1. Очищающий Schistosoma mansoni яйца
- Инфекция швейцарской-Webster мышей с шистосом церкарии, который является инфекционной стадии в цикле жизни Schistosoma 8. Кроме того, получить шистосом-инфицированных мышей из NIAID Шистосомоз ресурсный центр ( http://www.schisto-resource.org/~~V ). Оставьте мышей в течение 6-7 недель после заражения, к тому времени точки, яйца находятся в печени и могут быть восстановлены, как описано ниже (см. рис. 1).
- Усыпить мышей с CO 2, и влажный с 70% этанола. Поместите мышь на спине. Используйте тупой пинцет и ножницы, чтобы отрезать кожи и подлежащих брюшины. Акцизные печени, расположенных ниже грудной клетки и диафрагмы.
- Мелко фарша печень и добавить 20 мл в печени пищеварения смесь, состоящую из коллагеназы / dispase (0,5 мг / мл), пенициллин (100 ЕД / мл) и стрептомицин (100 мкг / мл) в PBS. Положите микстЮр в 50 мл трубку Сокол и инкубировать в течение ночи в 37 ° С шейкер.
- Центрифуга смеси на 400 мкг / 3 мин / 20 ° C. Аккуратно слейте лишнюю жидкость и заполнить трубу с PBS. Центрифуга и повторите PBS стирки. После последнего центрифугирования, ресуспендируют осадок в 25 мл PBS.
- Процедить ресуспендированного гранул через стандартный кухонный металлический фильтр (использование 50 мл шприца с пюре печени части через в стеклянном стакане), а затем путем пропускания смеси через мелкое сито (используется 10 мл шприц толкать смесь через мелкое сито во второй стакан стекло).
- Положите смесь в напряженном 50-трубка мл Falcon. Центрифуга 400 мкг / 5 мин / 20 ° C. Осторожно вылить надосадочную без потери гранул. Ресуспендируют осадок в 3 мл PBS.
- Наложение аккуратно перемешать на 20% Перколла, 40 мл градиент 8 мл Перколла и 32 мл 0,25 М сахарозы (FW = 342,3 таким 8,56 г sucrose/100 мл H 2 0).
- Центрифуга 10 мин / 800 мкг / 20 ° C. Пипетки сг отказаться от желатиновой верхний слой клеток печени. Удалить яйцо гранул на дне с передачей пипетки и введен в 15 мл трубку Falcon.
- Wash гранул 3 раза в 10 мл PBS / 1 мМ ЭДТА / 1 мм EGTA помощью параметров центрифуги: 3 мин / 30 мкг / 20 ° C. Ресуспендируйте в 500 мкл PBS.
- Наложение смеси на новый 25% Перколла, 10 мл градиент (2,5 мл Перколла и 7,5 мл 0,25 М сахарозы) с помощью центрифуги параметры: 10 мин / 800 мкг / 20 ° C.
- Вымойте 3X в 10 мл PBS использованием центрифуг настройки: 3 мин / 30 мкг / 20 ° C.
- За последние 10 мл стирки, удаление 100 мкл считать яйца. Яйца решить быстро, так что труба Сокола должно быть тщательно перемешивают до удаления образца. Развести 100 мкл образца 900 мкл PBS. 100 мкл смеси должны учитываться в виде капель на предметное стекло микроскопа помощью рассечения микроскоп (1:10 разведение). Широкий диаметра наконечники должны быть использованы.
- Ресуспендируйте яйца на 50 000 яиц / мл в PBS. Яйца можно хранить в течение нескольких месяцев при температуре -80 ° C и талых один или TWICе для использования. Перед использованием следует осмотреть под микроскопом, чтобы гарантировать, что яйца остаются нетронутыми (см. рис. 1).
2. Внутрибрюшинное сенсибилизация с С. mansoni яйца: День 0
- Подготовка яиц в 5000 eggs/100 мкл PBS в 5 трубка snapcap мл. Для инъекций, оценить 50% больше яиц, чем это необходимо.
- Загрузить 23 калибра 3/4inch иглы и 1 мл шприц с 100 мкл яйца подвески на мышь. Яйца решить, поэтому нагрузка иглы с яйцами непосредственно перед использованием.
- Рок шприц и обратно смешать яйца до каждой инъекции и вводят внутрибрюшинно 100 мкл суспензии в мышь.
3. Ретро-орбитальный внутривенного Проблемы с С. mansoni Яйца: 14 день
- Подготовка яйца, как указано выше в 5000 eggs/100 мкл.
- Обезболить мышей специализированные камеры с ИФ (4%), или внутрибрюшинно ксилазина (10 мг / кг) и кетамин (120 мг / кг). Глубина ANESThesia определяется, зажимая в подушечку и гарантируя, что ни физические реакции.
- После загрузки в 1 мл шприц и 23 калибра 3/4inch игла с яйцами, использование щипцов, чтобы согнуть иглу под углом 90 ° с конической вниз в угол. Убедитесь, что нет пузырьков присутствуют.
- Поместите мышь на одной стороне. Уберите кожу, глаза будут выступать, и вводят 100 мкл в судах за глазное яблоко на угол 45 ° к носу.
- Снять иглу и применить легкое давление, чтобы остановить кровотечение.
Все эти процедуры должны проводиться с осторожностью, и мышь должны быть проверены, пока они оправиться от наркоза. Эти протоколы были одобрены в Университете штата Пенсильвания по Уходу за животными и использованию комитета (IACUC).
4. Экспериментальные Урожай: 22-й день
- Усыпить мышей с CO 2.
- Мокрая мышь с 70% этанола, и место на спине.
- Использование тупым НЦВОEPS, схватить мышью живот и сделайте небольшой надрез в коже. Осторожно снимите кожу с помощью ножниц и подвергать грудной клетки и брюшной полости.
- Разрезать брюшины. Сокращение брюшной аорты, чтобы восстановить кровь пипетки Пастера. Хранить на льду.
- Перемещение печени вниз, чтобы выставить диафрагму. Используйте тонкий ножницы, чтобы вырезать диафрагмы. Аккуратно разрезать грудную клетку, чтобы разоблачить легочной ткани.
- Восстановление parathymic лимфатические узлы, которые истощают легких с мелким пинцетом. Они скрываются под грудной клеткой, по обе стороны вилочковой железы 9. Магазин на льду в 1 мл стерильной среды (DMEM с добавлением 10% тепла инактивированной эмбриональной телячьей сыворотки, 100 ед / мл пенициллина, 100 мкг / мл стрептомицина, 2 мМ L-глутамина, 50 мкМ 2-меркаптоэтанола, все имеющиеся в Invitrogen).
- Чтобы восстановить БАЛ, и раздувать легкие для гистологического анализа, трахею интубации должны быть выполнены. Вынести трахеи путем перемещения слюнных желез в сторону, и placiнг прекрасно щипцы под трахеи. Использование тонких ножниц, вырезать отверстие в середине трахеи и вставить трубку в легкие. Закрепите трубы, связывая с хирургической нитью.
- Прикрепить PBS заполненных 1 мл шприц с трубкой и раздувать легкие с 1 мл PBS. Тщательно получить БАЛ промыть шприц. Хранить на льду.
- Приложите 4% параформальдегид (PFA) в PBS заполненных 1 мл шприц с трубкой и раздувать легкие.
- Снимите трубку и затяните нить хирургическая, чтобы предотвратить утечку PFA.
- Осторожно рассекают из легочной ткани и поместите в 50 мл Сокол трубки с 5 мл 4% PFA.
5. Подготовка Восстановленные тканей
- Сыворотка: После хранения на льду в течение 30 мин до 2 ч для свертывания крови, сыворотки выделяется из крови путем центрифугирования (13000 мкг / 10 мин / 4 ° C). Сыворотка хранится при температуре -20 ° С и может быть использован для ИФА цитокинов или S. mansoni яйцо антиген-специфические IgG изотипа ИФА 6, 10.
