Методическая статья

Бляшек на мышиной норовирус

58.3K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/4297

⸱

22 августа 2012 г.

 ,  , 
1Department of Microbiology and Immunology, University of Michigan, Ann Arbor

В этой статье

Краткое содержание

Здесь мы опишем метод количественной инфекционных частиц мышиных норовируса (МНВ), которое является единственным норовируса, который эффективно размножается в культуре клеток. Бляшек использует тропизм Многовершинное для мышиных макрофагов и может быть адаптирован для использования с биологической или экологической образцов, содержащих МНВ.

Аннотация

Мышиный норовирус (MNV) является единственным представителем рода Norovirus, который эффективно размножается в культурах тканей 1, 2. При инфицировании мышиных дендритных клеток или макрофагов MNV-1 наблюдаются лизис клеток и цитопатический эффект (ЦПЭ) 1. Эту особенность MNV-1 можно использовать для количественного определения числа инфекционных частиц в данном образце с помощью метода агарного слоя (метод бляшек) 1. Метод бляшек основан на способности MNV-1 лизировать клетки и образовывать в сплошном клеточном монослое отверстия, называемые бляшками 3.

Для обнаружения вирусных инфекций в культурах тканей, полученных образцах тканей, клинических и экологических пробах можно использовать несколько методов, но не все они позволяют измерить количество инфекционных частиц (например, qRT-PCR). Одним из способов количественного определения инфекционных вирусных частиц является метод бляшек 3, который будет подробно описан ниже. Вариантом метода бляшек для MNV является метод флуоресцентных фокусов, при котором антиген MNV иммуноокрашивается в монослоях клеток 4. Этот анализ может быть более быстрым, так как экспрессия вирусного антигена предшествует образованию бляшек. Он также полезен для титрования вирусов, неспособных образовывать бляшки. Однако метод флуоресцентных фокусов требует дополнительных ресурсов по сравнению с методом бляшек, таких как антитела и микроскоп для подсчета фокус-формирующих единиц. Инфекционный MNV также может быть количественно определен путем установления 50% инфекционной дозы для культур тканей (TCID50) 3. Этот метод определяет количество вируса, необходимое для вызвать ЦПЭ в 50% инокулированных клеток культуры тканей путем конечного титрования 5. Однако его предел обнаружения выше по сравнению с методом бляшек 4.

В данной статье мы описываем протокол метода бляшкообразования, который может быть использован для эффективного определения количества инфекционных частиц MNV в биологических или environmental-образцах 1, 4, 6. Этот метод основан на подготовке 10-кратных серийных разведений образцов, содержащих MNV, которые используются для инокуляции монослоя пермиссивных клеток (линия клеток мышиных макрофагов RAW 264.7). Вирусу дают возможность прикрепиться к клеточному монослою в течение определенного периода времени, после чего его аспирируют перед тем, как покрыть клетки смесью агарозы и среды для культивирования клеток. Агар способствует распространению вирусного потомства на соседние клетки, ограничивая при этом распространение на удаленные клетки. В результате инфицированные клетки лизируются и образуют в монослое отверстия, называемые бляшками. При достаточном распространении вируса бляшки становятся видимыми после окрашивания клеток красителями, такими как нейтральный красный, метиленовый синий или кристаллический фиолетовый. При низких разведениях каждая бляшка образуется из одной инфекционной вирусной частицы и ее потомства, которое распространяется на соседние клетки. Таким образом, подсчет количества бляшек позволяет рассчитать количество бляшкообразующих единиц (PFU) в неразведенном образце 3.

