Методическая статья

Катионообменная хроматография: метод выделения целевого рекомбинантного белка из лизата клеток насекомых на основе чистого поверхностного заряда

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Agamasu, C. et al. Полностью обработанный рекомбинантный KRAS4b: выделение и характеристика фарнезилированного и метилированного белка. J. Vis. Exp. (2020)

Это видео демонстрирует технику катионообменной хроматографии для выделения рекомбинантного белка из лизата белка клетки насекомого.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Очистка белка

  1. Подготовьте буферы A–H, как показано в таблице 1.
См. См. См. См.
Буферный растворБуферизатор (все 20 мМ)pHNaCl (мМ)Имидазол (мМ)MgCl2ТВЭП
aХЕПЕС7.3300- T51
ВХЕПЕС7.33003551
СХЕПЕС7.330050051
ГМчс6,0200- T51
ЕМчс6,0- T- T51
ФМчс6,0100- T51
ГМчс6,01000- T51
ЧХЕПЕС7.3300- T11
  1. Подготовьте материалы для очистки (см. Таблицу материалов): коктейль ингибиторов протеазы без ЭДТА или других хелаторов; колонку для иммобилизованной аффинной хроматографии металлов (IMAC); колонку для катионобменной хроматографии (CEX); шприцевой фильтр 0,45 мкм; имидазол 2 М (pH = 7,5); ультрацентрифугу с массой 100 000 x g; высокоскоростную настольную центрифугу с массой 4 000 x g; центробежные фильтрующие агрегаты (10 кДа, НМВЛ); спектрофотометр с возможностью считывания с длиной волны 280 нм; протеаза вируса травления табака (TEV) His6-табака; и хроматографическая аппаратура, способная смешивать два буферных раствора, наносить растворы на колонки, создавать градиентные элюции из колонки и собирать дроби из колонок.
  2. Удалите лизат клеток насекомых из диализа и центрифугируйте при давлении 4000 x g в течение 10 минут, чтобы удалить осадок. Окончательный диализованный, осветленный образец на этом этапе все еще часто остается мутным, но может быть нанесен без дальнейшей обработки на последующую колонку CEX.
  3. Приготовьте катионообменную колонку объемом 20 мл (см. Таблицу материалов), промыв тремя CV буфера G, затем тремя CV буфера F.
    заметка: Хотя мы не проводили тщательной оценки других смол, несколько коллег обнаружили плохую разрешающую способность смол, отличных от SP Sepharose High Performance Resin.
  4. Разбавьте 20 мл диализованного образца до конечной концентрации NaCl 100 мМ путем добавления 20 мл буфера Е и поместите разбавленный образец в колонку катионобмена.
  5. Продолжайте нагружать колонку, добавляя в загрузочную пробирку свежеразведенные образцы, приготовленные, как описано выше, по мере того, как предыдущее разбавление приближается к концу загрузки.
    заметка: Разбавление всего образца сразу до 100 мМ NaCl привело к значительным потерям целевого белка из-за осаждения.
  6. Промойте колонку до базовой линии Abs280 с помощью буфера F. Обычно для этого требуется 3 CV. Белок элюируется из колонки в течение градиента 400 мл (20 CV) от буфера F до 65% буфера G, собранный во фракции по 6 мл (рис. 1B).
  7. Продолжайте промывку колонки для получения дополнительных 1,5 CV (65% буфера G) после завершения градиента.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Рисунок 1: Гели SDS-PAGE процесса очистки. (A) Захват IMAC из лизата. FNTA/B - это темные полосы, мигрирующие со скоростью ~48 кДа, а His6-MBP-tev-KRAS4b - это темная полоса, мигрирующая со скоростью ~67 кДа. M = лестница молекулярной массы белка; T = общий белок; L = осветленный лизат/нагрузка в колонку; F = протекание через колонну. Фракции элюируются с возрастающим градиентом концентрации имидазола....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Пробирки с безопасным замком 1,8 мл, натуральныеЭппендорф22363204
11 мм Cl SS Сблокированный вкладыш для автосэмплераТермо Сайентиал30211СС-1232
5427R ЦентрифугаЭппендор
Ацетонитрил, класс ВЭЖХФишер КемикалА998-1 1л
Колонка катионобменной хроматографии (CEX)GE Здравоохранение Медико-биологические науки29018183HiPrep SP Sepharose Высокая производительность
Масс-спектрометр Exactive Plus EMRТермо Сайентиал
Флаконы Жильсона 7х14 мм ТубыGE HealthcareБР-1002-12
Высокоскоростная/настольная центрифугаThermo Fischer Scientific05-112-114ДСпособен до 4 000 xg
Протеаза вируса травления табака (TEV) His6-Tobacco VirАдджен92414Очищено в соответствии с Raran-Kurussi et al. (2017) Удаление аффинити-меток с помощью TEV Protease. В: Берджесс Браун Н. (ред.) Гетерологичная экспрессия генов в E.coli. Методы молекулярной биологии, том 1586. Humana Press, Нью-Йорк, Нью-Йорк
Коктейль ингибиторов протеазы без ЭДТА и других хелаторовМиллипора СигмаП8849
Ацетат аммонияСигма-Олдрич09689-250г
Газ аргонВоздушный газАРУП
муравьиная кислотаСигма-ОлдричФ0507-500МИИспользуйте класс реагента или лучше
Система хроматографии NGCБиоРад78880002Хроматографическая система NGC QuestTM 100
Комплект липидных экструдеров с держателемAVANTI ПОЛЯРНЫЕ ЛИПИДЫ610023
Жидкий азотВоздушный газНИ-ДЬЮАР
Центробежные фильтрующие агрегаты Ultra-15, 10K NMWLМиллипора СигмаUFC901008Мембрана PES
Центрифужные фильтры Ultracel 10K MWCO Ultra 0,5 млАмиконUFC501024
ультрацентрифугаБекман КоултерОптима - L80KСпособен на 100 000 XG
РебятасигмаС3023

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Cation Exchange ChromatographyProtein IsolationInsect Cell LysateRecombinant ProteinNet Surface ChargeChromatographic ColumnBuffer EquilibrationElution GradientProtein PurificationSignal Transducer

Похожие статьи