- Лимфатические узлы: Single суспензий готовят и клеток используется для оценки величины иммунного ответа. Для изучения поляризации Th2 клетки, клетки повторно стимулировали С. mansoni яйцо антигена в течение 72 часов. Intracellar окрашивания цитокинов может быть рассмотрен с помощью проточной цитометрии и супернатантах может быть восстановлена и хранится при температуре -20 ° С для ИФА на Th2 цитокинов (IL-4, IL-5, IL-13) 6.
- BAL: Клетки осаждали (400 мкг / 5 мин / 4 ° C). БАЛ извлекается и хранится при температуре -20 ° C для анализа Th2 цитокинов методом ИФА. BAL рассчитывает клетки используются как индикатор для воспаления дыхательных путей. Cytocentrifuge препаратов 10000-100000 клеток (500 мин / 5 мин / 4 ° C), последующим окрашиванием Diffquik позволит перечисление воспалительный инфильтрат 4, 6. Кроме того, клеток БАЛ может быть рассмотрен с помощью проточной цитометрии 6.
- Легкие ткани: Легкие ткани хранениемред ночи при 4 ° C. Исправлена ткани парафин, секционные и установлены на салазках для гистологического анализа и иммунофлюоресценции.
6. Представитель Результаты
Этот протокол описывает все шаги, необходимые для (я) подготовки очищенной Schistosoma mansoni яйца для использования в естественных условиях (рис. 1), (II), внимания и оспаривать мышей с этими яйцами и (III), восстановление органов для обследования легких воспалительной реакции. Эта модель в естественных условиях воспроизводимо диски мощным Th2 легких воспалительной реакции. Об этом свидетельствует воспаление дыхательных путей и эозинофилия как визуализация на BAL форменных элементов и cytocentrifuge препаратов (рис. 2). H & E-окрашенные срезы легких может быть рассмотрен на яйцо вызванных гранулемы (рис. 3а), и иммунофлуоресцентного окрашивания легких секций позволяет визуализировать альтернативы активированными макрофагами и Th2 цитокин-индуцированного генов, таких как сопротивлениеолова, как молекулы (RELM) α (рис. 3б). Антиген-специфических CD4 Th2 ответа цитокинов изучается ИФА для ИЛ-5, IL-4 и IL-13 антиген-стимулированных parathymic лимфатических узлов (рис. 4).

Рисунок 1 Schistosoma mansoni яйцо инъекции модель Представитель фотографии гранулематозный печени, характерных для высоких S.mansoni яйца бремени, и S.mansoni яйца показаны -.. Средний размер (L) 120 мкм (Вт) 50 мкм.

Рисунок 2. С. mansoni яйцо инъекции диски воспаления дыхательных путей. А. BAL номера ячейки (x10 5) с наивной (N) или S.mansoni (Sm) яйцо впрыском мышей. * P <0,05. Б. Cytocentrifuge подготовки клеток БАЛ. Mac, макрофагов, Еос, эозинофилов, лимфы, лимфоциты. Бар, 10 мкм.

Рисунок 3. Визуализация легких гранулемы и наоборот активированными макрофагами окружающие яйцо S.mansoni. А. Легочная гранулемы окружающих Sm яйцо (черная стрелка) было визуализировать в H & E-окрашенные срезы легких. Б. иммунофлуоресценции для окрашивания RELMα (зеленый), маннозы рецепторов (красный) и DAPI (синий) показывает альтернативы активированными макрофагами (белая стрелка) в гранулемы окружающих autofluorescent Sm яйцо (черная стрелка). Бар, 50 мкм.

Рисунок 4. S.mansoni яйцо антиген-специфических Th2 ответа цитокинов. Слив parathymic лимфатических узлов с наивной (N) и Sm яйцо введенный мышам стимулировали Sm </ EM> яйцо антигена в течение 72 часов, а затем с помощью ИФА супернатантов для Ил-4, ИЛ-5 и ИЛ-13. Масштаб, нг / мл. * P <0,05.