Протокол

1. Культивирование линии макрофагов RAW 264.7 сотовых

  1. Поддерживать RAW 264.7 клетки (АТСС, каталог # TIB-71) в DMEM-10 средств массовой информации, который состоит из DMEM с высоким содержанием глюкозы с 10% (V / V) низкого эндотоксина эмбриональной телячьей сыворотки (<10 КОЕ / мл), 10 мМ HEPES , 100 ед / мл пенициллина, 100 мкг / мл стрептомицина, 1 мМ не-незаменимых аминокислот, 2 мМ L-глутамина. Клетки обычно поддерживают в 175 см 2 культуре ткани колбах, содержащих 35 мл среды в колбе и инкубировали при 37 ° C и 5% CO 2 в культуре ткани инкубатора. Тем не менее, любой размер колбы могут быть использованы с объемом средств массовой информации, соответствующий по размеру колбы.
  2. Чтобы разделить клеток: аспирации от старых средств массовой информации, добавить 10 мл свежей DMEM-10 средств массовой информации в клетки, а затем очистить клетки от дна колбы, с помощью мобильного скребком. Далее, ресуспендирования клеток в гомогенный раствор путем составления клеток в 10 мл пипетки и с силой сжимая клеток через пипетку пр.Essed на дно колбы. Повторите эти действия не менее 3 раз, так что клетки больше не слипаются. Проверьте с помощью световой микроскопии, что суспензии отдельных клеток был создан. Затем перенесите 1 мл (1:10 разбавление или ~ 1х10 7 клеток) - 2 мл (1:5 разбавление или ~ 2х10 7 клеток) клеточной суспензии в новый 175 см 2 колбы, и принести окончательный объем носителей до 35 мл.
  3. Сплит клетки, когда они почти сливающийся (~ 1x10 8 клеток total/175 см 2 колбы): каждые три дня, если, начиная с разведении 1:10 или раз в два дня, если, начиная с разведения 1:5. Используйте световой микроскопии, чтобы проверить морфологии клеток до разделения клеток. Большинство клеток следует осмотреться и не активирован. Активированные клетки имеют гранул и / или расширенный, тонкие морфологии с придатками. Не позволяйте клетки разрастаются, как те клетки, как правило, не образуют бляшки. Следите за пассаж и часто начать таянием ниже отрывок аликвоты клеток. (Мы используем проход 30, как отсечения).

