Методическая статья

Интрабронхиальная инстилляция Streptococcus pneumoniae на иммунокомпетентных моделях грызунов

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Hoover, J. L., et al., A Robust Pneumonia Model in Immunocompetent Rodents для оценки антибактериальной эффективности против S. pneumoniae, H. influenzae, K. pneumoniae, P. aeruginosa или A. baumannii. J. Vis. Exp. (2017)

Это видео демонстрирует установление инфекции легких у иммунокомпетентной модели грызуна с помощью интубации и установки бактериальных суспензий в доли легких. Эта модель позволяет проводить исследования антибактериальной эффективности у иммунокомпетентных животных.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Обезболивать, интубировать и инокулировать животных

ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуются специфические иммунокомпетентные самцы крыс Sprague-Dawley без патогенов (SPF) весом 100 - 120 г. Обеспечьте всех животных пищей и водой в неограниченном количестве и размещайте их в общественных местах на древесной щепе или другой впитывающей подстилке со стандартными 12-часовыми циклами «свет-темнота».

  1. Перед проведением каких-либо экспериментов приобретите и простерилизуйте металлическую канюлю и полиэтиленовую трубку подходящего размера для данного вида животного. Приобретите стерильные одноразовые шприцы объемом 1 мл и стерильные одноразовые иглы 25 калибра.
    осторожность: Всегда выбрасывайте эти шприцы и иглы в контейнер для острых предметов.
    1. Для крыс приобретите или изготовьте металлическую канюлю длиной около 12 см, с внутренним диаметром 0,9 - 1,0 мм и наружным диаметром 1,0 - 1,2 мм и изогнутой под углом примерно 45° на одном конце. Отрежьте полиэтиленовую трубку длиной от 11 до 12 дюймов с внутренним диаметром 0,4 мм и наружным диаметром 0,8 мм. (См. Рисунок 1A).
    2. Поместите металлическую канюлю в стеклянную трубку с завинчивающейся крышкой и проведите автоклав стандартными методами стерилизации. Замочите и храните отрезанные отрезки полиэтиленовой трубки в закрытом стакане, содержащем спирт.
  2. Подготовьте рабочую поверхность и устройство для интубации.
    1. Положите чистый одноразовый коврик на рабочую поверхность, рядом с водяной баней. Перенесите металлическую канюлю в стеклянной трубке для хранения на эту поверхность. Снимите колпачок с накопительной трубки и сдвиньте конец канюли с «ручкой» к открытому концу трубки.
    2. С помощью стерильных щипцов извлеките одну длину полиэтиленовой трубки из стакана и вставьте ее через внутреннюю часть стерильной металлической канюли, убедившись, что она свободно движется. Установите стерильную одноразовую иглу 25-го калибра (для крыс) на свободный конец полиэтиленовой трубки, вставив иглу на несколько мм внутрь трубки. (См. Рисунок 1А для крыс).
    3. Поместите направляющие метки как на металлическую канюлю, так и на полиэтиленовую трубку, чтобы указать глубину введения в организм животного, следуя процедуре интубации, описанной ниже, на одном усыпленном животном. Откройте грудную полость для осмотра, затем правильно установите металлическую канюлю и соответствующим образом продвинуте полиэтиленовую трубку. С помощью несмываемой ручки отметьте металлическую канюлю там, где она встречается со ртом животного, и полиэтиленовую трубку там, где она встречается с верхней частью металлической канюли, чтобы помочь правильно разместить остальных животных.
  3. В вытяжном шкафу (или с помощью соответствующей системы очистки) обезболивайте до 6 животных одновременно в закрытой камере, снабженной ≤5% изофлураном в дозе кислорода 1,5 л/мин до тех пор, пока рвотный рефлекс не будет подавлен (примерно на 1 минуту).
    заметка: Перед проведением любых экспериментов необходимо установить безопасную дозу и время экспозиции изофлурана в конкретных используемых условиях (например, размер/тип камеры и размер/вид/штамм животного) для предотвращения непреднамеренного смертельного воздействия.
  4. Наполните стерильный одноразовый шприц объемом 1 мл (для крыс) стерильным физиологическим раствором, поместив стерильный наконечник в физиологический раствор и потянув его назад на поршне. Прикрепите шприц к игле, установленной на полиэтиленовой трубке, и промойте весь объем физиологического раствора через трубку до тех пор, пока шприц не опустеет.
