$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Методы микрофлюидной инкапсуляции ранее использовались для захвата клеток в водных монодисперсных каплях размером с пиколитр, обеспечивая удержание из объемной жидкой среды с применением в высокопроизводительном скрининге, цитометрии и масс-спектрометрии. Мы описываем метод, позволяющий не только инкапсулировать отдельные клетки, но и многократно захватывать определенное количество клеток (здесь мы демонстрируем одно- и двухклеточную инкапсуляцию) для изучения как изоляции, так и взаимодействия между клетками в группах контролируемых размеров. Комбинируя методы генерации капель с упорядочиванием клеток и частиц, мы демонстрируем контролируемую инкапсуляцию частиц размером с клетку для эффективной непрерывной инкапсуляции. Используя водную суспензию частиц и несмешивающееся флюоруглеродное масло, мы генерируем водные капли масла с помощью сопла, фокусирующего поток. Скорость потока в воде достаточно высока для создания упорядоченного количества частиц, которые достигают сопла на целочисленных кратных частотах частоты генерации капель, инкапсулируя контролируемое количество ячеек в каждой капле. Для получения репрезентативных результатов в качестве клеточных суррогатов используются частицы полистирола размером 9,9 мкм. Данное исследование показало, что эффективность инкапсуляции одной частицы Pk=1 составляет 83,7% и эффективность инкапсуляции двух частиц Pk=2 составляет 79,5% по сравнению с соответствующими эффективностью Пуассона 39,3% и 33,3% соответственно. Показано, что эффект постоянной концентрации клеток и частиц имеет большое значение для эффективной инкапсуляции, а также рассматривается вопрос о переходах от капель к струйным.
Введение
Суспензии водных клеток непрерывной среды имеют общую жидкую среду, которая позволяет клеткам взаимодействовать параллельно, а также гомогенизирует эффекты конкретных клеток при измерениях из среды. Высокопроизводительная инкапсуляция клеток в капли размером в пиколитры ограничивает образцы для защиты капель от перекрестного загрязнения, позволяет измерить клеточное разнообразие в образцах, предотвращает разбавление реагентов и экспрессированных биомаркеров, а также усиливает сигналы от продуктов биореактора. Капли также обеспечивают возможность повторного слияния капель в более крупные водные образцы или с другими каплями для исследований межклеточной сигнализации. 1,2 Снижение разбавления подразумевает более сильные сигналы обнаружения для более точных измерений, а также возможность уменьшения потенциально дорогостоящих объемов образцов и реагентов. 3 Инкапсуляция клеток в капли была использована для улучшения обнаружения экспрессии белка,4 антител,5,6 ферментов,7 и метаболическойактивности8 для высокопроизводительного скрининга, а также может быть использована для улучшения высокопроизводительной цитометрии. 9 В дополнительных исследованиях представлены приложения для био-электронапыления клеток, содержащих капли для масс-спектрометрии10 и покрытия целевых поверхностных ячеек. 11 Некоторые области применения, однако, были ограничены из-за отсутствия возможности контролировать количество клеток, инкапсулированных в капли. В данной работе мы представляем способ упорядоченной инкапсуляции12, который увеличивает продемонстрированную эффективность инкапсуляции для одной и двух ячеек и может быть экстраполирован для инкапсуляции большего числа ячеек.