2. Infect RAW 264.7 Клетки с МНВ посевной

  1. Семенной RAW 264.7 клеток в 6-луночные планшеты (3,5 см в диаметре) при плотности 1x10 6 жизнеспособных клеток / мл в DMEM-10 средств массовой информации, и добавить 2 мл этой суспензии в каждую лунку. Важно, чтобы распространять клетки равномерно в скважинах либо качания пластин вручную по крайней мере, 10 раз или с помощью аппарата для качания ~ 10 мин. Не вихрем пластин, так как это приведет к клеткам кластера в центре колодца. Место плит в культуре ткани инкубатора (при 37 ° C и 5% CO 2). Разрешить клетки приложить на ночь или по крайней мере 4 часа при 37 ° C. Клетки должны быть 60 - 80% вырожденная для бляшек и равномерно распределяется по всему хорошо.
  2. На следующий день, подготовка посевного вируса, который может быть от МНВ-инфицированных клеток в культуре ткани или из ткани гомогенизированный или фекальных образцов МНВ-инфицированных мышей. При использовании образцов ткани, размером с горошину пирасширения ECE ткани гомогенизируют в 2 мл завинчивающейся крышкой стерильные пробирки, содержащие диоксид кремния бисера в 1 мл DMEM-10 помощью гомогенизатора тканей (например, MagnaLyser; Roche). Для образцов фекалий, не более 3 фекальные шарики следует перемешать в 1 мл среды. Все образцы затем замораживают (при -80 ° С) и размораживать один раз перед выполнением бляшек.
  3. Подготовка 10-кратные разведения вируса посевной в полной DMEM-5 средой, которая состоит из DMEM / High глюкозы, 5% (объем / объем) низкого эндотоксина эмбриональной телячьей сыворотки (<10 КОЕ / мл), 10 HEPES мм, 100 Ед / мл пенициллина, 100 мкг / мл стрептомицина, 1 мМ не-незаменимых аминокислот, 2 мМ L-глутамина.
  4. Десять-кратные серийные разведения готовятся в 24-луночные планшеты: повторитель пипетка используется для дозирования 1,35 мл средства массовой информации в нескольких скважинах, 10 -1 разбавления производится путем смешивания 1,35 мл СМИ и 0,15 мл, содержащих вирус образца, а затем 0,15 мл 10 -1 разведения добавляют 1,35 мл СМИ, чтобы сделать 10 -2 dilutioп и так далее. Важно, чтобы изменить советов каждый раз при новом разбавлении. Многоканальной пипетки может быть использован для разведения несколько образцов одновременно с двумя советами установки в одну лунку в 24-луночный планшет передачи общим объемом 0,15 мл на лунку (рис. 3А).
  5. Типичный диапазон разбавления для гомогенатах тканей и кала содержание является 10 -1 до 10 -3. Тем не менее, таблички из этих образцов, как правило, меньше по сравнению с теми из образцов ткани культуры. Кроме того, в некоторых случаях 1:100 разведение образцов фекалий необходимо для достаточно разбавленных любые токсичные компоненты кала, которые могут нарушить монослоя клеток, препятствуя тем самым возможность рассчитывать бляшек. Разбавления диапазоне лизатов культуре ткани зависит от времени достопримечательности во время жизненного цикла вируса. Растворы, которые идут до 10 -9 могут быть необходимы на пике инфекции.
  6. После того, последовательные разведения готовятся, маркировать 6-луночный планшеты содержащие RAW 264.7 монослоев (из раздела 2.1) с именем образца и разведения бытия покрытием. Одна пластина в то время, удалить все средства массовой информации, щелкая его или аспирационной его. Сразу же после этого добавляют 0,5 мл разведенного образца в колодец, а затем повторите с дубликатом хорошо, прежде чем перейти к следующему разведения. Как только все 3 разведения добавляют в одну пластину, наклоном пластины вперед и назад вручную, чтобы убедиться, что все клетки были покрыты. Ручка одной пластины на время, чтобы убедиться, что клетки не будут высыхать.
  7. После добавления 0,5 мл разведения в каждую лунку, стек пластины вертикально и инкубировать их в течение 1 часа при комнатной температуре. Поскольку объем в каждую лунку добавляют не является достаточным для покрытия монослоя полностью, пластины должны быть слегка наклонена вперед и назад вручную каждые 10-15 мин или разместить на аппарате качалка (~ 18 колебаний в минуту). Это предотвращает клетки от высыхания.

3. Низкой температурой плавления агарозы (легкоплавкий) Overlay подготовка

Примечание: целесообразно иметь несколько бутылок с автоклавного легкоплавкий агарозном подготовлены заранее. Агарозы может быть повторно расплавляют в микроволновой печи перед использованием.

