1. Ex ово культуры
- Свежие оплодотворенные яйца откладываются на их длинной стороне в принудительной проект инкубатора (BSS160, Эрет, Германия) на 37,5 ° С, влажности 60% для инкубации. Яйца хранились при температуре 12 ° С в течение более одной недели, не должны использоваться.
- После инкубации в течение 2,5 дней (около этап HH17), вынуть яйца и маркировать сверху карандашом, чтобы указать направление для взлома.
- До трещин, залить 20 мл стерильной дистиллированной воды в чистую большой чашке Петри (диаметром 145 мм; Greiner Bio-One GmbH, Германия).
- Установите еще один небольшой стерильной чашке Петри (диаметром 94 мм, Greiner Bio-One GmbH) в большой чашке Петри.
- Трещина яйца на нижнюю против острые края металла, осторожно откройте яйца и передать все содержимое каждого яйца в небольшой чашке Петри.
- Накройте большой чашке Петри с крышкой и поместить его в другой инкубатор (BINDER GmbH, Tuttlinge, Германия)для дальнейшей культуры в 37,5 ° C около 60% влажности. После инкубации в течение нужное количество дней, эмбрионы могут быть использованы для электропорации.
2. Подготовка к бывшим ово Электропорация
- Потяните стеклянных капилляров с микроэлектрода съемник (ПУЛ-100 микропипетки Puller, инструменты Всемирной Precision, Берлин, Германия) с использованием стеклянных трубок 1,0-мм (TW100F-4; инструменты Всемирного Precision) и разбить кончик стеклянные капилляры в соответствующие диаметре.
- Настройте соответствующие параметры (например, различные напряжения для различных тканей и размеров эмбрионов) для электропорации и подключения электродов электропоратора (CUY21-Edit, Непско генов, Чиба, Япония) в соответствии с целевым тканям и размеры эмбрионов.
- Подготовить раствор, содержащий плазмиду плазмид в векторном pCAGGS кодирования генов-мишеней, например, cadherin7 (Cad7; pCAGGS-Cad7 с концентрацией 2,0 мкг / мкл) и маркерный ген,например, зеленый флуоресцентный белок (GFP, pCAGGS-GFP при концентрации 0,25 мкг / мкл). Затем добавить Быстрый зеленый с конечной концентрации 0,1% (Sigma) для обозначения плазмиды решение с зеленым цветом.
- Загрузите стеклянный капилляр с плазмиды решения с использованием рот пипеткой.
3. Перенос генов в куриный оптический Tectum экс ово Электропорация
- После того, как бывший ово культуры, например, путем инкубации день (E) 6 куриных эмбрионов, которая используется для ово электропорации.
- Тщательно разорвать желточного и амнион мембраны на оптические покрышки с мелким щипцы и добавить 3 капли стерильного 0,9% раствора хлорида натрия на поверхности покрышки.
- Вводите плазмиды раствора в полость покрышки от стеклянного капилляра используя рот пипеткой.
- Установите электроды с вольфрамовым катодом иглы и анод прямоугольника пластины (СиУ 661-3х7, Непско Gene) рядом покрышки, исразу же применять электрические импульсы (шесть импульсов, 25 V, 60 мс длительность импульса 100 мс интервалов в каждом конкретном случае), производимых электропоратора на покрышки.
- Накройте большой чашке Петри с крышкой и вернуть его в инкубаторе. После инкубации в соответствующие дни (например, 2 или 3 дня после электропорации), покрышки собираются и фиксируются в иммунной (рис. 1) и биологические обнаружения.
4. Представитель Результаты
Успешное гиперэкспрессией экзогенного белка GFP Cad7 и экс ово электропорации показано на рисунке 1 в качестве примера. Когда Cad7 плазмиды вместе с GFP плазмида электропорации в покрышки на E6, два или три дня после электропорации эмбрионы были собраны и закреплены. В E8, белок GFP сильно выражено в покрышки в целом изображение горы (рис. 1А-C). Кроме того, в разделах покрышки на E9,GFP белка (зеленый на рисунке 1D) и Cad7 белка (красный рис 1E) являются coexpressed (желтый рис 1F), предполагая, что бывший ово электропорации является успешным методом для переноса генов в старших куриных эмбрионов в естественных условиях.

Рисунок 1. Когда плазмиды кодирования GFP и Cad7 которые cotransfected в куриных покрышки на E6, два или три дня после того, как бывший ово электропорация, GFP белка (зеленый) сильно выражено, как показано на wholemount изображений (АС) в Е8. В разделах покрышки на E9, GFP белка (зеленый D) и Cad7 белка (красный Е) coexpressed (желтый F). BF, яркое поле изображения. Масштаб по сайту: 200 мкм для переменного тока, 100 мкм, D для DF.