Методическая статья

Крыса Брыжейка Ангиогенез Пробирной

14.1K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/3078

⸱

18 июня 2011 г.

1Department of Pathology, Institute of Biomedicine, University of Gothenburg

В этой статье

Краткое содержание

Нормальный взрослый васкуляризированной ткани млекопитающих, что не хватает физиологических ангиогенеза и который не подвергался хирургическому вмешательству используется для изучения: (я) возникновение и развитие ангиогенеза после внутрибрюшинного введения тестовых агентов, и (II) изменение ангиогенеза следующие системные администрации выбранного теста агентов.

Аннотация

Анализ ангиогенеза в окне брыжейки взрослой крысы биологически релевантен и исключительно well suited для изучения спраутинга-ангиогенеза in vivo [см. обзорные статьи], который является доминирующей формой ангиогенеза в опухолевых и нетравматичных тканях человека, как обсуждается в приглашенных обзорных статьях1,2. Ангиогенез, индуцированный в мембранозных частях брыжейки путем внутрибрюшинного (i.p.) введения проангиогенного фактора, может быть модулирован путем подкожного (s.c.), внутривенного (i.v.) или перорального (p.o.) введения выбранных модифицирующих агентов. Каждая мембранозная часть брыжейки полупрозрачна и обрамлена жировой тканью, что придает ей вид окна.

Данный анализ обладает следующими преимуществами: (i) исследуемая ткань обладает естественной васкуляризацией, хотя и слабой, и поскольку она чрезвычайно тонка, сеть микрососудов фактически является двумерной, что позволяет оценивать всю сеть микроскопически in situ; (ii) у взрослых крыс в исследуемой ткани отсутствует значительный физиологический ангиогенез, который характерен для большинства нормальных тканей взрослых млекопитающих; однако степень естественной васкуляризации коррелирует с возрастом, как обсуждается в1; (iii) ничтожный уровень ангиогенеза, индуцированного травмой, обеспечивает высокую чувствительность; (iv) анализ воспроизводит клиническую ситуацию, так как модулирующие ангиогенез исследуемые препараты вводятся системно, и наблюдаемые ответы отражают суммарный эффект всех метаболических, клеточных и молекулярных изменений, вызванных лечением; (v) анализ позволяет оценивать объективные количественные и непредвзятые переменные пространственного распространения, плотности микрососудов и формирования структуры сети, а также капиллярного прорастания, что обеспечивает возможность проведения надежного статистического анализа зависимостей доза-эффект и молекулярная структура-активность; и (vi) анализ с высокой чувствительностью выявляет токсические или вредные эффекты лечения в виде снижения скорости физиологического набора массы тела, так как взрослые крысы растут интенсивно.

Ангиогенез, опосредованный тучными клетками, был впервые продемонстрирован с помощью данного анализа3,4. Модель демонстрирует высокую степень дифференциации в отношении зависимости «доза-эффект» и измеряемых эффектов системно вводимых химически или функционально близких препаратов и белков, включая: (i) стандартные химиотерапевтические средства в низких дозах, вводимые по метрономной схеме, которые вызывают разнообразные специфические эффекты (т. е. подавляющую, нейтральную или стимулирующую ангиогенез активность5); (ii) природный ненасыщенный железом лактоферрин человека, который стимулирует опосредованный VEGF-A ангиогенез6, и природный ненасыщенный железом лактоферрин быка, который ингибирует опосредованный VEGF-A ангиогенез7; и (iii) низкомолекулярные фракции гепарина, полученные различными способами8,9. Кроме того, данный анализ отлично подходит для изучения комбинированного воздействия на ангиогенез агентов, вводимых системно одновременно или последовательно.

Идея создания этого видео возникла у покойного доктора Джуды Фолкмана, когда он посетил нашу лабораторию и увидел демонстрацию данной методики.

Обзорные статьи (по приглашению), в которых обсуждается и оценивается данный анализ

Norrby, K. In vivo модели ангиогенеза. J. Cell. Mol. Med. 10, 588-612 (2006).

Norrby, K. Тестирование лекарственных препаратов с использованием моделей ангиогенеза. Expert Opin. Drug. Discov. 3, 533-549 (2008).

