Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Селективный розыска слуховых волокон в Птичий Эмбриональные Vestibulocochlear нервов

8.7K просмотров

DOI:

10.3791/50305

18 марта 2013 г.

В этой статье

Краткое содержание

Здесь мы опишем технику микродиссекции последующим флуоресцентным красителем инъекции в акустическом ганглий рано куриных эмбрионов для селективного отслеживания слуховых волокон аксонов в нервной и заднего мозга.

Аннотация

Эмбриональных птенец широко используется модель для изучения периферической и центральной проекции ганглиозных клеток. В слуховая система, избирательное маркировки слуховой аксонов в VIII в черепных нервов будет способствовать изучению центральной развитие цепи слуховых. Этот подход является сложной задачей, так как несколько органов чувств, внутреннего уха вклад в нерв VIII-1. Кроме того, маркеры, которые надежно различать слуховые по сравнению с вестибулярным группы аксонов в птичьем нерв VIII в до сих пор не определены. Слуховые и вестибулярные пути не могут быть выделены функционально ранних эмбрионов, как сенсорно-вызванных ответов нет до схемы формируются. Централизованное проектирование VIII в аксонов нерва были прослежены в некоторых исследованиях, но и слуховые аксона маркировки сопровождается маркировки с другими компонентами нерв VIII в 2,3. Здесь мы опишем метод трассировки антероградной от акустического ганглий выборочно Лабел слуховой аксонов в развивающихся VIII в нерв. Во-первых, после частичного рассечения передней головной область 8-дневного куриного эмбриона кислородом погружен в искусственную спинномозговой жидкости, канал улитки определяется анатомические ориентиры. Далее, тонкой стеклянной пипетки вытащил позиционируется придать небольшое количество родамина декстрана аминов в канал и прилегающие глубокие области, где акустические ганглиозных клеток находятся. В течение тридцати минут после инъекции, слуховые аксонов прослеживается централизованно в заднем мозге и в дальнейшем могут быть визуализированы после гистологического препарата. Этот метод представляет собой полезный инструмент для развития исследований периферию центрального формирования цепи слуховых.

Протокол

1. Подготовьте следующие инструменты Dissection и реагенты

  • Искусственные цереброспинальной жидкости (ACSF, 130 мМ NaCl, 3 мМ KCl, 1,2 мМ KH 2 PO 4, 20 мМ NaHCO 3, 3 мМ HEPES, 10 мМ глюкозы, 2 мМ CaCl 2, 1,3 мМ MgSO 4) непрерывно переплетаются с 95% O 2/5% CO 2 при комнатной температуре. Для инфузий, заполнить на 2/3 500 мл с широким горлом Nalgene банку с отверстием в крышке. Танк будет прикреплен на трубы со стеклянным стволовых барботер, который проникает в ACSF через отверстие в крышке банки. Отрегулируйте давление для получения постоянного потока пузырьков, которые достигают около 1/3 жидкости, но не сильный достаточно, чтобы вызвать брызги через край. Погрузитесь 5 мл стеклянных флаконах (до 6) в банку Nalgene отделить отдельные образцы друг от друга и от турбулентности потока газа. ACSF должны быть кислородом в течение 20 мин до любой ткани инкубации.
  • Малый блюдо рассечение силиконовые (35 мм х 10мм Петри покрытием использованием Sylgard Elastomere Kit) с двумя рассечение контакты помещаются в небольшой шестиугольный полистирола (47 мм внизу) весит лодка.
  • Два прекрасных наконечником щипцы, один изогнутый кончик пинцетом, 50 мл стакан и контейнера для отходов тканей.
  • Вытащил стекла микропипетки (1,2 OD / 0,9 ID) сломаны примерно 20-50 мкм открытие на кончике и наполнен родамина декстрана аминов (RDA, MW = 3000, Invitrogen) в 6,25% раствора с 0,4% Тритон Х-100 в PBS . Прикрепить тонкой трубки к picospritzer и стабилизации к микроманипулятора.

