Method Article

Индукция экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита на мышиной модели

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Barthelmes, J. et al., Индукция экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита у мышей и оценка распределения иммунных клеток в различных тканях в зависимости от болезни.J. Vis. Exp.(2016)

Видео демонстрирует индукцию экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита в мышиной модели путем введения комбинации гликопротеинов миелина олигодендроцитов и инактивированной Mycobacterium tuberculosis. Модель позволяет исследователям изучать механизмы заболевания и тестировать терапевтические вмешательства.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит или модель EAE

  1. Индукция модели EAE
    1. Используйте 10-13-недельных самок мышей 129S4/SvJae×C57BL/6 для индукции EAE.
    2. Дайте мышам подкожную инъекцию в верхнюю и нижнюю часть спины энцефалитогенного пептида MOG35 - 55 (гликопротеин миелина олигодендроцитов) (200 мкг), эмульгированного в 200 мкл полного адъюванта Фрейнда (КФА), содержащего 400 мкг Mycobacterium tuberculosis.
      заметка: В качестве отрицательного, не вызывающего заболевания фиктивного контроля можно использовать неполный адъювант Фрейнда, содержащий Mycobacterium tuberculosis, в том же объеме и тем же путем.
    3. После этого, и снова через 24 часа, дайте мышам внутрибрюшинную инъекцию коклюшного токсина (всего 0,2 мкг, разведенных в 200 мкл фосфатно-солевого буфера, PBS). Используйте необработанных мышей в качестве контрольной группы, чтобы иметь возможность сравнивать больных и здоровых животных.
      заметка: Также возможно индуцирование ЭАЭ с помощью 200 - 300 мкг пептида MOG35 - 55, 300 - 500 мкг Mycobacterium tuberculosis в КФА и 0,2 - 0,3 мкг коклюшного токсина в объеме 0,1 - 0,2 мл на одну инъекцию.
    4. Начиная с одной недели после инъекции, ежедневно осматривайте мышей на наличие клинических симптомов (см. шаг 1.2.1)
      заметка: День начала заболевания варьируется в разных экспериментах, но в условиях нашей лаборатории это примерно 11-й день, и, таким образом, здесь 14-й день определяется как 3 дня после начала заболевания. У всех мышей в настоящем исследовании развились клинические симптомы.

2. Подсчет очков мышам

  1. Классифицируйте клинические симптомы по клиническим показателям следующим образом: 0) нет признаков, 0,5) дистальный паралич хвоста, 1) полный паралич хвоста, 1,5) хромой хвост и легкая слабость задних конечностей, 2) хромой хвост и выраженная слабость задних конечностей, 2,5) хромой хвост и паралич одной задней ноги, 3) хромой хвост и паралич обеих задних конечностей, 3.5) паралич обеих задних конечностей и слабость одной передней конечности (мышей, достигших этого балла, усыпляли в соответствии с местными этическими нормами).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Комплект EAEHooke Laboratories, Лоуренс, СШАЭК2110

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Experimental Autoimmune EncephalomyelitisMouse Model InductionMyelin Oligodendrocyte GlycoproteinComplete Freunds AdjuvantPertussis Toxin InjectionBlood Brain BarrierAntigen Presenting CellsAutoreactive T CellsCentral Nervous SystemImmune Cell Infiltration

Related Articles