Методическая статья

Капсульное негативное окрашивание образцов вирусов на сетках ПЭМ: метод окрашивания тяжелыми металлами для визуализации ультраструктуры оболочечных вирусов

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Blancett, C. D., et al. Использование капсул для негативного окрашивания вирусных образцов в биоизоляции. J. Vis. Exp. (2017)

В этом видео мы демонстрируем отрицательное окрашивание образцов вируса в оболочке с помощью капсулы для обработки в среде биоизоляции. Отрицательно окрашенные вирусы могут быть визуализированы с помощью просвечивающей электронной микроскопии для исследования структуры и морфологии вируса с нанометровым разрешением.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Капсульный метод инактивации в биоизоляции с 2% глутаральдегидом с последующим отрицательным окрашиванием в лаборатории BSL-2

  1. Процедура инактивации вируса.
    1. Внутри биозащитной оболочки BSC хорошо перемешайте вирусную суспензию с тем же объемом 4% глутаральдегида до достижения конечной концентрации 2% глутарового альдегида.
      осторожность: Глутаральдегид является опасным химическим веществом и требует соответствующей защиты. Глутаральдегид можно использовать в течение коротких периодов времени в обычном BSC, но для длительного открытого использования реагента требуется работа в канальном BSC или вытяжном шкафу для химических веществ.
    2. Инактивируйте вирусы с помощью фиксатора в течение как минимум 24 часов перед упаковкой, обеззараживанием и транспортировкой в установку BSL-2 EM.
  2. В установке BSL-2 EM аспирируйте вирус и фиксирующую смесь в капсулу, содержащую две сетки ПЭМ, прикрепленную к пипетке.
  3. Поместите пипетку горизонтально на 10 минут так, чтобы сетки были ориентированы горизонтально.
    заметка: Это необходимо для обеспечения равномерного распределения вирусных частиц по сеткам TEM.
  4. Возьмите в руки пипетку и нажмите на поршень, чтобы вытолкнуть вирус в контейнер для отходов. Отасуньте 40 μл воды dI в капсулы и выдавите ее в контейнер для отходов в течение 3 циклов ополаскивания.
  5. Аспирируйте 40 мкл либо 1% уранилацетата (UA), либо 1% фосфорвольфрамовой кислоты калия (ТФК) в капсулы в течение 30 с.<бр/> заметка: Время окрашивания варьировало от 10 с до 1 минуты в зависимости от образца вируса.
    осторожность: UA является альфа-излучателем и кумулятивным токсином. Обращайтесь с ним с соответствующей защитой.
  6. Извлеките капсулу из пипетки и промокните насухо решетки, прикоснувшись краем сетки к листу фильтровальной бумаги. Высушите решетки на воздухе и сохраните их для последующей визуализации ПЭМ.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Сетки ПЭМ с формваром/углеродным покрытием SPI 3420C-MB 200 меш Cu Pk/100
Капсулы mPrep/g ЭМС 85010-01 коробка
Муфты mPrep/f ЭМС 85010-11 Стандарт 16/Пк
Glutaraldehdyde ЭМС 1632050% раствор, ЭМ класс
Уранилацетат ЭМС No 22400порошок
Калия фосфовольфрамовая кислота ЭМС 19500порошок
фильтровальная бумага ватман 1450-090 Размер 50
Электронный микроскоп с трансмиссией ДЖЕОЛ ДЖЕМ-1011 ТЭМ
г.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Negative StainingVirus SamplesTEM GridsHeavy Metal StainingEnveloped VirusesGlutaraldehyde FixationUranyl Acetate StainTransmission Electron MicroscopyViral UltrastructureBiocontainment Environment

Похожие статьи