2. Micro-рассечение, чтобы Показать Базилярная РарШа на 4,5 E8

  1. С изогнутым пинцетом, вырезать E8 эмбрион чуть ниже ствола мозга, размещение голову прямо на силиконовым покрытием рассечение блюдо весом в лодку.
  2. Использование рассечение контакты, положение головы с брюшной стороны, так что ухо на стороне интересов слегка видно, голова слегка наклонена сверху и указывая 10-30 градусов от сеГюнтер (рис. 2A). Немедленно обеспечить головой с контактами. Если двусторонних трассировка желании центре головы в 0 градусов, или полный вид снизу так с обеих сторон могут быть доступны. Аналогично, для левостороннего инъекции, обеспечить головы при температуре от -10 до -30 градусов от центра, чтобы левая сторона доступна.
  3. С помощью 50 мл стакан, передавать 30 мл кислородом ACSF в блюдо, полностью погружаясь в ткани.
  4. Аккуратно понять и очистить вниз нижнюю челюсть с помощью тонкой наконечником щипцы, затем снимите нижнее веко на стороне интересов.
  5. Снимите ткань вышележащих сосудистых, в том числе оставшихся неба и глотки. Эти мягкие ткани должна отслаиваться выявления гладкой поверхности развивается хрящевой череп с отличительными позвоночных артерий на его поверхности. К этому моменту, характерные белые otoconial масса должна быть видна.
  6. Осторожно рассекают кожу вокруг внешнего слухового прохода, хрящей нижнечелюстного сустава, а также среднего уха, оставляя внер ухо нетронутыми. Используйте пинцет, чтобы аккуратно срезать этих хрящевых структур.
  7. Удалить позвоночных артерий и объединению крови с использованием нежного радикальные движения с тонкой советы щипцов. Кровь может заслонить вид и коагуляции может подключить открытие инъекции пипетки.
  8. Улитки с соседними сенсорного эпителия (базилярная сосочка) и акустической ганглий лежит прямо под хрящевой череп 6 и могут быть представлены в виде удлиненных пальцев, как проекция простирается от внутреннего уха снизу, с дистальной-самых наконечник (вершина) рядом с передней срединной линии 5. Там может быть небольшим скоплением крови (красные) от вскрытия и / или отолитовой кальцификаты (белый) на вершине улитки (рис. 2В), которые могут помочь в визуализации. На вершине находится лагенарной макулы, сенсорные патч считается вестибулярной функции 7,8.

3. Селективный маркировки CN VIII слуховые волокна

  1. Место инъекции пипетки вблизи зародыша на поверхности канала улитки и основной сосочек региона.
  2. Медленно опустите микропипетки на первый прокол черепа. Это ЧЕРЕПНАЯ тоньше, чем окружающие районы и требует меньше усилий, чтобы проникнуть. Микропипетки должны теперь находиться внутри канала улитки. Дополнительно: небольшая инъекция трассировки красителя может быть сделано здесь, чтобы помочь в визуализации базилярной сосочка.
  3. Без перестановки микропипетки, продолжать снижение, пока это только нарушение глубокой границы канала улитки (рис. 1). Выполнять инъекции здесь и повторять в различных регионах вдоль базилярной сосочков (рис. 2в, 2г), за исключением самого проксимального кончика, где вестибулярный лагены находится. С picospritzer установлен в пределах 10-30 фунтов на квадратный дюйм, несколько инъекции делаются. Объем вводимой жидкости красителя меняется, и зависит от степени желаемого маркировки. Каждая инъекция должна привести к флуоресцентным красителем-лабелед месте примерно в 200 - 400 мкм в диаметре (рис. 2D).
  4. После инъекции завершен, использование щипцов, чтобы секут пример выше ствола мозга и использовать передачу пипетки поместить хвостовой части в небольшую банку в контейнер ACSF постоянно перфузии с 95% O 2/5% CO 2.
  5. Для каждого эмбриона, позволяющие 20-30 мин для переноса красителя, в зависимости от расстояния Центральное справочное лучшего.
  6. Удалить ткани и подготовиться к гистологических срезов. В примере, показанном здесь, ткань погружают в 4% параформальдегида (в 1X PBS) в течение ночи, 30% сахарозы (в 1X PBS) в течение ночи.

