Методическая статья

Резекция опухоли головного мозга у мышей с помощью малоинвазивной системы резекции

7 августа 2025 г.

В этой статье

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Alomari, S., et al. Проведение минимально инвазивной резекции опухоли головного мозга у грызунов для сбора тканей с высокой жизнеспособностью. J. Vis. Exp. (2022)

В этом видео демонстрируется использование минимально инвазивной системы резекции (MIRS) для иссечения опухолевой ткани у мыши, находящейся под наркозом, которой имплантировали опухоль. Процедура включает в себя закрепление мыши на стереотаксической раме, повторное открытие предыдущего хирургического места для доступа к мозгу и введение специализированной канюли, которая использует всасывание и вращающееся лезвие для удаления участков опухоли. После резекции иссеченная ткань собирается с помощью стерильной трубки, а рана закрывается для восстановления.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными моделями, были рассмотрены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным советом JoVE.

1. Первичная имплантация внутричерепной опухоли

  1. На начальном этапе исследования внутричерепно вводят каждой мыши 100 000 клеток (клеточная линия мышиной глиомы GL261), суспензированных в 4 мкл фосфатно-солевого буфера (1x PBS) на глубину 2,5 мм в соответствии с ранее опубликованным отчетом.
  2. Количественно оцените опухолевый сигнал у каждой мыши с помощью системы визуализации in vivo через 9 дней после имплантации опухоли.
    ПРИМЕЧАНИЕ: При необходимости разделите мышей на д....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
figure-results-1

Рисунок 1: Настройка системы MIRS. (A) Минимально инвазивная система резекции (MIRS) для опухоли головного мозга в моделях грызунов с интегрированной тканью система консервации. (B) Передняя панель консоли M.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Anased (инъекция ксилазина, 100 мг/мл)Covetrus33198
Анестезиологическая системаPatterson Scientific78935903
контейнер для отходов анестезиологического газаPatterson Scientific78909457
C57Bl/6, 6-8-недельные мышиCharles River LaboratoriesКод штамма 027
ИзофлуранCovetrus11695-6777-2
Изофлуран ВапорайзерPatterson Scientific78916954
кетаминCovetrus11695-0703-1
Kopf Stereotactic FrameKopf Instruments5001
Легкопольный микроскопBioTekCytation 5
Установка для микроинъекцийKopf5001
Микромоторная дрельForedomF210418
Система МРТBruker7T Biospec Avance III
Myriad SystemNICO Corporation
Офтальмологическая мазьPuralube vet мазь
Papain SigmaAldrich#P4762
PBSInvitrogen#14190250
PenStrepMillipore SigmaN1638
Percoll solutionSigma Aldrich#P4937
КонтроллерпипеткиFalconA07260
Раствор повидона-йодаAplicare52380-1905-08
RPMI MediaInvitrogenINV-72400120
Лезвие скальпеляCovetrus7319
Рукоятка скальпеляFine Science Tools91003-12
Маркер для кожиTime OutD538,851
Степлер для снятия скобMikRonACR9MM
СтеплерMikRonACA9MM
StaplesClay Adams427631
Stereotactic Frame KopfInstruments5000
СахарозаSigma AldrichS9378
Шовный материал, викрил 4-0EthiconJ494H
NICO

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи