Удаление верхней слезной железы: хирургическая техника удаления пальпебральной и орбитальной частей верхней слезной железы у модели кролика

Аннотация

Источник: Honkanen, R. A. et al., Создание тяжелой модели сухого глаза с использованием полной дакриоаденальной эктомии у кроликов. J. vis. Exp. (2020).

Это видео описывает хирургическую процедуру удаления двух частей: пальпебральной и орбитальной верхней слезной железы у кролика для создания модели болезни сухого глаза. Эта модель кролика подходит для исследований гомеостаза глазной поверхности, патофизиологии и глазной терапии.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

Используйте кроликов новозеландской белой породы (NZW) весом 2−3 кг Слегка успокойте животных, помещенных в удерживающий мешок с подкожным введением ацепромазина, как указано выше (1 мг/кг). Удалите весь мех на морде и тыльной поверхности черепа, чтобы визуализировать хирургические ориентиры. Подстригайте мех ножницами, оставляя остаточный мелкий мех длиной около 1 мм. Удалите всю оставшуюся шерсть с помощью мягкого крема для депиляции, следуя инструкциям производителя.

1. Удаление OSLG

1. Инфильтрируйте места разрезов (хирургические линии маркировки ручки и верхнее заднее веко) смесью 2% лидокаина в соотношении 50:50 с 1:100 000 эпинефрина и 0,5% бупивакаина с помощью шприца объемом 5 мл с иглой 30 G (Рисунок 1A).
   заметка: Размер шприца и иглы не критичен.
2. Используйте иглу Колорадо, подключенную к электрохирургическому аппарату, чтобы сделать разрезы кожи вдоль хирургической разметки. Условия могут варьироваться в зависимости от клинического ответа и обычно составляют от 10 до 15 единиц как для разреза, так и для коагуляции (Рисунок 1B).
3. Нанесите противоположное напряжение на разрез кожи, чтобы разделить ткани и обнажить нижележащие мышечные волокна лобно-кутулярной мышцы.
4. Приложите медиальное давление к глазному яблоку, чтобы помочь визуализации OSLG, видимой как выпуклая ткань, расположенная медиально или глубоко к лобно-скуто-мышечным волокнам. При необходимости отодвиньте эти мышечные волокна в сторону, чтобы обнажить лежащее в их основе отверстие.
5. С помощью зубчатых щипцов (0,3) и капсулотомических ножниц аккуратно втяните и разрежьте фиброзную капсулу, находящуюся над OSLG. OSLG обычно имеет бледно-коричневый цвет (Рисунок 1C).
6. С помощью зубчатых или беззубчатых щипцов захватите ткань железы OSLG и аккуратно вытяните ее через верхнюю полость с помощью техники «рука над рукой». Вырежьте маленькие волокнистые ленты с помощью капсулотомических ножниц, чтобы освободить железу от ее положения в глазнице (Рисунок 1D).
   заметка: По мере удаления ткани железы OSLG она начинает сливаться в большую трубчатую структуру (главный выводной проток).
7. Когда железа будет удалена как можно полнее, используйте щедрое прижигание иглой Colorado для создания тканевого угля, максимально глубоко усекая железу в пределах углубления. В дальнейшем это послужит подтверждающим ориентиром во время демонтажа PSLG.

2. Удаление PSLG.

1. Отведите верхнее веко с помощью аппликатора с ватным наконечником. Луковичный конец PSLG обычно хорошо заметен.
   заметка: При некоторых анатомических вскрытиях можно визуализировать главный выводной проток в виде бледной линейной структуры шириной около 1 или 2 мм.
2. Задействуйте PSLG зубчатыми щипцами (0,3) и отведите его от поверхности века, одновременно используя капсулотомические ножницы, разрежьте вокруг его основания, отделив его от нижележащей предплюсны (рисунок 2A).
3. Контролируйте умеренное кровотечение с помощью монополярного прижигания.
4. Применяйте непрерывное вытяжение к отделенной ткани, чтобы сохранить плоскость ткани для рассечения. Это позволит также удалить главный выводной проток SLG (рис. 2B).
   заметка: По мере проведения диссекции оно, как правило, продвигается к верхнему краю орбиты, где можно увидеть следы прижигания, оставшиеся после удаления более верхнего и медиально расположенного OSLG.

Результаты

Рисунок 1: Удаление OSLG.(А) В области хирургического вмешательства инфильтрируют анестетиком с использованием комбинации 2% лидокаина с 1:100 000 эпинефрина и 0,5% бупивакаина в соотношении 50:50, который вводится в верхнее веко и вдоль линий разрезов для минимизации дискомфорта во время процедуры. (B) Колорадская игла для микродиссекции используется для разреза кож...

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье

Имя	Компания	Каталожный номер	Комментарии
ацепромазин, Aceproinj	Henry Schein Animal Health, Дублин, Огайо	NDC11695-0079-8	0,1 мл/кг подкожно для седации кроликов
Сумка для удержания животных	Henry Schein Animal Health, Дублин, Огайо	Джорвет J0170	Используйте сумку подходящего размера.
бупивакаин, 0,5%	Hospira Inc, Лейк-Форест, Иллинойс	НДЦ: 0409-1162-02	Смешивают 50:50 с 2% лидокаином с 1:100 000 адреналином для инфильтрации мест разрезов.
Колорадская игла	Черепно-челюстно-лицевая клиника Stryker, Каламазу, Мичиган	Н103А	Использование с электрохирургическим аппаратом для выполнения разрезов
Электрохирургический аппарат с монополярной прижигательной пластиной	Valleylab, Боулдер, Колорадо	Force FXc	Использование с электрохирургическим аппаратом для выполнения разрезов
щипцы, епископ Хармон	Бауш и Ломб (Шторц), Бриджуотер	NJ E1500-C	Использование зубчатых щипцов при дакриоаденэктомии
игла, 30 калибр	BD, Франклин Лейкс, Нью-Джерси	ССЫЛКА 305106	Для инфильтрации мест разрезов; размер шприца и иглы не имеет решающего значения
кролик, Новозеландский белый	Лаборатория Чарльза Ривера, Уолтем, Массачусетс	(NZW) 2-3 кг	Подопытные животные
ножницы, Ваннас Маккессон	Медико-хирургический центр, Сан-Франциско, Калифорния	Милтекс 2-130	Капсулотомические ножницы для дакриоаденэктомии
шприц, 5 куб. см	BD, Франклин Лейкс, Нью-Джерси	ССЫЛКА 309603	Для инфильтрации мест разрезов; размер шприца и иглы не имеет решающего значения