Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Хирургическая имплантация системы телеметрического мониторинга температуры в модель мыши: хирургическая процедура по имплантации температурного телеметрического устройства для измерения температуры тела ядра мыши

4K просмотров

⸱

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Кинг, М. А. и др. Доклиническая модель теплового удара при физической нагрузке у мышей. J. Vis. Exp. (2021)

В этом видео мы описываем хирургическую процедуру по имплантации температурного телеметрического устройства в модель мыши для непрерывного измерения температуры ее тела.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными моделями, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE

1. Хирургическая имплантация телеметрической системы мониторинга температуры

  1. По прибытии от поставщика позвольте животным отдохнуть в виварии не менее 1 недели до операции, чтобы свести к минимуму стресс от транспортировки.
  2. Групповое размещение мышей (максимум 5 человек в клетке в соответствии с местными рекомендациями IACUC) до дня операции по имплантации температурного телеметрического устройства. Размещайте их в стандартных клетках размером 7,25 дюйма (Ш) x 11,75 дюйма (Д) x 5 дюймов (В) с подстилкой из кукурузных початков. Поддерживайте световой цикл на световом цикле 12 x 12 (вкл.: 7 утра; выключено: 7 вечера). Поддерживайте температуру в помещении на уровне 20–22 °C и относительную влажность (RH) на уровне 30–60%. Обеспечьте стандартную диету и воду в неограниченном количестве до протокола EHS.
    заметка: Обоснование индивидуального содержания заключается в том, чтобы избежать частых боевых травм у самцов мышей C57bl/6J и обеспечить широкие возможности для спонтанного бега колесом для каждой мыши.
  3. Для размещения телеметрических приборов необходимо обезболить мышь изофлураном (4%, 0,4–0,6 л/мин потока О2) в индукционной камере. Затем поместите мышь под непрерывную анестезию через носовой конус (1,5%, 0,6 л/мин).
  4. Используйте глазную смазку, например ветеринарную мазь, чтобы защитить глаза животного от повреждений или травм во время операции.
  5. Чтобы подготовить место операции, побрейте нижнюю часть живота с помощью небольших машинок для стрижки шерсти животных или используйте имеющееся в продаже средство для удаления волос. В течение этого времени введите первую дозу подкожного бупренорфина (0,1 мг/кг).
  6. Протрите область тремя полосками повидон-йода (или аналогичного бактерицидного скраба) с последующим полосканием 70% изопропиловым спиртом (или стерильным физиологическим раствором в зависимости от местных ветеринарных требований). Затем перенесите мышь в операционную область.
  7. Используйте клейкую простыню, чтобы изолировать место операции на мыши. Используя стерильные инструменты и асептическую технику, сделайте разрез ~1 см по средней линии вдоль белой линии, примерно в 0,5 см от реберного края. Затем отделите кожу от мышечного слоя и сделайте чуть меньший разрез на белой линии, стараясь не повредить кишечник или внутренние органы.
  8. Как только мышечный слой будет открыт, поместите стерильный телеметр (миниатюрный многоразовый радиотелеметрический прибор без батареек; 16,5 x 6,5 мм) во внутрибрюшинную полость перед каудальными артериями и венами и дорсально к органам пищеварения, чтобы он мог свободно плавать><. заметка: Все телеметры очищаются водой с мылом, тщательно промываются и стерилизуются газом с окисью этилена между использованиями. Если газовая стерилизация недоступна, для дезинфекции и стерилизации телеметров допускается погружение в стерилизационные растворы (в соответствии с рекомендациями производителя по разбавлению и времени погружения).
  9. Закройте брюшное отверстие стерильным рассасывающимся швом 5-0 и закройте кожу простым прерывистым швом с пролиновым швом 5-0.
    заметка: Разрешение телеметру плавать в брюшном отделе без привязки его к брюшной стенке (метод, рекомендованный производителем) было продемонстрировано успешным и предпочтительным для устранения избыточного напряжения брюшной стенки во время заживления. Кроме того, это никак не влияет на способность приемника получать сигнал от излучателя.
  10. Поместите мышь в чистую клетку, подложив под нее портативную грелку. Наблюдайте за мышью каждые 15 минут в течение первого часа восстановления после анестезии, а затем возвращайтесь в помещение для содержания животных.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
5-0 Ethilon нейлоновый шовный материал Черная мононитьЭтикон
Адгезивная хирургическая простыня с повидоном 12x18Jorgensen Labset
DR Instruments Medical Student Комплексный набор для вскрытия анатомииИнструменты DR
Источник питания EnergizerStarr Медико-биологические науки
G2 Emitter et al.Starr Медико-биологические науки
Паттерсон Ветеринарный изофлуранВетеринарный клиника Паттерсона
Platform receiver и др.Starr Медико-биологические науки
Научная экологическая камера модель 3911ТермоФорма
Прецизионные многодиапазонные программируемые источники питания постоянного тока BK модель 9201БК Прецизион

Больше статей

Температурная телеметриябрюшная полостьтелеметрический приемниксистема сбора данныханестезированная мышьпослеоперационный мониторинг