  1. Рассчитайте количество необходимого для наложения общего объема пластины до 1 часа инкубации завершена. Объем необходимых составляет 2 мл / лунку или 12 ml/6-well пластины. Подготовить агарозный (см. раздел 3.2) и СМИ (см. раздел 3.3) в отдельности.
  2. Для получения агарозы, приостановить 3 г легкоплавкий агарозы в общем объеме 100 мл дистиллированной воды (3% вес / объем) в стеклянной бутылке. Автоклаве в течение 20-30 мин. (Если агарозном был уже подготовлен, прежде чем руки, переплавить агарозы в микроволновой печи.) Важно, чтобы уравновесить легкоплавкий агарозы до 42 ° С на водяной бане перед использованием, потому что если агарозном слишком жарко, он будет убивать клетки. Убедитесь, что уровень воды равен или выше уровня агарозы, чтобы избежать нежелательной кристаллизации.
  3. Для приготовления средства массовой информации: сделать 100 мл 2x MEM средств массовой информации, который состоит из2x MEM, 10% (V / V) низкого эндотоксина эмбриональной телячьей сыворотки (<10 КОЕ / мл), 10 мМ HEPES, 100 Ед / мл пенициллина, 100 мкг / мл стрептомицина, 4 мМ L-глутамина. Уравновесьте средствах массовой информации до 37 ° С на водяной бане.
  4. Смешать оба легкоплавкий агарозы и 2x СМИ MEM вместе в стерильный флакон в соотношении 1:1 непосредственно перед наложением зараженные монослоя клеток. Если более, чем 200 мл наложения необходимо, сплит объемом в несколько бутылок и хранить в 37 ° С водяной бане, пока готов к использованию.
  5. В конце 1 ч инкубации (см. раздел 2.7), аспирацию посевного от каждой скважины. Постепенно добавить 2 мл наложения на краю каждой лунки путем размещения пипетки к стенке каждой лунке. До 5 пластин могут быть обработаны одновременно без клетки высыхания.
  6. Разрешить наложение укрепить примерно на 10 мин при комнатной температуре перед размещением пластин вертикально в культуре ткани инкубатора. Инкубируйте пластины в течение 48 ч при 37 ° С в 5% СО 2.
  7. ПослеИнкубационный период, бляшки слабо видимых невооруженным глазом, так что проверить неокрашенных пластин на наличие бляшек. Если нет бляшки видны, инкубировать в течение 4 дополнительных часа и проверьте еще раз. Однако, максимальное время инкубации не должен превышать 72 часов.

4. Визуализация Бляшки по нейтрального красного окрашивания

  1. Для визуализации бляшки, нейтральный красный красящий раствор готовится путем добавления 3 мл нейтрального красного (0,33% вес / объем в DPBS, Sigma, каталожный номер N2889) в каждом 97 мл 1x PBS (культуры тканей класса, Mg 2 + -, Ca 2 + - бесплатно; Gibco, каталожный номер 10010). Рассчитайте объем нейтральный красный красящий раствор, необходимых для эксперимента: 12 мл нейтрального раствора красного цвета окраски требуются для каждого 6-луночный планшет. Затем добавьте 2 мл в каждую лунку. Хотя некоторые протоколы бляшек требуется плагин агарозном быть удалены из скважин, в этом протоколе нейтральный красный красящий раствор добавляют непосредственно на перекрытия.
  2. После одного часа винкубации при температуре 37 ° C, проверьте, если бляшки видны с нейтральным красным окрашиванием решение еще в скважинах. Если бляшки не являются очевидными, позволяют окрашивания продолжить еще на час. Продолжайте инкубацию до бляшки видны. (Примечание:. Окрашивания более чем на 3 часа не является оптимальным, и если нет бляшки видны в положительном контрольном образце после 3 часов окрашивания, бляшек не работает должным образом) После окрашивания завершен, аспирации нейтральный красный красящий раствор , обеспечение вилку агарозном не нарушается, а затем приступить к подсчету бляшек.
  3. Граф бляшки, помещая пластину вверх дном на светлом окне и маркировки считается точка на бляшках, чтобы избежать дублирования пунктам. Выберите разбавления для подсчета бляшек в скважинах, где бляшки четко разделены (т.е. без визуального доказательства слияния бляшек вместе). Если это возможно, рассчитывать бляшки в двух разведениях. Важно отметить, что налет размер может варьироваться в зависимости от штамма МНВ, вирус посевной, и зависит отСостояние RAW 264.7 клетках во время бляшек.
  4. Если нет бляшки видны в колодец, либо не было вируса, присутствующего в образце или количество вируса была ниже предела обнаружения бляшек. В этом случае красные пятна скважин с подобным цветом, как другие доски содержащих скважин. Кроме того, отсутствие бляшек наблюдается, когда есть слишком много вирусных частиц, присутствующих в данной разведения. Это приводит к лизису всего монослоя и колодцы появляются оранжевый / желтый цвет.
  5. Рассчитать вирусные титры. Добавить числа бляшек в обеих скважинах в одном разведении и умножить на коэффициент разбавления (т.е. 1 мл 2 скважины, если инфицированы 0,5 мл). Это даст количество бляшкообразующих единиц (БОЕ) в посевной объемом 1 мл. Например, на рисунке 4 на 10 -2 разведения, одной скважины (с пометкой «II») имеет 14 мемориальные доски и другие хорошо (с пометкой "V") имеет 17 мемориальные доски. Таким образом, титр вируса будет 14x10 2 + 2 = 17x10 3100 (3.1x10 3) БОЕ / мл.

