Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

В естественных изображений опухолевого ангиогенеза с помощью флуоресцентной конфокальной видеомикроскопии

10.6K просмотров

DOI:

10.3791/50347

11 сентября 2013 г.

В этой статье

Краткое содержание

В данной работе мы представляем метод для анализа опухолевых микрососудов в естественных условиях с использованием динамического контрастным усилением флуоресценции видеомикроскопии. Были приобретены два количественные параметры: функциональный плотности капилляров, отражающий кровоснабжение опухоли, и утечки индекс, отражающий неплотности из эндотелиальных стенках.

Аннотация

Волокнистые конфокальной флуоресцентной в естественных изображений с светового пучка использует тот же принцип, как флуоресцентной конфокальной микроскопии. Это может возбудить флуоресцентные в элементах на места через оптические волокна, а затем записать некоторые из излучаемых фотонов, с помощью тех же оптических волокон. Источником света является лазер, который посылает возбуждающего света через элемент в расслоения и, как он сканирует по образцу, воссоздает изображения пиксель за пикселем. Как это сканирование происходит очень быстро, путем объединения его с выделенным программным обеспечением для обработки изображений, изображения в режиме реального времени с частотой 12 кадров / сек можно получить.

Мы разработали методику для количественного характеризуют капилляров морфологию и функцию, с помощью конфокальной флуоресцентной видеомикроскопии устройство. Первый шаг в нашем эксперименте было записывать 5 секунд фильмов в четырех квадрантов опухоли визуализировать капиллярную сеть. Все фильмы были обработаны с помощью программного обеспечения (яmageCell, Мауна-Кеа Технологии, Париж Франция), который выполняет автоматизированную сегментацию сосудов вокруг выбранного диаметра (10 мкм в нашем случае). Таким образом, можно количественно оценить "функциональной плотности капилляров ', который является соотношение между общей площадью сосуда и общей площади изображения. Этот параметр был суррогатным маркером плотности микрососудов, как правило, измеряется с помощью патологии инструменты.

Вторым шагом было записывать фильмы опухоли в течение 20 мин для количественного утечку макромолекулярном контрастного вещества через стенки капилляров в интерстиций. Измеряя соотношение интенсивности сигнала в интерстиции над, что в сосудах, был получен "индекс утечки", действуя в качестве суррогатного маркера проницаемости капилляров.

Введение

Ангиогенез является сложным процессом, 1, что предполагает формирование новых кровеносных сосудов из уже существующих судов. Патологические изменения в ткани микроциркуляции, состоящие из артериол, капилляров и венул, вовлечены в большом спектре заболеваний, таких как рак, воспаление, или диабет. Поэтому очень важно в разработке методов количественной оценки структуры микрососудов и функции. Изображений позволяет изучать микрососудов в не-или микро-инвазивная образом, в режиме реального времени и в естественных условиях, и повторные измерения с течением времени в той же животного 2.

В настоящее время динамического контрастным усилением (DCE) визуализации 3 обычно используется для оценки тканевой микроциркуляции. Динамическая визуализация с контрастным усилением является методом, который следует в течение долгого времени биораспределение трассера введен внутривенно. С этим приобретением, количественные параметры могут быть извлечены отражающие ткани васкуляризации. Томография DCEбыл наиболее часто используется с КТ, МРТ или УЗИ. Однако эти методы визуализации не позволяют непосредственное наблюдение микрососудов, так как их разрешение, кроме с использованием конкретных экспериментальных устройств, наиболее часто остается макроскопическим.

В этой статье мы предлагаем изучить сосудистую сеть опухоли в микроскопическом масштабе и в естественных условиях с использованием динамического оптических изображений контрастным усилением, с расслаивается конфокальной видеомикроскопии. Мы использовали макромолекулярную контрастное вещество (FITC-декстран), который остается исключительно в судах или утечек через эндотелия барьер в интерстиции, в соответствии с его молекулярной массы и характеристики эндотелия ткани изучены 4. Это позволило изучение как структуры микрососудов, по правильно разграничения сосуды и проницаемость капилляров, по протекал, и накапливается в интерстиции.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Подготовка Агента Contrast

  1. Для FITC-декстрана 70 кДа, доза вводится 500 мг / кг (10 мг FITC-декстран разводили в 0,1 мл физиологического раствора на мышь весом 20 г).
  2. Агент не должен подвергаться воздействию слишком долго, чтобы света. Чтобы избежать отбеливания, рекомендуется, чтобы покрыть трубу с алюминиевой фольгой.