Протокол

1. Животные

  1. Мелкие грызуны, такие, как крыс, мышей и морских свинок, были использованы в качестве модельных животных. К сожалению, у взрослых мышей (многие линий мышей были оценены), как правило, отсутствие или лишь очень небольшое число потенциальных родителя микрососудов (из которого может исходить ангиогенез) в рамках своих брыжеечной окна, что делает исследования на мышах ненадежны. Таким образом, анализ был разработан в первую очередь для крыс.
  2. Крыс, которые акклиматизировались в стандартной среде, по крайней мере 7 дней после доставки от заводчика, как правило, размещается в пар в стандартной клетке под 12-ч свет / темно цикла со свободным доступом к воде и окатыши. Каждое животное будет отмечена. Мы используем в основном молодых взрослых крыс (как правило, 7-10 недель от различных штаммов, но обычно мужчины Sprague-Dawley крыс, у крыс в возрасте до 5-6 недельного возраста число родных микрососудов, как правило, низкий), полученные из разных заводчиков. В период до эксперимента и в течение всего эксперимента, животных взвешивают каждый второй день, и всегда в день жертвоприношения. Когда животные лечатся одновременно IP (для индукции ангиогенеза, см. ниже) и подкожно или внутривенно или бо, они весили каждый день. Это дает возможность создания экспериментальной и контрольной групп одинакового веса тела в начале эксперимента, и позволяет осуществлять мониторинг влияния терапии на вес тела, получить в ходе эксперимента. Так как взрослых самцов крыс растут энергично физиологически (получение приблизительно 40-60 г в неделю в зависимости от типа деформации), вес коэффициентом усиления отсталости является чувствительным маркером заменитель токсичности, системные благополучия, снижение аппетита и отказ процветать.

Мы работаем в высокий стандарт медицинского учреждения животных и значительные усилия, чтобы минимизировать стресс испытывают животные. Текущие этические принципы являются те, которые установлены рабочего П. и соавт. (Руководящие принципы для обеспечения и использования животных в исследовании рака. Br. J. Cancer 102, 1555-77, 2010). Комитет животных этики Университета Гетеборга одобрил эти исследования.

2. Pro-ангиогенных Внутрибрюшинное Лечение

  1. Кандидат проангиогенных фактором для тестирования растворяется и разводят в эндотоксина без солевых использоваться для инфузий больных (даже при очень низких уровнях, эндотоксин является проангиогенных). Все решения составлены только что в день проведения инъекций, стерильной фильтрацией (Millipore 0,22 мкм фильтрация), проверка на нейтральную рН (7.1-7.3), и использоваться при комнатной температуре.
    Агент тестирования вводится при низких или очень низких концентрациях. Например, крыса rVEGF 164 (564-RV/CF, R & D Systems Europe, Ltd, Oxon, Великобритания), который является преобладающим VEGF-изоформы у крыс, разбавляют до 96 пмоль / мл в эндотоксина без раствора, замороженные и талых и объемом 5 мл вводится IP в крысу. Мы используем 5-мл шприц с 0,8-мм иглой (зеленые иглы, 21G) для IP-инъекции. Эта обработка, два раза в день в течение 4,5 дней, то есть., С утра понедельника (день 0) до утра пятницы (день 4), индуцирует надежный прорастания кровеносных сосудов в ответ брыжеечной ткани теста, достигая максимума на отметке 21-й день.
    Администрирование решение ф гарантирует, что весь объем поставляется в брюшную полость (а не в кишечнике, мочевом пузыре или любой другой орган). Быстрое введение 5 мл позволяет тактильные подтверждения оператором, что жидкость струей прошла через брюшную стенку в брюшную полость.
    После, до или одновременно с ф проангиогенных лечения, любой тест препаратом выбора могут быть введены системно.

