Method Article

Трансплантация клеток-предшественников интернейронов человеческого происхождения в гиппокамп детеныша мыши

August 7th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Gonzalez-Ramos, A., et al., Трансплантация ГАМКергических нейронов человека, полученных из стволовых клеток человека, в ранний постнатальный гиппокамп мыши для смягчения нарушений развития нервной системы. J. Vis. Exp. (2022)

В этом видео демонстрируется стереотаксическая инъекция клеток-предшественников интернейронов человеческого происхождения в гиппокамп генетически модифицированного детеныша мыши с уменьшенным торможением интернейронов с целью восстановления возбуждающе-тормозного баланса.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными моделями, были рассмотрены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным советом JoVE.

1. Трансплантация клеток внутри гиппокампа

ПРИМЕЧАНИЕ: Все шаги в этом разделе выполняются за пределами капюшона для клеточных культур в помещении для животных. Раннюю постнатальную трансплантацию клеток в мозг проводили на Р2 с учетом Р0 в день рождения.

  1. Подготовьтесь к эксперименту по трансплантации, выполнив следующие действия.
    1. Автоклавируйте весь хирургический материал или, если это невозможно, стерилизуйте другим утвержденным методом.
    2. Установите инъекционный шприц в держатель без стеклянного капилляра. Промойте иглу водой.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Игла должна быть 33 G.
    3. Согните на 90° кончик иглы для введения инсулина 30 г.
    4. Создайте самодельную сцену, похожую на пластилин, для позиционирования щенка с плоской головой (рисунок 1A).
    5. Принесите клетку для мышей вместе с матерью и детенышами, прежде чем готовить что-либо к операции, чтобы позволить им акклиматизироваться к новой среде.
    6. Подготовьте лоток с влажным льдом и пустую клетку с небольшим количеством бумаги для изофлурана.
  2. Обезболите мышиного щенка.
    1. Смочите лист бумаги изофлураном (см. Таблицу материалов) и поместите его внутрь пустой клетки. Осторожно возьмите одного щенка и поместите его в клетку с бумагой, смоченной в изофлуране.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Никогда не оставляйте с мамой менее трех щенков. Не превышайте 20-30 с изофлурановой анестезии, иначе щенок может умереть.
    2. Проверьте эффект анестезии путем прекращения движения.
    3. Сразу после анестезии положите щенка на влажную салфетку на поверхность влажного льда. Держите животное на льду в течение 3 минут, пока верхние конечности не станут беловатыми (рисунок 1Б, синяя стрелка). Обычно это занимает 2-3 минуты.
    4. Используйте это время для загрузки шприца клеточной суспензией. Перед этим осторожно подвешивают клетки с помощью пипетки.
    5. Поместите щенка на стереотаксическую рамку. Используйте ушные планки в обратном направлении (Рисунок 1A, пурпурные стрелки).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Задняя сторона ушных ушейных планок менее заострена, и, поскольку у щенков P2 нет ушей, используйте более плоскую сторону, чтобы не причинить вреда животному.
    6. Сбоку проверьте, прямая ли голова. Голова должна быть плоской; используйте стадию, похожую на пластилин, чтобы приспособиться к этому.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Щенки в этом возрасте еще не открыли глаза, поэтому никаких дополнительных шагов в этом отношении предпринимать не нужно. У щенков в этом возрасте нет шерсти, поэтому брить эту область не требуется. Специфическое обезболивание не назначается, так как это не открытый разрез кожи, и не требуется наложение швов.
    7. Держите щенка накрытым на льду (поверх папиросной бумаги) в течение всей операции.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Не кладите лед в прямой контакт с кожей щенка.
  3. Выполните инъекцию.
    1. Очистите поверхность кожи с помощью мягкой ткани, смоченной в этаноле.
    2. Определите лямбду и установите координаты в ноль на цифровом дисплее стереотаксического прибора (рисунок 1C, желтая пунктирная линия). Сагиттальные и лямбдоидные швы хорошо видны глазу, так как они васкуляризированы в виде красных линий.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если вы испытываете трудности с визуализацией лямбды, положите небольшой кусочек льда на кожу и подождите пару минут, пока он остынет. Затем, удалите кусочек льда, и тонкое отбеливание кожи позволит вам визуализировать.
    3. Переместите инъекционную иглу в нужные координаты. В описанном протоколе целевой областью был гиппокамп, а координаты были следующими: передне-задний (AP) +0,85 и медиолатеральный (ML) +1,35.
    4. Используйте изогнутую на 90° инсулиновую иглу, чтобы проникнуть в череп и создать крошечное отверстие.
    5. Опустите иглу для инъекции до тех пор, пока она не пересечет череп, и обнулите дорсо-вентральные (DV) координаты. Опускайте иглу до нужных координат DV. В описанном протоколе координаты были DV −1.1.
    6. Вводите в соответствии с заранее определенными временными интервалами.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В описанном протоколе точное время было следующим: (i) после спуска к координате DV подождите 3 минуты, (ii) введите 1 μL объема в течение 5 минут, и (iii) после того, как весь объем будет введен, подождите 3 минуты.
    7. Медленно втяните иглу.
  4. Завершите процедуру.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Операция не может длиться более 15 минут, чтобы обеспечить выживание щенка и избежать любых повреждений, вызванных анестезией в результате гипотермии.
    1. Согрейте щенка руками, пока он не начнет двигаться, прежде чем отдать его матери.
    2. Давайте DOX в концентрации 1 мг/мл в 0,5% растворе сахарозы в виде питьевой воды в течение как минимум 2 дней до и 3 недель после трансплантации (ПТ) для продолжения дифференцировки клеток in vivo.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
figure-results-1

Рисунок 1: Теотаксическая трансплантация у новорожденных мышей в P2. (A) Сцена, похожая на пластилин, используется для удержания тела щенка в нужном положении и перевернутых ушных планок (пурпурные стрелки). (...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
30 G иглаB Braun4656300
33 G игла для шприца HamiltonHamilton7762-06
B6.129(Cg)-Cntnap2tm1Pele/JJackson Laboratory17482Животная модель
C57BL/6JJanvier Labs Животная модель
Цифровой стереотаксKOPFМодель 940
ДоксициклинSigma-AldrichD98912 мкг/мл
ЭтанолSolveco 70%, 95%, 99,8%
H1 (WA01) ESCWiCellWA01Линия эмбриональных стволовых клеток человека в соответствии с соглашением MTA
Hamilton ШприцHamilton7634-015 мкл
Изофлуран BaxterApoteket AB
Мышиный адаптер к стереотаксуRWD68030
Пуромицин (дигидрохлорид)GibcoA1113803
ПинцетVWR

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Human Derived Interneuron Precursor CellsMouse Pup HippocampusStereotaxic InjectionExcitatory Inhibitory BalanceGABAergic Neuron TransplantationGenetically Modified Mouse PupHippocampal CoordinatesBent Needle TechniqueCell Reflux PreventionNeuronal Network Integration

Related Articles