$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Все процедуры, связанные со сбором образцов, были выполнены в соответствии с рекомендациями института IRB.
1. Макрофаги бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ)
- Используйте BAL для получения макрофагов легких у (1) людей с помощью бронхоскопии и (2) у мышей с помощью внутритрахеальной аспирации.
заметка: Приобретение макрофагов обычно вызывает некоторую активацию этих клеток. Макрофаги получают от пациентов, которым требуется бронхоскопия для исследования потенциальной медицинской проблемы, и не все субъекты могут быть пригодны для анализа макрофагальных внеклеточных ловушек или МЕТ (это необходимо будет определить для каждого отдельного проекта).
- Возьмите раствор BAL и уменьшите его (500 x g в течение 10 минут) до образования гранулы, дважды промойте питательной средой (Roswell Park Memorial Institute Medium (RPMI) с 5% сывороткой эмбриона телят и 1% L-глутамином) при комнатной температуре, а затем разведите клетки в 4 мл питательной среды.
- При необходимости запросите формальный дифференциальный подсчет; большинство клеток (обычно >80%) будут макрофагами.
заметка: Как правило, это выполняется службой клинической гистологии с использованием морфологического вида различных типов клеток.
- Проведите подсчет жизнеспособных макрофагальных клеток на растворе BAL с использованием исключения трипанового синего и гемоцитометра.
заметка: Раствор BAL получают от людей и мышей, как указано в шаге 1.1.
- Добавьте 1 - 4 x 105 макрофагов в 24-луночные планшеты на покровных стеклах в 500 мл питательной среды на лунку и оставьте на ночь при температуре 37°C; клетки прилипнут к покровным стеклам. Для образцов человека добавьте антибиотики (например, пенициллин и стрептомицин, 104 Ед/мл) для предотвращения бактериального загрязнения.
2. Иммунофлуоресцентное мечение/микроскопия макрофагов BAL
ПРИМЕЧАНИЕ: Ячейки приклеиваются к покровным стеклам, как упоминалось выше.
- Удалите питательную среду и промойте клетки один раз фосфатно-солевым буфером (PBS). Зафиксируйте клетки в 2% фиксаторе параформальдегида/периодата/лизина (PLP) в течение 10 минут.
- Кратковременно промойте клетки в PBS, а затем проникните в 0,2% Tween 20 в PBS в течение 20 минут.
- Блокируют клетки с 10% куриной сывороткой в 5% бычьем сывороточном альбумине (БСА), разведенным в PBS в течение 30 мин.
- Инкубировать с первичными и контрольными антителами изотипа в течение 1 ч при комнатной температуре при концентрации 1:100 (более подробная информация приведена в Таблице материалов) при 37 °С.<бр/>
заметка: Для образцов BAL специфический маркер макрофагов обычно не требуется.
- После добавления первичных антител промыть клетки в PBS, и далее инкубировать с соответствующими вторичными антителами в течение 40 мин при комнатной температуре.
- Промойте срезы в PBS и установите монтажную среду на основе DAPI для визуализации с помощью конфокального микроскопа (как упоминалось выше) при лазерных возбуждениях 405, 488, 561 и 647 нм и масляном объективе 40X, 1.0 NA.