3. Системное администрирование ангиогенеза модулирующего Агенты

  1. Любой маршрут, кроме IP-маршрут может быть использован, так как ф лечение может повлиять на текущую ангиогенных реакции через индукции воспаления или, возможно, путем активации тучных клеток в тесте ткань, которая может привести к сильным проангиогенных ответ. Помимо приема внутрь или однократное введение подкожно или внутривенно, мы часто используем подкожно администрирование с помощью осмотического minipumps (один или несколько, с разными объемами и насосных раза) для доставки решение с постоянной скоростью в течение двух или нескольких недель.
  2. Непрерывная подкожной инфузии тестовых агентов
    Заполнение и имплантации осмотического minipumps
    Обычно на 5 день, т.е. на следующий день после окончания лечения ф VEGF, осмотическое minipumps (например, модель 2ML2, с постоянной скорости перекачивания 5,0 мкл / ч в течение 14-15 дней; Alzet Осмотические Насосы, Маунтин-Вью, Калифорния , США) заполняются в стерильных условиях с агентом тестирования или соответствующего транспортного средства. После хранения в стерильном 0,9% (м / о) NaCl в течение ночи при 37 ° C, насос (ы) имплантируется подкожно на спине (в сторону спинного coluмлн. в область лопатки) крыс, которые были под наркозом использованием изофлуран газа (Isoba ветеринару, Schering-Plough Animal Health, Merck & Co, Inc, Whitehouse Station, штат Нью-Джерси, США), первоначально в герметичной камере и прозрачной Впоследствии с помощью маски (чтобы свести к минимуму стресс, причиненные следующих животных, камера промывается воздух, прежде чем заново). Коже разрез, сделанный для насоса имплантации зашивается сразу после имплантации использованием шелковой нити.
    Так как животные набирают вес во время физиологически экспериментального периода и тест средства вводят с постоянной скоростью, фактические дозы, отобранных для испытаний препарата на кг массы тела выше, чем средняя доза в начале периода инфузии и ниже чем средняя доза в конце инфузии период.
    Непрерывная инфузия, как описано здесь, можно рассматривать как расширенную форму метрономной лечения.

4. Окончание эксперимента

  1. Одно животное в тот момент, помещается в герметичную камеру прозрачным, которая вспыхнула с СО 2 газ, который быстро убивает животное. Камера промывается воздух, прежде чем использовать снова.

5. Сбор образцов тканей

  1. Как показано на DVD, брюшная стенка открывается и малой кишке брыжейки определяется, в том числе наиболее дистальной части, которая достигает подвздошно-слепой кишки клапан (соединения тонкой кишки и толстой кишки). Четыре (или более) из наиболее дистально расположенные «окна», пронумерованы и распространения на объективный стандарт необработанной SuperFrost Плюс-слайды (DAKO Дании / S, Glostrup, Дания). Важно, чтобы избежать, по возможности, загрязнения образцов крови, кишки содержание или другими жидкостями тела, так как эти материалы могут быть окрашены неспецифически, хотя это не отменяет последующей иммуногистохимической визуализации микрососудов.
  2. Каждый брыжеечной образца окно с прикрепленными небольшой сегмент кишки распространяется на слайд и сушат при комнатной температуре в течение 20 минут. Затем, кишечные пень отрезали, а нетронутыми мембранных образцов брыжейки хранятся при температуре -20 ° С в течение длительного периода времени. Это показано на DVD.

Следует отметить, что ткани и сосудистой патент могут быть визуализированы до сбора урожая в проходящем свете прижизненной микроскопии.