5. Представитель Результаты

Инфекционные МНВ-1 частиц могут быть количественно с помощью бляшек, как указано схематически на рисунке 1. Рисунок 2А показывает, а с монослоем RAW 264.7 клетками непосредственно перед инфекцией, а на рисунке 2B показаны три видимые таблички указывается римскими цифрами I, II и III в скважине. Индивидуальные шаги анализа показаны на рис 3А-3А F. показывает подготовке 10-кратное разбавление серии вирус-содержащих образцов. 3В показана передача разведения дублировать скважины 6-луночный планшет. Рис 3C показывает качалки аппаратов, используемых для инкубации RAW 264.7 клетках с посевной при комнатной температуре в течение 1 ч. Рис 3D показывает клеток, которые накладываются с легкоплавкий. MEMсмеси. рис 3E показывает планшет при комнатной температуре, чтобы наложение укрепить, а на рис 3F показывает клеток, которые окрашивали 0,01% раствор нейтрального красного 48 час позже. После окрашивания клеток в течение 1-3 ч и аспирационных нейтральный красный красящий раствор, бляшки видны и могут быть подсчитаны (рис. 4).

figure-protocol-1
Рисунок 1. Схема анализа протоколов доска МНВ.

figure-protocol-2
Рисунок 2. Представитель изображения и монослоя до заражения и после образования бляшек. A) RAW 264.7 клетки культивировали в течение ночи и отображаемого под световым микроскопом при увеличении 20x. B) Клетки окрашивали 0,01% раствор нейтрального красного после 48 чГ инфекции и визуализировать под световым микроскопом при увеличении 4x. Римские цифры I, II, III и указать три видимых бляшек.

figure-protocol-3
Рисунок 3. Представитель изображений различных этапов анализа налета. A) MNV-1 посевной готовят в 10-кратном разведении. B) Посевной добавляется в ячейку монослоев в двух экземплярах скважин. C) элементы и посевной насиживают качалки в течение 1 часа при комнатной температуре. D) Клетки обложил смеси 1:1 легкоплавкий агарозы и 2x MEM СМИ. E) Планшеты инкубировали в течение 10 мин при комнатной температуре, чтобы наложение чтобы затвердеть. F) окрашивания клеток с нейтральным красным красящий раствор 48 часов после инфицирования.

figure-protocol-4
Рисунок 4. МНВ-1 формы бляшек в клетке monolAyers. Показаны здесь является представителем пластины теста налет 48 часов после заражения, показывая бляшек окрашивали нейтральный красный красящий раствор после 1 часа инкубации. Пластине показывает дубликат скважин из трех 10-кратные разведения. Wells помечены римскими цифрами I и IV соответствуют 10-1 разведения, II и V соответствуют 10-2 разведения, III и VI соответствуют 10-3 разведения. Титр вируса образца указано ниже (см. раздел 4.5 для получения информации о расчете).

