинного (в/в) введения коктейля кетамин/ксилазин (кетамин 100 мг/кг, ксилазин 10 мг/кг).
  2. Подтвердите полную анестезию, ущипнув животное за ноги и наблюдайте за отсутствием реакции.
  3. Поместите мышь на стеклянную пластину (используется для литья белковых гелей) и закрепите резинками.
  4. При необходимости удалите волосы на шее, побрив или нанеся небольшое количество средства для эпиляции и вытерев волосы бумажным полотенцем.
    заметка: Если вы используете голых мышей, пропустите этот шаг, так как у них нет волос на теле.
  5. Очистите кожу шеи, применив повидон-йод и 70% спирт.
  6. Поместите мышь на столик для препарирования микроскопа
  7. Сделайте разрез на коже длиной ~1 см хирургическим скальпелем.
  8. Тупо рассеките мышцу зубчатыми щипцами, чтобы обнажить сонную артерию под ней.
  9. Отделите сонную артерию от соседнего блуждающего нерва с помощью хирургических щипцов.
  10. С помощью хирургических щипцов отделите немного ваты от ватного тампона, смочите и сформируйте ватный тампон меньшего размера. Поместите этот буферно увлажненный ватный тампон под сонную артерию предполагаемого места инъекции.
  11. Наложите шов дистальнее и проксимальнее ватного диска и завяжите свободные узлы. Затяните проксимальный узел, чтобы перекрыть приток крови к месту инъекции.
  12. Приступайте к инъекции раковых клеток, если сонная артерия на ватном шарике оказывается полностью под давлением свежей красной крови.

2. Инъекция раковых клеток в сонную артерию

  1. Сделайте вихрь и наберите в шприц 100 мкл раковых клеток.
  2. Под препарирующим микроскопом медленно введите иглу 31G (скосом вверх) в просвет сонной артерии, сидящей поверх ватного тампона.
  3. Медленно вводите клетки из шприца в сонную артерию. Успешную инъекцию можно наблюдать под микроскопом по изменению цвета близлежащих кровеносных сосудов и мускулатуры, когда буферные раковые клетки проталкиваются в кровоток.
  4. Когда инъекция всего объема будет завершена, осторожно поднимите дистальный отдел сонной артерии, чтобы предотвратить регургитацию.
  5. Быстро затяните дистальный узел, чтобы завершить процесс инъекции.
  6. После завершения инъекции затяните лигатуры и обрежьте излишки шелкового шва микроножницами под рассекающим микроскопом. Отодвиньте отделенную мышцу назад, чтобы покрыть место раны. Закройте кожу двумя скобами.

3. Хирургическое восстановление

  1. Переместите прооперированное животное на грелку для восстановления. Животным может потребоваться 30–60 минут, чтобы прийти в сознание. В то же время вводите бупренорфин (0,05 мг/кг) через подкожную инъекцию в качестве послеоперационной анальгезии.
    заметка: Анальгезия должна проводиться в соответствии с вашим местным протоколом, одобренным IACUC.
  2. Как только животные проснутся и вернутся к своему обычному поведению, верните мышей на их место обитания. Обеспечьте мышей гелевым кормом в течение нескольких дней после операции. Ведите хирургическую карту и храните ее в комнате.

4. Неинвазивная визуализация in vivo

  1. Для клеток, меченных люциферазными репортерными конструкциями, измерьте эффективность инъекции раковых клеток с помощью системы визуализации in vivo.
    заметка: Визуализация не проводится в день инъекции, чтобы избежать чрезмерного стресса для исследовательских животных.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Раствор кетамина гидрохлорида/ксилазина гидрохлоридаСигма-ОлдричК113
Штатный стереомикроскоп Leica M50ЛейкаМ50Микроскоп имеет модульную конструкцию и обладает широкими возможностями настройки в соответствии с конкретными требованиями к пространству
Хирургический одноразовый пашельИнтегра Милтекс4-410Для выполнения разрезов кожи
Тканевые щипцы - 1 x 2 зубаИнструменты для точной науки11021-12Для тупого рассечения мышц
Dumont #5 - Щипцы с зеркальным покрытиемИнструменты для точной науки11252-23Для отделения и подготовки сонной артерии к инъекции
Пружинные ножницыИнструменты для точной науки15025-10Для разрезания швов
Комплект зажимов EZСтоелтинг59020Для закрытия раны
Инсулиновый шприц BDБектон Дикинсон328438Для инъекций клеток
Система визуализации IVIS Spectrum in vivoПеркинЭлмер124262
гг. Кабель

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

GFP

Похожие статьи