6. Протокол для иммуногистохимического окрашивания микрососудов

  1. День 0
    Образцы могут таять от -20 ° C до комнатной температуры, высушивают в шкафу при температуре 60 ° С в течение 1 часа, и хранить при комнатной температуре в течение ночи.
  2. День 1
    Место слайдов в слайд окрашивания колонка (в каждом втором треке) в окрашивании банку и мыть дважды TBS (рН 7,8) в течение 10 минут при комнатной температуре. Решение отказаться и заменить следующее решение, и так далее для всех следующих шагов.
  3. Трипсин лечения
    Заполните окрашивания банку, что будет гавани держатель слайд с окрашиванием раствора трипсина (25 ° С в течение 20 минут). Отменить решение и инкубировать в два раза с 2,5% раствором сахарозы (при комнатной температуре в течение 10 минут каждый раз). Отменить решение и промойте пару раз в царской Dest (комнатной температуре в течение нескольких минут каждый).
  4. Блокирование
    Заполните окрашивания банку, что будет гавани держатель окрашивания слайд с 0,5% H 2 O 2 в метаноле (комнатной температуре в течение 30 минут). Отменить решение и промыть аква Dest (комнатной температуре в течение нескольких минут). Отменить решение и полоскать дважды TBS (рН 7,4) (комнатной температуре в течение 8 минут каждый раз).
  5. Инкубация
    Все инкубации во влажной камере при комнатной температуре. Около 150 мкл каждого из решений, перечисленных ниже используются на слайд. Слайды находятся во влажной камере и решения пипеткой на образцах (без мембранной части не должны быть застрахованы от решений).
    Для каждого из следующих шагов, тщательно стряхнуть все решения до последующего решения не добавляется.
    1. Инкубация с нормальной (блокировка) сыворотки (лошадь) (ABC комплект) 3 капли желтого раствора / 10 мл буфером для разведения в течение 20 минут.
    2. Инкубация с первичными антителами ARU0181, что этикетки крысы сосудистых эндотелиальных клеток. Антител разводят 1:600 ​​буфером для разведения (Биосурс) (100 мкл разведенного в 40 раз [замороженных] плюс 900 мкл буфера для разведения) и инкубации происходит в течение ночи при 4 ° C.
  6. День 2
    Слайды будут удалены из влажной камере, первичное антитело отбрасывается, и слайды находятся в держатель окрашивания слайд, который погружен в окрашивании банку и дважды промывали TBS(РН 7,8) в течение 8 минут.
    1. Инкубация с биотинилированного антитела (ABC комплект)
      Слайды размещаются горизонтально в увлажненной камере и инкубировали с 1 каплю синий раствор / 10 мл буфером для разведения в течение 30 минут. Отменить решение и место слайды в держатель окрашивания слайд погружен в окрашивании банку и полоскать дважды TBS (рН 7,4) в течение 8 минут.
    2. Инкубация с реагентом ABC
      Слайды снова располагаться горизонтально во влажной камере и следующие решения пипеткой на мембранных части образцов: по 2 капли оранжевый раствор плюс 2 капли коричневый раствор / 10 мл TBS (рН 7,4) в течение 30 минут. Тщательно перемешать 30 минут перед использованием! Отменить решение и место слайды в держатель слайдов в окрашивании банку и полоскать дважды TBS (рН 7,4) в течение 8 минут.
  7. Окрашивание DAB (0,05%)
    Этот шаг должен быть выполнен в вентилируемом химических капот!
    Место слайды и добавить 3,3-диаминобензидина (DAB, Sigma-Aldrich) решения с помощью пипетки: 0,1% DAB решение в TBS (рН 7,4) [замороженных] разводят в соотношении 1:1 смесь 10 мкл H 2 O 2 и 7,5 мл TBS (рН 7,4). Это решение является стерильным фильтром непосредственно перед употреблением (для устранения каких-либо частиц, что может заслонить микроскопическая картина). Пятно образцов в течение 8 минут. Отменить решение и место слайды в окрашивания слайдов погружен в окрашивании банку. Промыть под проточной водой, а затем в царской Dest в течение нескольких минут.
  8. Обезвоживание
    Слайды находятся в держатель слайдов окрашивания. Промыть путем отбрасывания и заправки окрашивания сосуде аква Dest / этанол: аква Dest, 70% спирта, 95% спирта, абсолютного спирта, с 2 минут в каждом решении.

7. Работа с изображениями и оценка микрососудистой сети в каждом брыжеечной образца окна после иммуногистохимического окрашивания сосудистых эндотелиальных клеток

Как показано в фильме, микрососудов микроскопически визуализируется на месте в неповрежденной ткани.

  1. Во-первых, мы используем рисунок микроскопа с увеличением в диапазоне от 14 до 34 (Leica M Дикие 3Z), чтобы карандашом на белой бумаге всю площадь окна, а также всю территорию васкуляризированной (ВА) в брыжеечных окна. В. А., в процентах от всей площади, легко измеряется с помощью компьютеризированных или не компьютеризированных планиметрии (или просто путем вырезания и взвешивания образ целого окна, и образы всех ее частей васкуляризированной).
  2. Использование другой рисунок микроскопа, индивидуальные профили микрососудов, которые легко идентифицировать, рисуются черными чернилами на белой бумаге на 80 увеличении в случайно выбранных полей. Это отправная точка для последующей компьютеризированных морфометрических оценки микрососудистых длины (МВЛ), которая в основном измерение микрососудистой плотности.
  3. При желании переменные, связанные с микрососудистых структурообразования, а также тех, для оценки количества микрососудистых ростки и длина отдельных микрососудистых ростки (№ SP и Ле. С.П., соответственно) может быть определена. -Оптимального контраста между изображен черный структур судна и белый фон способствует подробный анализ изображений в большинстве коммерческих морфометрических компьютеризированных программ.
  4. В большинстве случаев основными переменными В. А. и МВЛ, которое при умножении вместе генерировать общая длина капилляров (TMVL).