Для достижения монодисперсной генерации капель, микрофлюидная "фокусировка потока" позволяет создавать капли контролируемого размера одной жидкости (смесь водных клеток) внутри другой (непрерывная масляная фаза) с помощью форсунки, в которой потоки сходятся. 13 Для заданной геометрии форсунки частота образования капель f и размер капель могут быть изменены путем регулировки расхода масла и воды Qoil и Qaq. По мере увеличения скорости потока потоки могут переходить от образования капель к нестабильной струе водной жидкости из сопла. 14
Когда водный раствор содержит взвешенные частицы, частицы инкапсулируются и изолируются друг от друга в сопле. Для генерации капель с использованием случайно распределенной водной клеточной суспензии средняя доля капель Dk, содержащих k клеток, определяется статистикой Пуассона, где Dk = λk exp(-λ)/(k!) и λ — среднее количество клеток в капле. Доля клеток, которые попадают в «правильно» инкапсулированные капли, рассчитывается по формуле Pk = (k x Dk)/Σ(k' x Dk'). Тонкое различие между этими двумя показателями заключается в том, что Dk относится к использованию водной жидкости и количеству капельной сортировки, которая должна быть завершена после инкапсуляции, а Pk относится к использованию образца клетки. В качестве примера можно использовать разбавленную клеточную суспензию (с низким λ) для инкапсуляции капель там, где большинство капель, содержащих клетки, содержат только одну клетку. В то время как показатель эффективности Pk будет высоким, большинство капель будут пустыми (низкий Dk), что потребует механизма сортировки для удаления пустых капель, что также снизит пропускную способность. 15
Сочетание генерации капель с инерциальным упорядочиванием дает возможность инкапсулировать капли с более предсказуемым количеством ячеек в капле и более высокой пропускной способностью, чем при случайной инкапсуляции. Инерциальная фокусировка была впервые открыта Сегре и Зильбербергом16 и относится к тенденции частиц конечного размера мигрировать в положения бокового равновесия в потоке в канале. Инерционное упорядочивание относится к тенденции частиц и клеток пассивно организовываться в равномерно распределенные, ступенчатые, постоянные скоростные последовательности. Как фокусировка, так и упорядочивание требуют достаточно высоких скоростей потока (большое число Рейнольдса) и размеров частиц (большое число Рейнольдса). 17,18 Здесь число Рейнольдса Re =uDh/ν и число Рейнольдса частиц Rep =Re(a/Dh)2, где u — характеристическая скорость потока, Dh [=2wh/(w+h)] — гидравлический диаметр, ν — кинематическая вязкость, a — диаметр частицы, w — ширина канала, h — высота канала. Эмпирически длина поездов, необходимая для создания полностью упорядоченных поездов, уменьшается по мере увеличения Re и Rep. Следует отметить, что высокие требования к Re и Rep (для данного исследования порядка 5 и 0,5 соответственно) могут вступать в противоречие с необходимостью поддержания низких скоростей потока в воде во избежание струи в сопле генерации капли. Кроме того, высокая скорость потока приводит к более высоким напряжениям сдвига на элементах, которые не рассматриваются в этом протоколе. Предыдущее исследование заказанной инкапсуляции показало, что более 90% одиночно инкапсулированных клеток HL60 при условиях потока, аналогичных тем, которые были в этом исследовании, сохраняют целостность клеточной мембраны. 12 Тем не менее, влияние величины и временных масштабов напряжений сдвига необходимо будет тщательно учитывать при экстраполяции на различные типы ячеек и параметры потока. Наложение ограничений на порядок ячеек, генерацию капель и жизнеспособность ячеек и скорости потока в воде обеспечивает идеальный рабочий режим для контролируемой инкапсуляции одиночных и нескольких ячеек.
Поскольку очень мало исследований посвящено межчастичному интервалу между цепочками,19,20 определение расстояния проще всего сделать эмпирически и будет зависеть от геометрии канала, скорости потока, размера частиц и концентрации частиц. Тем не менее, равное боковое расстояние между последовательностями означает, что клетки приходят через предсказуемые, последовательные интервалы времени. Когда образование капель происходит с той же скоростью, с которой упорядоченные ячейки поступают в сопло, элементы инкапсулируются в каплю контролируемым образом. Этот метод был использован для инкапсуляции отдельных элементов с пропускной способностью порядка 15 кГц,12 что является значительным улучшением по сравнению с предыдущими исследованиями, в которых сообщалось о скоростях инкапсуляции порядка 60-160 Гц.4,15 В работе по контролируемой инкапсуляции более 80% капель содержали одну и только одну клетку, что является значительным улучшением эффективности по сравнению с пуассоновской (случайной) статистикой. что прогнозирует эффективность менее 40% в среднем. 12
В предыдущей работе по контролируемой инкапсуляции,12 среднее количество частиц в капле λ было настроено на обеспечение инкапсуляции одиночных клеток. Мы предполагаем, что с помощью настройки скорости потока мы можем эффективно инкапсулировать любое количество ячеек в капле, когда λ равно или близко к желаемому количеству ячеек в капле. В то время как инкапсуляция одиночных клеток ценна для определения индивидуальных реакций клеток на стимулы, многоклеточная инкапсуляция предоставляет информацию, относящуюся к взаимодействию контролируемых чисел и типов клеток. Здесь мы представляем протокол, репрезентативные результаты с использованием полистирольных микросфер и обсуждение контролируемой инкапсуляции нескольких ячеек с использованием пассивного инерционного канала упорядочивания и сопла генерации капель.