$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Было высказано предположение, что изменения внутриклеточного кальция опосредуют индукцию ряда важных форм синаптической пластичности (например, гомосинаптическое облегчение) 1. Эти гипотезы могут быть проверены путем одновременного мониторинга изменений внутриклеточного кальция и изменений в синаптической эффективности. Мы демонстрируем, как этого можно достичь, сочетая кальциевую визуализацию с методами внутриклеточной записи. Наши эксперименты проводятся на буккальном ганглии моллюска Aplysia californica. Этот препарат имеет ряд экспериментально выгодных особенностей: ганглии могут быть легко удалены из аплизии, а в экспериментах используются взрослые нейроны, которые создают нормальные синаптические связи и имеют нормальное распределение ионных каналов. Благодаря низкой скорости метаболизма животного и относительно низким температурам (14-16 °C), которые являются естественными для Aplysia, препараты стабильны в течение длительных периодов времени.
Для обнаружения изменений внутриклеточного свободного кальция мы будем использовать непроницаемую для клеток версию Calcium Orange 2, которая легко "загружается" в нейрон с помощью ионофореза. Когда этот длинноволновый флуоресцентный краситель связывается с кальцием, интенсивность флуоресценции увеличивается. Кальций оранжевый обладает быстрыми кинетическими свойствами 3 и, в отличие от ратиометрических красителей (например, Fura 2), не требует фильтрующего колеса для визуализации. Он достаточно фотостабилен и менее фототоксичен, чем другие красители (например, флуоресцентный-3) 2,4. Как и все нератиометрические красители, Кальций Оранжевый указывает на относительные изменения концентрации кальция. Но, поскольку невозможно учесть изменения концентрации красителя из-за нагрузки и диффузии, он не может быть откалиброван для получения абсолютных концентраций кальция.
Вертикальный сложный микроскоп с неподвижным столиком использовался для изображения нейронов с помощью ПЗС-камеры, способной записывать около 30 кадров в секунду. У Aplysia это временное разрешение более чем адекватно для обнаружения даже одного вызванного спайком изменения внутриклеточной концентрации кальция. Острые электроды одновременно используются для индукции и регистрации синаптической передачи в идентифицированных пре- и постсинаптических нейронах. По завершении каждого испытания пользовательский сценарий объединяет данные электрофизиологии и визуализации. Для обеспечения правильной синхронизации мы используем световой импульс от светодиода, установленного в порту камеры микроскопа. Манипулирование пресинаптическими уровнями кальция (например, с помощью внутриклеточной инъекции EGTA) позволяет нам проверить конкретные гипотезы о роли внутриклеточного кальция в опосредовании различных форм пластичности.