8. Статистический анализ

Обычно мы используем стандартные непараметрические Mann-Whitney U-тест для анализа непарных (двусторонний) наблюдений. Среднее четыре брыжеечной окон на одно животное используется как независимые данные точки для каждой переменной брыжеечной окна. Критерия статистической значимости Р ≤ 0,05.

Обсуждение

Анализ был введен в 1986 году и имеет 3 последовательно получили дальнейшее развитие и уточнение в нашей лаборатории 7,10-12. Как отмечалось в обзорных статьях (приглашен) 1, 2, анализа сравнивает хорошо с других млекопитающих в естественных условиях анализа ангиогенеза в отношении особенно важны такие функции, как взрослые ткани тест изначально васкуляризированной и недостатки физиологического ангиогенеза; минимальные травмы, если таковые имеются, нанесенных ткани; действительно количественные переменные измерены, которая позволяет звуковой статистический анализ по доза-реакция и молекулярно-активность исследований; прорастания кровеносных сосудов происходит, который преобладает в нормальных тканях и опухолей, а также данных о токсичности легко накапливаются в крысах, которые растут энергично физиологически во взрослом возрасте. Невыгодные особенности могут включать то, что анализ является сравнительно много времени, особенно при оценке количества и длины отдельных сегментов капилляров и микрососудов ростки, что оно не позволяет real-time/serial наблюдений, и что она вряд ли подойдет для мышей так как многие брыжеечной окнами у мышей отсутствие потенциальных микрососудов родителей, из которых новые капилляры могут возникать.

В режиме реального времени наблюдения, однако, включены по прижизненной микроскопии, где экстериоризируется но нетронутыми брыжеечной окна растопыренными над столике микроскопа в то время как животное под наркозом, как описано в 1.

Значительные достижения в области ангиогенеза исследования были достигнуты в последние десятилетия с использованием моделей, таких как роговицы micropocket, цыпленок chorioallantoic мембраны, и подкожно анализов Матригель вилки, которые являются полезными, но в конечном счете, ограниченные средства. Будущее клинического применения антиангиогенного и проангиогенных терапии необходимость создания и проверки более чувствительным и биологически значимым, по-настоящему количественные доклинических моделях, например, описанный в настоящем докладе.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Финансовую поддержку для большинства исследований были предоставлены шведским Советом по медицинским исследованиям (грант 5942).

Материалы

Буферы и реагенты

0,5 М Трис-HCl (рН 7,8) исходного раствора
Трис (гидроксиметил) aminomethan (60,57 г) растворяют в ~ 900 мл аква Dest и ~ 45 мл 25% HCl (концентрированный) добавляется для достижения рН 7,8 с последующим разбавлением до 1 литра аква Dest.

Трис-буфер физиологического раствора (TBS, рН 7,8)
К 200 мл исходного раствора добавляют 18 г NaCl, растворенных в ~ 1800 мл аква Dest с регулировкой рН до 7,8 использованием маточного раствора, с последующим разбавлением до 2 л с аква Dest.

TBS (рН 7,4)
К 200 мл исходного раствора добавляют 18 г NaCl, растворенных в растворяется в ~ 1800 мл аква Dest с регулировкой рН до 7,4 использованием маточного раствора, с последующим разбавлением до 2 л с аква Dest.

Трипсин раствора (0,05% трипсина, 0,1% CaCl 2)
Содержит 0,1 г трипсина и 0,2 г CaCl 2 в 200 мл TBS (рН 7,8).

Раствором сахарозы 2,5%
Содержит 5 г сахарозы в 200 мл TBS (рН 7,8).

Исходный раствор 1% натрия азид в TBS (рН 7,4)
Содержит в 1 г Na-азид в 100 мл с TBS (рН 7,4).

