Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Выделение клеток IPE и RPE: методика получения глазных пигментных эпителиальных клеток из кроличьего глаза

4.5K просмотров

⸱

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Bascuas, T., et al. Выделение, культивирование и генная инженерия первичных пигментных эпителиальных клеток млекопитающих для невирусной генной терапии. J. Vis. Exp. (2021).

В этом видео мы показываем процедуру получения глазных пигментных эпителиальных клеток из модели кролика. Клетки полезны в разработке терапевтических стратегий для дегенеративных заболеваний сетчатки.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

Новозеландские белые кролики были усыплены путем передозировки пентобарбитала (150 мг/кг), разведенного в 0,9% NaCl, введенного внутрибрюшинно, и глаза были энуклеированы сразу после жертвоприношения.

1. Перед подготовкой

  1. Приготовьте полнорационную среду (DMEM/Ham's F12 с добавлением 10% фетальной бычьей сыворотки (FBS), 80 ЕД/мл пенициллина / 80 мкг/мл стрептомицина и 2,5 мкг/мл амфотерицина В). Нагрейте среду, 1x PBS и 0,25% трипсина (при необходимости) на водяной бане при температуре 37 °C.
  2. Положите стерильную простыню в вытяжку, чтобы подготовить асептическое рабочее место. Поместите все необходимые стерильные инструменты и материалы внутрь вытяжки.
    заметка: Только энуклеация глаз и очистка оставшейся мышечной ткани и кожи являются процедурами, проводимыми вне капюшона, остальные действия должны быть выполнены внутри капюшона.

2. Выделение ПЭ-клеток кролика

  1. Используйте изогнутые ножницы и щипцы Colibri для энуклеации глаз после усыпления животного. Очистите остатки мышечной ткани и кожи с глаз с помощью ножниц и щипцов (нестерильных).
    заметка: Размер ножниц и щипцов, используемых для энуклеации и очистки глаз, зависит от вида (например, для крыс и мышей инструменты будут меньше, чем те, которые используются для свиней и крупного рогатого скота) (см. рис. 1).
    1. Соберите глаза в пробирку объемом 50 мл, заполненную нестерильным PBS, и перенесите трубку в колпак ламинарного потока. Продезинфицируйте глаза, погрузив на 2 минуты в раствор на основе йода, затем переложите их в чашку Петри, наполненную стерильным PBS.
  2. Раскрытие луковицы
    1. Положите один глаз на стерильный марлевый компресс и крепко прижмите его к зрительному нерву. Откройте глаз с помощью скальпеля #11 и ножниц примерно на 2 мм под лимбом. Удалите передний сегмент (роговицу, хрусталик и радужную оболочку) и положите его в чашку Петри. Оставьте луковицу вместе со стекловидным телом до тех пор, пока не будут выделены клетки РПЭ.
  3. Выделение клеток IPE
    1. Снимите линзу и тонкими щипцами аккуратно вытащите радужную оболочку, содержащую клетки IPE. Поместите ирис в чашку Петри, вымойте стерильным PBS и оставьте в PBS, пока не будет приготовлено больше ирисов. Удалите цилиарное тело с радужной оболочки, разрезав скальпелем #10.
    2. После приготовления 2 ирисов инкубировать с 1 мл 0,25% трипсина при 37 °С в течение 10 мин; за это время можно выделить клетки РПЭ (см. шаг 2.4). Удалите трипсин и добавьте 1 мл полной среды в радужную оболочку и изолируйте клетки, тщательно поцарапав плоской дозатором Пастера, отполированной огнем. Осторожно ресуспендируйте клетки с помощью пипетирования и перенесите клеточную суспензию в пробирку объемом 1,5 мл. Возьмите 10 μл клеточной суспензии и разведите 1:3 с трипановым синим, чтобы подсчитать клетки в камере Нейбауэра.
    3. Если трансфекцию не проводят немедленно, высейте 200 000 клеток/лунку в 24-луночный планшет (100 000 клеток/см2) в 1 мл полной среды (10% FBS) (посев см. в таблице 1). Поместите планшет в инкубатор и культивируйте его при температуре 37 °C, 5% CO2,
      заметка: Возможно, потребуется объединить несколько глазков, чтобы получить достаточное количество клеток для посева.
  4. Выделение клеток РПЭ
    1. Удалите стекловидное тело и сетчатку с заднего сегмента с помощью тонких щипцов. Избегайте повреждения пигментного эпителия сетчатки.
    2. Положите стерильную марлю в 12-луночную тарелку и положите луковицу поверх марли.
    3. Постирайте с помощью PBS. Добавьте 50 мкл 0,25% трипсина на каждый глаз и инкубируйте в течение 10 мин при 37 °C. Удалите трипсин и добавьте 150 мкл готовой среды на каждый шарик и осторожно соскребите клетки РПЭ изогнутой пипеткой Пастера, отполированной огнем; Используйте тонкие щипцы для иммобилизации ткани. Соберите клеточную суспензию и поместите ее в пробирку объемом 1,5 мл. Возьмите 10 μл клеточной суспензии; Разбавьте 1:4 трипановым синим, чтобы подсчитать ячейки в камере Нейбауэра.
    4. Центрифугируйте ячейки в течение 10 мин при 120 x g.
    5. Если трансфекцию не проводят немедленно, высейте 200 000 клеток/лунку в 24-луночный планшет (100 000 клеток/см2) в 1 мл полной среды (10% FBS) (посев см. в таблице 1). Поместите планшет в инкубатор и культивируйте его при температуре 37 °C, 5% CO2,
      заметка: Возможно, потребуется объединить несколько глазков, чтобы получить достаточное количество клеток для посева.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

видЛечение трипсиномN° Ячейки IPEN° ячеек RPEПластина для посева (100 000 ячеек/см2)
кроликда~350,000~2,500,00024-луночные планшеты

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
12-луночные планшетыКорнинг353043
24-луночные планшетыКорнинг353047
БетадинМундифарма
Боннские микрощипцы плоские
Щипцы Colibri (стерильные)
DMEM/Радиолюбитель F12Сигма-ОлдричД8062
Простыня (стерильная)Mölnlycke Health Care800530
ФБСБруншвигП40-37500
Щипцы (разного размера) (стерильные)
Марлевый компрессПРОМЕДИКАЛ АГNo 25403
NaCl (0.9%)Лаборатория Dr. Bichsel AG1000090
Камера НойбауэраМариенфельд-супериорНомер 640010
Пипетка Пастера (огнеупорная)Витег4100150
ПБС 1ХСигма-ОлдричД8537
Пенициллин/стрептомицинСигма-ОлдричП0781-100
Пентобарбитал (Тиопентал Инреса)Ospedalia AG31408025
чашка ПетриThermoFisher Scientific150288
Скарпель No10Свон-Мортон501
Скарпель No11Свон-Мортон503
Остро-острый кончик изогнутых ножниц Extra Fine Bonn (стерильные)
Остро-острый кончик прямых ножниц Extra Fine Bonn (стерильные)
Трипсин 0,25% ThermoFisher Scientific25050014
Пружинные ножницы Vannas изогнутые (стерильные)

Теги

пигментные эпителиальные клетки радужкиклетки ретинального пигментного эпителиядиссекция глаза кроликаобработка трипсиномметод изоляции клетокподсчет в камере Нойбауэрапротокол посева клетокпромывка стерильным PBSпастеровская пипетка с оплавленным концом