Методическая статья

Мышиная модель бактериального эндофтальмита: метод генерации бактериального эндофтальмита путем интравитреального введения бактериальной суспензии в глаз мыши

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Mursalin, M. H. et al., Интравитреальное введение и количественное определение параметров инфекции в мышиной модели бактериального эндофтальмита. J. Vis. Exp. (2021).

Это видео описывает метод создания модели мыши, которая имитирует бактериальный эндофтальмит - внутриглазную инфекцию, возникающую в результате бактериальной инвазии в стекловидное тело глаза - путем интравитреального введения бактериальной суспензии в глаз. Эта мышиная модель помогает изучить механизм заболевания и оценить методы его лечения.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Иглы для стерильного стекла

  1. Включите игольчатый съемник пипетки.
  2. Отрегулируйте ручку нагревателя до тех пор, пока на дисплее не появится 12,6.
  3. Откройте дверцу и вручную подайте капиллярную трубку объемом 5 мкл через верхний зажим и нить нагревателя, пока половина трубки не опустится ниже нити накала (рис. 1A).
  4. Убедитесь, что капиллярная трубка находится в V-образной канавке в верхнем зажиме. Затяните верхний зажим.
  5. Когда нижний зажим открыт, вручную отрегулируйте вертикальное скольжение вверх, пока нижний зажим не достигнет своего верхнего предела. Убедитесь, что трубка находится в V-образном пазу в нижнем зажиме. Затяните нижний зажим.
  6. Закройте дверцу и убедитесь, что горит индикатор «Готов». Нажмите кнопку «Пуск», чтобы запустить нагреватель и последовательность вытягивания (Рисунок 1B).
  7. Убедитесь, что нагреватель выключается автоматически после того, как тепло и сила тяжести раздвигают капиллярную трубку (Рисунок 1C), и предметное стекло движется вниз.
  8. Откройте дверь. Удерживая верхнюю часть капиллярной трубки, ослабьте верхний зажим. Извлеките верхнюю капиллярную трубку и отложите ее в сторону.
  9. Удерживайте капиллярную трубку в нижней горке и ослабьте нижний зажим. Извлеките нижнюю капиллярную трубку и отложите ее в сторону.
  10. Используйте станок для снятия фаски с микроэлектродами и шлифовальной пластиной из оксида алюминия 0,05 мкм для снятия фаски с вытянутой капиллярной трубки для создания инъекционных игл.
  11. Нанесите пипеткой достаточное количество воды на шлифовальную пластину, чтобы покрыть поверхность (Рисунок 1D).
  12. Включите фаску так, чтобы она начала вращаться со скоростью 60 оборотов в минуту. Поместите вытянутую капиллярную трубку в зажим для пипетки в V-образном пазу. Затяните зажим и отрегулируйте угол наклона зажима для пипетки на 30°.
  13. Отрегулируйте кончик заостренного края капиллярной трубки примерно на расстоянии двух третей от центра вращения шлифовальной пластины.
  14. Опустите зажатую капиллярную трубку, отрегулировав ручку грубого управления в верхней части манипулятора. Продолжайте опускать капиллярную трубку до тех пор, пока кончик капиллярной трубки не опустится ниже поверхности воды и не соприкоснется с абразивной поверхностью шлифовальной пластины.
  15. Следите за ходом снятия фаски с помощью микроскопа, установленного на беваллере. Через 5 минут отрегулируйте тонкий контроль, чтобы поднять стеклянную иглу с шлифовальной пластины.
  16. Снимите стеклянную иглу и поместите ее под 10-кратное увеличение, чтобы проверить кончик капиллярной трубки (рис. 1E, F).
  17. Чтобы убедиться в отсутствии засоров, вставьте стеклянную иглу в держатель для пипетки на шприце и нагнетайте воздух в пробирку объемом 1 мл с 99% этанолом. Если на кончике иглы образуются пузырьки воздуха, игла не имеет закупорок и может использоваться для микроинъекций. Этот процесс также обеспечивает стерильность стеклянных игл.
  18. Одна капиллярная трубка может вмещать до 5 мкл жидкости. Разметьте капиллярную трубку на 10 секций, чтобы рассчитать расстояния на игле для разметки для объемов 0,5 мкл. Отметьте шкалу с таким расстоянием, которое вмещает 0,5 мкл для будущего приготовления. Для иглы объемом 5 мкл расстояние 0,7 мм составляет 0,5 мкл (рис. 1G).