Разводящий буфер: 0,1% BSA, 0,01% Na-азид
(Используется для разбавления антител в Vectastain ABC комплект). Содержит 0,1 г бычьего сывороточного альбумина (БСА) и 1 мл 1% Na-азид, разбавленный до 100 мл TBS (рН 7,4).

ABC комплект Vectastain PK 4002, ABC пероксидазы мышь IgG
Нормальной лошадиной сыворотки; блокирование сыворотке крови; желтый раствор: 3 drops/10 мл буфером для разведения.
Биотинилированные антител, анти-IgG мыши, синий раствор: 1 мл drop/10 буфером для разведения.
ABC-реагент: оранжевый раствор, 2 капли плюс коричневый раствор 2 мл drops/10 TBS (рН 7,4).

Смешайте эти решения за 20 минут до использования!

Мышь (моноклональные) анти-крыса эндотелия (Биосурс International, Camarillo, Калифорния, США)

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Каталог # ARU0181
Клон # MRC ОХ-43

Это антитело направлено против всех сосудистых эндотелиальных клеток у крыс, за исключением тех, в головном мозге.

Vectastain пероксидазой авидин Биотин комплекса (ABC) комплект
Набор состоит из первичного антитела, биотинилированного вторичными антителами, авидин-биотинилированного ферментный комплекс (ABC), и фермента субстратом. Смотрите www.vectorlabs.com или www.immunkemi.se для протоколов.

Бычий сывороточный альбумин (BSA) (Sigma-Aldrich, каталог #-4503).
DAB = 3,3 '-диаминобензидина Isopac (Sigma-Aldrich, каталог # D 9015).
Трипсин из бычьей поджелудочной железы (Sigma-Aldrich, каталог № Т 4665).
Vectastain пероксидазы ABC-кит, мышь IgG (Immunkemi F & D AB, Jarfalla, Швеция)

Ссылки

  1. Norrby, K. In vivo models of angiogenesis. J. Cell. Mol. Med. 10, 588-612 (2006).
  2. Norrby, K. Drug testing with angiogenesis models. Expert Opin. Drug. Discov. 3, 533-549 (2008).
  3. Norrby, K., Jakobsson, A., Sorbo, J. Mast-cell-mediated angiogenesis: a novel experimental model using the rat mesentery. Virchows Arch. B Cell. Pathol. Incl. Mol. Pathol. 52, 195-206 (1986).
  4. Norrby, K. Mast cells and angiogenesis. APMIS. 110, 355-371 (2002).
  5. Albertsson, P., Lennernas, B., Norrby, K. On meteronomic chemotherapy: modulation of angiogenesis mediated by VEGF-A. Acta Oncol. 45, 144-155 (2006).
  6. Norrby, K. Human apo-lactoferrin enhances angiogenesis mediated by vascular endothelial growth factor A in vivo. J. Vasc. Res. 41, 293-304 (2004).
  7. Norrby, K., Mattsby-Baltzer, I., Innocenti, M., &, T. uneberg, S, Orally administered bovine lactoferrin systemically inhibits VEGF(165)-mediated angiogenesis in the rat. Int. J. Cancer. 91, 236-240 (2001).
  8. Norrby, K. Low-molecular-weight heparins and angiogenesis. APMIS. 114, 79-102 (2006).
  9. Norrby, K., Nordenhem, A. Dalteparin, a low-molecular-weight heparin, promotes angiogenesis mediated by heparin-binding VEGF-A in vivo. APMIS. 118, 949-957 (2010).
  10. Norrby, K. Basic fibroblast growth factor and de novo mammalian angiogenesis. Microvasc. Res.. 48, 96-113 (1994).
  11. Norrby, K. Vascular endothelial growth factor and de novo mammalian angiogenesis. Microvasc. Res. 51, 153-163 (1996).
  12. Norrby, K. Microvascular density in terms of number and length of microvessel segments per unit tissue volume in mammalian angiogenesis. Microvasc. Res. 55, 43-53 (1998).

Перепечатки и разрешения

Теги

Подготовка мезентериального окнапротокол внутрибрюшинного введениякомпьютерная морфометрическая микроскопияизмерение длины микрососудованализ относительной васкуляризированной площадитучноклеточно-опосредованный ангиогенезисследования дозозависимого эффектавведение ангиогенных факторовколичественная оценка ангиогенеза
Крыса Брыжейка Ангиогенез Пробирной
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.