4. Counterstaining и анализ

  1. Counterstaining полезно, чтобы помочь ориентироваться наблюдателя анатомического расположения, а также выявление конкретных регионах, представляющих интерес. Эффективное контрастирующая в этом препарате нейрофиламентов иммунного (рис. 1, 3B, 3E), которые сильно LАбельс аксонов и позволяет демаркации аксонов путей в ЦНС.
  2. Анализ должен быть выполнен во всем помечены региона, а прогнозы могут расширить несколько сотен микрон или более по rostrocaudal оси. Некоторые примеры основных анализов: таргетинга количество ошибок, сроков и / или изменения в проекции расхождения моделей. RDA-меченых аксонов визуализируются в периферической и центральной нервной системы с высоким разрешением (рис. 3А, 3D).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Компоненты нервов VIII-и анатомии нервной себя сложные и запутанные (рис. 1, 3). По выборочно отслеживания волокна, связанные с акустическими ганглиозных клеток, сегменты нервов VIII-, а также первичных афферентов слуховых в стволе головного мозга может быть чисто прослеживается и отличаются от своих коллег вестибулярного (рис. 2, 3). Кроме того, этот метод может быть использован для изучения периферической проекции акустических ганглиозных клеток (рис. 3G), или модифиц...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Исследования раннего развития нервной VIII-были ограничены в части из-за трудностей в определении эмбриональных аксонов, вытекающие из нескольких различных ганглиях. Несколько исследований исследовали молекулярные сигналы руководящих слуховой и вестибулярной сенсорных клеток и судьбы ганглиозных клеток на ранних стадиях развития, 5,11,12, но процессы, регулирующие центральной иннервации до сих пор не определена. Доклады акустических прогнозы ганглиозных клеток обычно описывают периферических процессов сенсорн...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Авторы хотели бы поблагодарить д-р Се Candace для предложений и помощи методов визуализации и д-р Дорис Wu для экспертизы на куриных внутренней анатомии уха во время раннего эмбриогенеза. Эта работа была поддержана NSF IOS-0642346, NIH T32-DC010775, NIH T32-GM008620, NIH R01-DC010796, и DOE GAANN P200A120165.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Название Реагенты / Материал Компания Номер в каталоге Комментарии
Полистирол взвешивания блюдо Fisher Scientific 02-202-101
Чашку Петри, 35 X 10 мм Fisher Scientific 50820644 Используйте, чтобы сделать блюдо силиконовые диссекции
Sylgard кремнийорганический каучук Kit Инструменты Всемирной Precision SYLG184 Пальто Петри, чтобы сделать рассечение блюдо
Препарирование Pins Различный Постановил эмбриона на месте во время диссекции
NaCL Различный часть рецепта ACSF
KCl Различный часть рецепта ACSF
KH 2 PO 4 Различный часть рецепта ACSF
NaHCO 3 Различный часть рецепта ACSF
Глюкоза Различный часть рецепта ACSF
CaCl 2 Различный часть рецепта ACSF
MgSO 4 Различный часть рецепта ACSF
Контейнер для ACSF. Предложить полупрозрачный с широким горлом Nalgene банка, 500 мл (16 унций) с крышкой. CPLabSafety QP-PLC-03717 Скважина отверстие в верхней части крышки для стеклянной bubling стволовых проникнуть жидкость
Пустые 5 мл флакон стекло или прозрачную сопоставимых флаконе Американская фармацевтическая Partners, Inc 6332300105 используется во время инкубации ACSF хранить образцы отделены друг от друга и от кипящим потоком
Танковой карбогена (95% O 2/5% CO 2) связаны трубки к барботер Различный Установите на трубку к стеклу барботер стволовых клеток для вливания в ACSF
Стекло стволовых барботер Различный Чтобы наполнить карбогена в ACSF
Изогнутый кончик пинцетом Инструменты Всемирной Precision 501008 Чтобы удалить эмбрион голову из яйца
Два прекрасных наконечником щипцы Инструменты Всемирной Precision 501985 Для микро-диссекции
50 мл Стакан различный
Родамина Декстран Амин (RDA) Invitrogen различный Флуоресцентные аксона трассирующими
Triton X-100 ICN Biomedicals
Фосфатным буферным раствором (1X PBS) Различный Стандартный реагента лаборатории
Тонкие стены стеклянные капилляры, 1,2 OD, ID 4 0,9 "(100 мм) длина Инструменты Всемирной Precision TW120F-4 Загрузите с RDA. Каждый делает две капиллярные стеклянные микропипетки
Иглы / Пипетка съемника David Kopf Instruments Модель 720 Настройки, используемые: Тепло 16,4, 2,2 Электромагнитный
Picospritzer Паркер Инструменты различный Прикрепить тонкой трубки к стеклянной микропипетки
Микроманипулятор Narishige различный
Препарирование микроскоп с флуоресценцией Различный
4% параформальдегида Различный Стандартный реагента лаборатории
анти-нейрофиламентов антитела, опционально Millipore AB1991 Следите гистологического протокол рекомендуемые производителем
Криостат и связанные с ними материалы для резки Leica различный
Epifluorescent микроскоп для получения изображений Zeiss, различные