Обсуждение

Метод бляшек для МНВ-1, представленная здесь, способ количественной инфекционных частиц МНВ. Следуя анализ шаги показано на рисунке 3, можно получить воспроизводимые вирусные титры. Предел обнаружения анализа зависит от исходного разведения используются. Когда, начиная с 1:10 разведение образца, как описано выше, предел обнаружения бляшек составляет 10 БОЕ (например, 1 налет виден в разведении 10 -1). Так как каждая доска представляет собой один вирус, бляшек также может быть использован для очистки клональной популяции МНВ, выбирая изолированные бляшки и распространения их, как описано ранее 1. Кроме того, налет очищений также может быть использован для разделения отдельных популяции вируса от смешанных популяций вируса. Ограничение использования доски тест для обнаружения инфекции МНВ, что не все МНВ штаммы образуют бляшки 4. Тем не менее, это может быть возможным, чтобы преодолеть inabiliти некоторых штаммов МНВ, выделенных из животных, с образованием бляшек на серийно пассажи этих вирусов в культуре ткани 7. Альтернативой бляшек является измерение инфекционных частиц через TCID 50 Техника 3, 4. Этот анализ количественно количество вируса, необходимых для производства CPE у 50% привитых культуре ткани клеток после конечной точки разведения и занимает 1 неделю, чтобы закончить на Многовершинном 4. В дополнение к тому медленнее, чем бляшек, TCID 50 Анализ также не столь чувствительны (предел обнаружения = 200 TCID 50 / мл) в связи с токсичностью образцы тканей для RAW 264.7 клетках 4.

Несмотря на критические шаги в протоколе были описаны всей протокол, в следующем разделе приводится краткая информация для облегчения поиска и устранения неисправностей. Наиболее важным шагом в протокол, чтобы RAW 264.7 клетки остаются жизнеспособными во всем анализе поддерживать репликацию вируса. Это можетконтролировать на каждом этапе анализа с помощью световой микроскопии. Жизнеспособность клеток обеспечивается двумя способами. Прежде всего, следует позаботиться, чтобы не позволить клетки высыхают при работе с плитами. Таким образом, плиты засевают по одной за раз, качали при заражении период, и должны оставаться закрытыми, когда они не решаются. Во-вторых, решение добавить на клетки должны быть доведены до ~ 37 ° C. Кроме того, это жизненно важно для общего состояния здоровья RAW 264.7 клетками для поддержания их в средах, содержащих низкое эндотоксина сыворотки (<10 КОЕ / мл), что ограничивает активацию клеток. Кроме того, мы наблюдали более высокий процент неудач бляшек при использовании клеток от прохождения 30 или выше. Хотя это, скорее всего, зависят от лаборатории до лаборатории, важно, чтобы включить положительный контроль (например, образца с известным титр вируса) для обеспечения воспроизводимых титры, особенно при использовании выше отрывок RAW 264.7 клетках. Чтобы ограничить использование клетках высших проход, желательно, чтобы заморозить флаконов рано пассаGE клеток после получения RAW 264.7 клетках и создать новую культуру из замороженных флаконов часто. Начиная с более низкими культурами клеток прохождение также будет полезным, когда клетки обладают изменены характеристики, такие как несоблюдение, изменения в морфологии клеток (например, от круглой до тонких и выкладывается), или когда микоплазмы загрязнения не обнаружено. Еще один важный момент обратить внимание на это, чтобы наконечники меняются между образцами и во время разведения. Это позволит обеспечить точное серийные разведения и предотвращения перекрестного загрязнения между образцами. Один шаг в протоколе, где же кончика пипетки можно использовать снова, когда серийных разведений того же образца добавляют в лунки. В этом случае следует исходить из самых разбавленных посевной к мере, и энергично пипетки вверх и вниз при составлении нового разведения.

Протокол бляшек является исправимый в нескольких модификациях. Одна из модификаций, которые могут быть сделаны, когда тЗдесь не хватает клеток для посева скважин в двух экземплярах, чтобы привить только одной скважины для каждого разведения. Однако, начиная с посевной объем 0,5 мл, количество бляшек, то должно быть умножено на коэффициент от 2 до нормализовать БОЕ / мл. Бляшек также может быть адаптирована для использования с любым другим сторонником клеточной линии, которая может поддерживать репликацию МНВ, и это было описано для мышиных микроглии BV-2 клеточной линии 8. Другие изменения, которые могут быть реализованы являются адаптациями, которые были описаны для бляшек протоколы, разработанные для других вирусов. В случае МНВ, следующие изменения уже были успешно реализованы, использования метилцеллюлозы вместо моря налет агарозном 9 и окрашивания клеток с кристаллом фиолетового или метиленового синего, а не нейтральный красный 10, 11.