2. Интравитреальная инъекция мыши

  1. Выполняйте все процедуры, описанные в этом разделе, в условиях уровня биобезопасности 2.
  2. Подготовьте место проведения процедуры, положив на операционный стол медицинские пеленки.
  3. Включите микроинъектор и откройте газовый клапан на баллоне сжатого воздуха, прикрепленном к микроинжектору. Отрегулируйте регулятор бака до тех пор, пока подача газа не составит примерно 60 фунтов на квадратный дюйм.
  4. На микроинъекторе нажимайте Mode (Режим), пока на экране не появится надпись Balance. Нажмите Balance и поместите компьютерную мышь на операционный стол. Подсоедините держатель пипетки из нержавеющей стали к трубке, прикрепленной к функции «Заполнение/Выход» инжектора. Эта трубка всегда подсоединена к инжектору.
  5. Вставьте капиллярную иглу на другой конец держателя пипетки, плотно закрутив соединитель держателя пипетки вокруг иглы.
  6. Включите офтальмологический микроскоп и включите его свет до интенсивности 50%. Наведите микроскоп на место проведения процедуры на операционном столе и установите микроскоп в нужное положение.
  7. Перед началом процедуры убедитесь, что мышь адекватно обезболивается, проверив рефлекс отмены педали. Обязательно следуйте протоколу анестезии, утвержденному IACUC.
  8. Поместите мышь под наркозом на медицинские пеленки носом вправо и опирайтесь на левый бок.
  9. Посмотрите на правый глаз мыши через офтальмологический микроскоп и откройте веки, открыв щипцы обратного действия с обеих сторон глаза, чтобы обнажить место инъекции (рис. 2C).
  10. Заполните капиллярную иглу бактериальным раствором Bacillus cereus (ATCC 14579) (разведение 200 КОЕ/мкл), щелкнув левой кнопкой мыши по коврику для мыши, подключенному к микроинъектору (рис. 2D).
  11. Зафиксируйте голову животного левой рукой и поместите кончик иглы в лимб глаза. Когда игла находится в положении скоса и под углом 45°, проколите глаз мыши, но убедитесь, что при введении введен только острый кончик иглы (~0,5 мм).
  12. После того, как кончик иглы будет вставлен, переместите левую руку с головки мыши на коврик для мыши и щелкните правой кнопкой мыши по коврику для мыши, чтобы ввести 0,5 мкл разведения B. cereus, приготовленного в бульоне Brain Heart Infusion (BHI). Чтобы предотвратить утечку, перед извлечением оставьте кончик иглы внутри мышиного ушка на 2–3 секунды (рисунок 2E).
  13. Отпустите щипцы и поместите мышь в клетку, которая сидит на грелке. Наблюдайте за этими мышами до тех пор, пока они не оправятся от анестезии (рисунок 2F).
  14. Как только мыши оправятся от анестезии, верните клетку на надлежащую стойку. Если мыши будут подвергнуты анализу функции сетчатки с помощью электроретинографии, клетки должны быть возвращены в темную комнату для надлежащей адаптации к темноте.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Рисунок 1: Изготовление скошенных стеклянных игл. Стеклянные иглы были изготовлены из одноразовых микрокапиллярных пипеток с использованием съемника иглы/пипетки и фаски микропипетки. (A) Зажатая стеклянная капиллярная трубка в съемнике иглы/пипетки. (В,В) Создание стеклянных игл с использованием нужного напряжения. (D) Снятие фаски на стеклянных мик...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Клеточный микроинъектор МикроДата Инструмент, Инк. ПМ2000 NA
Микрокапиллярные пипетки 5 микролитров Кимбл 71900-5 NA
Устройство для снятия фаски с микропипетками Саттер Инструмент Ко. БВ-10NA
Микроскоп OPMI Lumera Цейсс NA
Щипцы обратного действия Катена К5-8228NA

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Bacterial EndophthalmitisMouse ModelIntravitreal InjectionBacillus CereusVitreous CavityRetinal InfectionMicroinjector UseOphthalmic MicroscopeLimbus PunctureInflammatory Response

Похожие статьи