Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.
1. Оборудование и подготовка аппаратов.
- Устройство оборудования:
- Установите операционный стол с размерами в соответствии с весом кролика.
- Установите крышку искусственной грудной клетки на стальную колонну со стеклянной камерой внизу и вентилятором с роликовым насосом по бокам.
- Убедитесь, что крышка легко наклоняется, чтобы канюля трахеи находилась на одной линии с трахеей, чтобы обеспечить более быстрое соединение.
- Искусственная грудная клетка:
ПРИМЕЧАНИЕ: Это неотъемлемая часть системы. Он состоит из стеклянной камеры с водяной рубашкой, герметичной специальной крышкой. Крышка работает как держатель органа с соединениями для канюляции трахеи и встроенных в нее сосудов.
- Установите струю Вентури, приводимую в действие сжатым воздухом, для создания отрицательного давления внутри искусственной грудной клетки.
заметка: Модуль управления вентиляцией (VCM) позволяет отдельно регулировать давление на вдохе и давление в конце выдоха, а также частоту дыхания и отношение продолжительности вдоха к общей продолжительности цикла.
- аппарат:
- Убедитесь, что нормально работающий аппарат состоит из основной стальной колонны, установленной на опорной плите, удерживающей искусственную грудную клетку, с пневмотахометром и датчиком груза, расположенными над ним и за катушкой предварительного нагрева с пузырьковой ловушкой.
- Подключите один преобразователь перепада давления к пневмотахометру, а другой — к камере давления. Установите другую пару датчиков давления за грудной клеткой для измерения перфузии и венозного давления.
- Подсоедините переключающий материал под оксигенатором с помощью уровневого электрода и вентиляционной системы рядом с аппаратом.
2. Хирургическое удаление сердечно-легочной блокады.
- анестезия:
- Используйте комбинацию седативного средства (ксилазин) и барбитурата (пентобарбитала).
заметка: Можно использовать различные анестетические коктейли без влияния на результаты эксперимента.
- Во-первых, успокойте здоровых новозеландских кроликов однократной внутримышечной инъекцией ксилазина гидрохлорида (3-5 мг/кг). Следите за тем, чтобы кролики оставались спокойными и расслабленными, чтобы через несколько минут после инъекции можно было провести дальнейшие манипуляции.
- После седации используйте краевые (боковые) ушные вены в качестве доступа для обезболивания кроликов с помощью внутривенной инъекции пентобарбитала натрия (28 мг/кг).
- контроль:
- Чтобы избежать недостаточной анестезии или чрезмерного угнетения сердечной и дыхательной функций, контролируйте следующие параметры. Чтобы оценить глубину анестезии, проведите тест с щипцом ноги.
- Следите за тем, чтобы слизистая оболочка была розового цвета. Синие или серые оттенки указывают на гипоксию.
- Следите за тем, чтобы частота сердечных сокращений находилась в пределах 120-135 уд/мин, а температура тела не опускалась ниже 36,5 °C.
- Размещение животных:
- Обрийте туловище кролика и положите животное на операционный стол в положение лежа на спине. Разместите вентиляционную систему рядом со столом, за головой кролика, чтобы обеспечить быстрое подключение канюль после трахеотомии во избежание повреждения канюль
.
- Разрез и трахеотомия:
- Рассекайте кожу вентральным разрезом срединной линии в 3-5 см от диафрагмы вверх до шеи.
- Операционными ножницами разрежьте передние 2/3 трахеи между двумя хрящевыми кольцами, чтобы ввести трахеальную канюлю через фиброзную оболочку трахеи.
- Вставьте 5 мм (внешний диаметр; OD) канюлю трахеи через фиброзную оболочку трахеи и с помощью шелкового шва 4-0 для ее тщательной фиксации.
- Поместите щипцы или пинцет под трахею, чтобы канюля не согнулась с трахеей.
- Вентиляция с положительным давлением:
- До тех пор, пока легкие остаются за пределами искусственной грудной клетки, используйте небольшой дыхательный насос для вентиляции положительного давления, чтобы избежать коллапса легких во время операции.
- Начните вентиляцию через трахейную канюлю, подключенную к дыхательному насосу, сразу после трахеотомии и до вскрытия грудной клетки.
- Установите дыхательный объем на уровне 10 мл/кг.<бр/>
заметка: В зависимости от установки эксперимента и модели искусственной грудной клетки обеспечьте вентиляцию с положительным давлением либо с помощью того же вентиляционного насоса, который используется для обеспечения отрицательного давления, либо с помощью другого насоса, обеспечивающего быструю повторную канюляцию.
- Торакотомия и обескровливание:
- Чтобы получить доступ к грудной полости, с помощью скальпеля или ножниц вскройте стенку грудной клетки и выполните медиальную стернотомию до верхней трети грудной клетки.
- Держите половинки грудной клетки открытыми с помощью двух ретракторов. Несколько лоскутов легких обычно окружают сердце.
- Локализуйте верхнюю и нижнюю полые вены и обобщите их нитями.
- Перед обескровливанием животного определите правый желудочек и введите 1000 МЕ/кг гепарина.
- Сразу после инъекции перевязать верхнюю и нижнюю полую вену предварительно запетленной нитью и провести обескровливание.
- Забор сердца и легких:
- Аккуратно и быстро соберите материал из сердечно-легочной блокады. Используйте прямое пальцевое препарирование или пружинные ножницы для отделения соединительной ткани таким образом, чтобы удалить легкие из грудной клетки.
- Рассекайте сосудистую сеть в этой области, а также пищевод.
- Разрежьте manubrium sterni, чтобы продлить медиальную стернотомию по направлению к трахейной канюле, освобождая трахею с обеих сторон от соединительной ткани.
- Теперь резецируйте трахею над трахеальной канюлей. Осторожно потяните канюлю вверх по краниокаудальной оси во время резекции дорсальной фиксации трахеи и легких.