Ссылки

  1. Groves, A. K., Fekete, D. M. Shaping sound in space: the regulation of inner ear patterning. Development. 139, 245-257 (2012).
  2. Pflieger, J. F., Cabana, T. The vestibular primary afferents and the vestibulospinal projections in the developing and adult opossum, Monodelphis domestica. Anatomy and Embryology. 194, 75-88 (1996).
  3. Molea, D., Rubel, E. W. Timing and topography of nucleus magnocellularis innervation by the cochlear ganglion. The Journal of Comparative Neurology. 466, 577-591 (2003).
  4. Bissonnette, J. P., Fekete, D. M. Standard atlas of the gross anatomy of the developing inner ear of the chicken. The Journal of Comparative Neurology. 368, 620-630 (1996).
  5. Brigande, J. V., Kiernan, A. E., Gao, X., Iten, L. E., Fekete, D. M. Molecular genetics of pattern formation in the inner ear: do compartment boundaries play a role. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, 11700-11706 (1073).
  6. Bellairs, R., Osmond, M. The atlas of chick development. , 2nd Edn, Elsevier. (2005).
  7. Manley, G. A., Haeseler, C., Brix, J. Innervation patterns and spontaneous activity of afferent fibres to the lagenar macula and apical basilar papilla of the chick's cochlea. Hearing Research. 56, 211-226 (1991).
  8. Code, R. A. Efferent neurons to the macular lagena in the embryonic chick. Hearing Research. 82, 26-30 (1995).
  9. Maklad, A., Fritzsch, B. Development of vestibular afferent projections into the hindbrain and their central targets. Brain Research Bulletin. 60, 497-510 (2003).
  10. Rubel, E. W., Fritzsch, B. Auditory system development: primary auditory neurons and their targets. Annual Review of Neuroscience. 25, 51-101 (2002).
  11. Satoh, T., Fekete, D. M. Lineage analysis of inner ear cells using genomic tags for clonal identification. Methods Mol. Biol. 493, 47-63 (2009).
  12. Bok, J., Chang, W., Wu, D. K. Patterning and morphogenesis of the vertebrate inner ear. The International Journal of Developmental Biology. 51, 521-533 (2007).
  13. Appler, J. M., Goodrich, L. V. Connecting the ear to the brain: Molecular mechanisms of auditory circuit assembly. Progress in Neurobiology. 93, 488-508 (2011).
  14. Bulankina, A. V., Moser, T. Neural circuit development in the mammalian cochlea. Physiology (Bethesda). 27, 100-112 (2012).
  15. Fekete, D. M., Campero, A. M. Axon guidance in the inner ear. The International Journal of Developmental Biology. 51, 549-556 (2007).
  16. Momose-Sato, Y., Glover, J. C., Sato, K. Development of functional synaptic connections in the auditory system visualized with optical recording: afferent-evoked activity is present from early stages. Journal of Neurophysiology. 96, 1949-1962 (2006).
  17. Marrs, G. S., Spirou, G. A. Embryonic assembly of auditory circuits: spiral ganglion and brainstem. The Journal of Physiology. 590, 2391-2408 (2012).
  18. Milo, M., et al. Genomic analysis of the function of the transcription factor gata3 during development of the mammalian inner ear. PloS One. 4, e7144(2009).
  19. Fritzsch, B., Eberl, D. F., Beisel, K. W. The role of bHLH genes in ear development and evolution: revisiting a 10-year-old hypothesis. Cellular and Molecular Life Sciences : CMLS. 67, 3089-3099 (2010).
  20. Jahan, I., Kersigo, J., Pan, N., Fritzsch, B. Neurod1 regulates survival and formation of connections in mouse ear and brain. Cell and Tissue Research. 341, 95-110 (2010).
  21. Huang, E. J., et al. Brn3a is a transcriptional regulator of soma size, target field innervation and axon pathfinding of inner ear sensory neurons. Development. 128, 2421-2432 (2001).
  22. Jones, J. M., Warchol, M. E. Expression of the Gata3 transcription factor in the acoustic ganglion of the developing avian inner ear. The Journal of Comparative Neurology. 516, 507-518 (2009).
  23. Lu, C. C., Appler, J. M., Houseman, E. A., Goodrich, L. V. Developmental profiling of spiral ganglion neurons reveals insights into auditory circuit assembly. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 31, 10903-10918 (2011).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Акустический ганглийулиточный протокродамин-декстранмикроинъекциягистологическая подготовкаоксигенированная спинномозговая жидкостьантероградное прослеживаниеэмбрион птицы