  5. Наполните шприц инокулюмом на основе агара из контейнера на водяной бане и промойте агар через трубку до тех пор, пока трубка не будет заполнена (т.е. полностью заполнена агаром).
    1. Для крыс извлеките иглу 25-го калибра (установленную на полиэтиленовой трубке) из одноразового шприца. Выбросьте использованный шприц в контейнер для острых предметов. Наполните новый, стерильный одноразовый шприц объемом 1 мл инокулюмом на основе агара из контейнера на водяной бане, поместив стерильный наконечник в инокулюм и потянув назад за поршень. Снова прикрепите иглу (установленную на полиэтиленовой трубке) и промывайте агар через трубку, нажимая на поршень до тех пор, пока трубка полностью не заполнится агаром.
  6. Извлеките одно животное из анестезирующей камеры. Положите животное в лежачем положении на одноразовый коврик головой вправо и хвостом влево, как показано на рисунке 1В.
  7. С помощью интубационного устройства (т.е. металлической канюли, оснащенной полиэтиленовой трубкой) интубируйте животное и введите канюлю в большую долю левого легкого (см. рисунок 1D).
    1. Вставьте свободный конец металлической канюли в рот животного. Поверните канюлю так, чтобы свободный конец был наклонен вверх и аккуратно продвигайте ее в трахею, осторожно обходя гортанные структуры легким скручивающим движением. Подтвердите введение в трахею, а не в пищевод, осторожно скользя канюлей немного вперед и назад несколько раз, пальпируя кольца трахеи указательным пальцем левой руки, как показано на рисунке 1C.
    2. Когда канюля достигнет бифуркации, где трахея разделяется на левый и правый бронхи, сделайте легкое вращающее движение в левую сторону животного, чтобы убедиться, что канюля вставлена в левый бронх. Продвигайте металлическую канюлю до конца на полпути на три четверти вниз по левому легкому, используя ранее установленную направляющую метку, чтобы подтвердить, что достигнута соответствующая глубина.
    3. Установив металлическую канюлю, продвиньте полиэтиленовую трубку вперед на несколько мм. Используйте ранее размещенную направляющую метку на трубке, чтобы убедиться, что она продвинута только настолько, чтобы выйти из конца металлической канюли и не проколоть легкое.
  8. Когда обе канюли установлены, с помощью прилагаемого шприца введите 100 мкл (для крыс) агаровой суспензии глубоко в большую долю левого легкого (см. рисунок 1D). Извлеките несколько мм полиэтиленовой трубки, а затем аккуратно снимите неповрежденное интубационное устройство. Поместите его обратно в стеклянную трубку для хранения и переместите животное в новую клетку, чтобы оно восстановилось.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Рисунок 1: Безоперационная интратрахеальная интубация. Показаны инструменты для интубации крысы (А) и мыши (В). После обезболивания животное должно быть расположено, как показано на рисунке С, головой вправо, а хвостом влево, если человек, выполняющий технику, является правшой. Осторожно приложите указательный палец левой руки к горл...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Инструмент «Направляющая»ООО «Интек Сервисез»ГТ01
Скользящий наконечник шприца TB объемом 1 млБектон Дикинсон и компания309659
Игла PrecisionGlide 25 G x 5/8Бектон Дикинсон и компания305122
Полиэтиленовая трубка IntramedicБренд Clay Adams - Becton Dickinson and Company427401Пластиковая канюля для мыши
Игла для кормления животных - прямая 20 x 3" 2-1/4Поппер и сыновья, Инк7903Используется для создания металлических канюль для мышей
75 TN 5,0 мкл шприц 26s/2"/2Гамильтон87930Шприц для инъекций стекла ВЭЖХ
Агар Difco NutrientБектон Дикинсон и компанияNo 213000
Трубка Pyrex, культура 25x150 завинчивающаяся крышка с резиновой линиейКорнинг9825-25Для автоклава/хранения металлических канюль
Игла PrecisionGlide 25 G x 5/8Бектон Дикинсон и компания305122
70% изопропиловый спиртВи-Джон (Лебедь)НДЦ 0869-0810-43
Изофлуран, USPПирамал ХелсингНДЦ 66794-013-10
50 мл Полипропиленовая коническая трубка 30 x 115 ммFalcon — бренд CorningNo 352070 (Английский
75 TN 5,0 мкл шприц 26s/2"/2Гамильтон87930Шприц для инъекций стекла ВЭЖХ
)

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи