Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Метод круговой дихроизм-спектроскопии для изучения ДНК-белковых взаимодействий

2.4K просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Arya, V., et al. CD спектроскопия для изучения ДНК-белковых взаимодействий. J. Vis. Exp. (2022).

Это видео демонстрирует метод спектроскопии кругового дихроизма (CD) для изучения конформационных изменений, происходящих в ДНК в присутствии АТФ-зависимого белка ремоделирования хроматина. Изменения в спектрах CD, измеренные в присутствии и отсутствии гидролиза АТФ, указывают на важность АТФ в способности ремоделера индуцировать конформационные изменения в связанной ДНК.

Протокол

1. Рабочая концентрация компонентов реакции

  1. Приготовьте рабочие концентрации буферов для CD в свежем виде и поддерживайте их при температуре 4 °C перед началом реакции.
    заметка: Для реакций CD, описанных в данной работе, рабочие концентрации компонентов следующие: буфер фосфата натрия (pH 7,0) 1 мМ, АТФ 2 мМ, ДНК 500 нМ, белок 1 мкМ, MgCl2 10 мМ, ЭДТА 50 мМ, ADAADiN 5 мкМ.

2. Выбор и приготовление кювет для CD

  1. Собирайте спектры CD в кварцевые кюветы с высокой прозрачностью. Используйте прямоугольные или цилиндрические кюветы.<бр /> заметка: Для всех реакций, описанных в данной статье, использовалась кварцевая кювета CD (номинальный объем 0,4 мл, длина пути 1 мм).
  2. Для очистки кюветы используйте раствор для чистки кюветы. Добавьте 1% раствор для очистки кювет в воду, чтобы получилось 400 μл раствора, вылейте его в кювету и инкубируйте при 37 °C в течение 1 часа.
  3. Промойте кювету водой несколько раз, чтобы очистить кювету. Проведите сканирование воды или буфера в кювете, чтобы убедиться, что она чистая.
    заметка: Вода или буфер должны давать показания в диапазоне от 0 до 1 mdeg.

3. Получение белков и олигонуклеотида ДНК

  1. Поддерживайте объем белка ниже 50 мкл в реакции, чтобы свести к минимуму количество буферных компонентов, которые иногда вызывают образование неоднозначных пиков. Держите белок на льду на протяжении всего эксперимента, чтобы избежать его деградации.
  2. Используйте в реакциях олигонуклеотиды, очищенные от PAGE.
    заметка: В описанных здесь реакциях ДНК использовалась как в нативной, так и в термически охлаждаемой форме (быстро охлаждаемой (FC) и медленно охлаждаемой (SC)). Быстрое охлаждение способствует внутримолекулярным связям в ДНК, образуя больше вторичных структур. Напротив, медленное охлаждение способствует межмолекулярным связям в ДНК, что приводит к уменьшению количества вторичных структур.
  3. Для быстрого охлаждения нагрейте ДНК при температуре 94 °C в течение 3 минут на нагревательном блоке и сразу охладите его на льду. Для медленного охлаждения нагрейте ДНК при температуре 94 °C в течение 3 минут и дайте ей остыть до комнатной температуры со скоростью 1 °C в минуту.

4. Настройка контрольных экспериментов для записи базовых спектров

  1. Во всех реакциях поддерживайте реакционный объем на уровне 300 μл. Настройте в общей сложности 5 базовых реакций в центрифужных пробирках объемом 1,5 мл, одну за другой, следующим образом: i) Буфер + Вода; ii) Буфер + MgCl2 + АТФ + вода; iii) Буфер + MgCl2 + АТФ + белок + вода; iv) iii + ЭДТА или АДААДиН; v) Буфер + белок + вода.

5. Настройка экспериментов для записи спектров CD

  1. Настройте в общей сложности 5 реакций, одну за другой, в пробирках центрифуги объемом 1,5 мл следующим образом: i) Буфер + ДНК + Вода; ii) Буфер + ДНК + MgCl2 + АТФ + вода; iii) Буфер + ДНК + MgCl2 + АТФ + белок + вода; iv) iii + ЭДТА или АДААДиН; v) Буфер + ДНК + белок + вода.

6. Сканирование записи

  1. Включите газ и включите CD-спектрометр.
  2. Включите лампу через 10-15 мин. Включите водяную баню и установите температуру держателя на 37 °C.
  3. Откройте программное обеспечение CD spectrum.
    1. Установите температуру на 37 °C.
    2. Установите диапазон длин волн на 180 - 300 нм.
    3. Установите время на точку равным 0,5 с.
    4. Установите номер сканирования на 5.
    5. Нажмите на Pro-Data Viewer, создайте новый файл и переименуйте его, указав подробную информацию об эксперименте и дату.
  4. Держите все компоненты реакции на льду, чтобы избежать ухудшения. Проводите исходные линии и реакции, одну за другой, в пробирках центрифуги и смешивайте их с помощью пипетирования. Аккуратно переложите реакционную смесь в кювету, следя за тем, чтобы в ней не было пузырьков воздуха.
  5. Если вы проводите эксперимент по временному ходу, инкубируйте реакции при температуре 37 °C в течение необходимого времени и проведите сканирование. Добавьте ЭДТА в буфер, содержащий ДНК, АТФ, Mg+2 и белок, чтобы остановить гидролиз АТФ.
  6. Увеличивайте концентрацию ЭДТА и время его инкубации для полного ингибирования активности АТФазы.
  7. Вычтите базовые показатели из соответствующих реакций в программном обеспечении (например, вычтите реакцию 1 из базовой линии 1). Сгладьте данные либо в программном обеспечении для обработки спектра компакт-дисков, либо в программном обеспечении для построения графиков данных. Отобразите данные в программном обеспечении для построения графиков данных.
    заметка: Вычитание базовых линий из соответствующих реакций даст чистые спектры CD только ДНК.

7. Анализ и интерпретация данных

  1. Используйте формулу, заданную уравнением (1), для преобразования значений, полученных в миллиградусах, в среднюю эллиптичность остатка.
    figure-protocol-1
    Здесь S — сигнал CD в миллиградусах, c — концентрация ДНК в мг/мл, mRw — средняя масса остатка, а l — длина пути в см.
  2. Постройте график в зависимости от длины волны и эллиптичности средних остатков с помощью программного обеспечения для построения графиков данных и проанализируйте пики.
  3. Чтобы построить график, выберите эллиптичность среднего остатка по оси Y и длину волны по оси X и постройте график по прямой линии.
    заметка: На этом графике будут представлены характерные пики различных форм ДНК. Формы ДНК, соответствующие пикам, могут быть идентифицированы с помощью существующей литературы.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Аденозин 5'-трифосфат динатрия соль гидратЗигмалдричА2383
CD Кварцевая кюветаСТАРНА21-В-1
Спектрометр Chirascan V100 CDПрикладная фотофизикаНет в наличии
ЭДТА Динатриевая соль ДигидратОООNo 43272
Чистящий раствор Hellmanex IIIХеллма9-307-011-4-507
Гексагидрат хлорида магнияНаучный ФишерМ33-500
Натрия фосфат двухосновной безводныйНаучный ФишерС374-500
Натрия фосфат одноосновной моногидратНаучный ФишерС369-500
Считыватель микропланшетов Synergy HTБиоТекНет в наличии
База ТрисНаучный ФишерБП152-500

Теги

180 300