В целом, этот протокол может быть легко адаптирована как необходимая для определения других бляшкообразующих вирусы или используются для др.э вирусов, которые вызывают литические инфекции в RAW 264.7 клетках, что делает его полезным инструментом для количественного инфекционных вирусных частиц в целом.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Мы благодарим членов Wobus лаборатории для критических замечаний и предложений. Работа в лаборатории CEW было профинансировано запуска средства из Мичиганского университета, гранты развитие карьеры от NIH / NIAID регионального центра передового опыта в области био-защиты и новым инфекционным болезням исследований (RCE) Программа, Область V «Великий Озера "RCE (NIH награду 1-U54-AI-057153) и NIH R01 AI080611. MBG-H. было профинансировано экспериментальной иммунологии (NIH T32 A1007413-16) и молекулярных механизмов в патогенезе микробной (NIH T32 A1007528) обучение грантов в Университете штата Мичиган. JBC была профинансирована Coordenação де Aperfeiçoamento-де-де Pessoal Nivel Superior (CAPES), Бразилиа, Бразилия.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Название реагента Компания Номер в каталоге
DMEM / High глюкозы Hyclone SH30243.02
2x MEM Gibco 11935
100x пенициллина и стрептомицина Hyclone SV30010
10 мМ Номера для незаменимых аминокислот Hyclone SH30238.01
1M HEPES Hyclone SH30237.01
200 мм (100x) L-глютамин Hyclone SH30034.01
Плод бычьего сывороточного Gibco, Hyclone 10437, SH30070.02
Море налет Агароза Lonza 50100
Нейтральный красный 0,33% Сигма N2889
1x PBS Gibco 10010
1,0 мм циркония / Silica бисера BioSpec продукты 11079110z
Модель 35 Скорость Rocker Labnet S2035
Magna инструмента Lyser Roche 03358968001
Сырье 264,7 клеточной линии ATCC TIB-71
Культура ткани инкубатора Sanyo MCO-18AIC

Ссылки

  1. Wobus, C. E. Replication of Norovirus in cell culture reveals a tropism for dendritic cells and macrophages. PLoS Biol. 2, e432(2004).
  2. Wobus, C. E., Thackray, L. B., Virgin, H. W. Murine norovirus: a model system to study norovirus biology and pathogenesis. Journal of virology. 80, 5104-5112 (2006).
  3. Condit, R. C. Ch. 2. Fields Virology. Knipe, D. M., Howley, P. M. 1, Lippincott Williams & Wilkins. 25-58 (2007).
  4. Thackray, L. B. Murine noroviruses comprising a single genogroup exhibit biological diversity despite limited sequence divergence. Journal of virology. 81, 10460-10473 (2007).
  5. Reed, L. J., Muench, H. A simple method for estimating 50% endpoints. American Journal of Hygiene. 27, 493-497 (1932).
  6. Chachu, K. A. Antibody is critical for the clearance of murine norovirus infection. Journal of virology. 82, 6610-6617 (2008).
  7. Barron, E. L. Diversity of murine norovirus strains isolated from asymptomatic mice of different genetic backgrounds within a single U.S. research institute. PLoS ONE. 6, e21435(2011).
  8. Cox, C., Cao, S., Lu, Y. Enhanced detection and study of murine norovirus-1 using a more efficient microglial cell line. Virology journal. 6, 196(2009).
  9. Cooper, P. D. The plaque assay of animal viruses. Adv. Virus Res. 8, 319-378 (1961).
  10. Hyde, J. L. Mouse norovirus replication is associated with virus-induced vesicle clusters originating from membranes derived from the secretory pathway. Journal of virology. 83, 9709-9719 (2009).
  11. Simmonds, P. Bioinformatic and functional analysis of RNA secondary structure elements among different genera of human and animal caliciviruses. Nucleic acids research. 36, 2530-2546 (2008).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

RAW 264 7plaque forming units Plaque forming units

Похожие статьи