2. Анестезия

  1. Мышей анестезировали внутрибрюшинной инъекцией смеси 1:04 ксилазина (Rompun 2%, Bayer, Puteaux, Франция) и кетамин (кетамин 500, Virbac, Каррос, Франция), соответственно 66 мг / кг и 264 мг / кг для 20 г мыши.

3. Подготовка органа интересов

  1. Мы побрился мышей по месту нахождения интерес (например, над подкожной опухоли). Волос животных часто самофлюоресцирующими когда белый. Когда черный, он поглощает свет.
  2. Кожа перед орган для включения в образ рассекали. Важно не ждать до кровотеченияхг остановилось перед инъекцией контрастного вещества, в противном случае он будет течь в крови и загрязнять изображение.

4. Приобретение

  1. Контрастное вещество вводили либо через яремную вену или хвостовую вену. Существует нет или мало фоновый сигнал в органе, наблюдаемой в отсутствие флуоресцентного контрастного вещества.
  2. Зонд был помещен в передней части органа для включения в образ. В нашем исследовании, это было опухоль.
  3. Лазер был включен, чтобы осветить опухоль и увидеть флуоресценцию в капиллярах.
  4. Опухоль была исследована вручную путем перемещения зонда в очень медленном движении во время записи для визуализации капиллярную сеть. Важно поддерживать устойчивый руку, и этот метод требует немного опыта. В нашем исследовании, этот первый шаг позволил количественную оценку функционального плотности капилляров.
  5. Вторым шагом было динамичным приобретение с течением времени. Для этого исследования мы использовали 70 кДа FITC-декстран. Там нет интерстициальный утечки в большинстве нормальных органов, но есть в опухоли. Чтобы получить изображения том же месте в течение долгого времени (как в нашем случае), важно создать систему для поддержания зонд на интересующей области. Это было сделано с помощью ручной поддержки, чтобы держать зонд, и путем размещения немного ультразвукового геля на кончике зонда. Перед записью времени было проведено, чтобы стабилизировать зонда в контакт с опухолью. После того, как позиция была обеспечена, был только минимальный движение из-за дыхания мыши. Лазер был включен в записи 3 изображений каждые 30 сек в течение 20 мин, чтобы обнаружить присутствие капиллярной утечки. Это был выключен между каждой съемкой для снижения контрастного вещества отбеливание.
  6. В нашем эксперименте мышей умерщвляли в конце процедуры для гистологического анализа опухолей.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Используя данные, собранные, мы могли количественно анализировать различные параметры, отражающие микроциркуляцию.

Мы учились в естественных условиях периферических сосудов сеть опухоли толстой кишки, имплантированного в BALB-C-мышей с использованием расслаивается конфокальной флуоресцентной системы видеомикроскопии (Cellvizio, Maunakea Технологии, Париж, Франция 2), после инъекции макромолекулярным флуоресцентного контрастного вещества флуоресцеинизотиоцианатом-декстрана...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Изучение опухоли микроциркуляции стало необходимым в понимании патофизиологии роста опухоли, распространения и реакции на лечение 1. Оптический изображений является одним из методов, которые могут быть использованы для наблюдения капилляры использованием флуоресцентного контрастное вещество и количественно морфологический (Functional капиллярной плотности) и функциональные (утечка индекс) параметры.

Флуоресцентной микроскопии изображений мы использовали в этом исследовании имеет с...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Нам нечего раскрывать.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Инсулин серинг<бр/> Myjector 1мл<бр/> 29ГTerumo EuropeBS-05M2913
Флуоресцеин изотиоцианат-декстран 70 кДа Sigma-Aldrich01619HH100 мг/мл <бр/> разведенный в физрастворе
Фиброволоконная конфокальная видеомикроскопияCellvizio - MaunaKea Technologies
Набор для калибровки и очистки для LEICAFCM1000Leica MicrosystemsLSU-488Магазин в 4 ° C
Probe ProFlexTM ZMaunaKea Technologies
Программное обеспечение для мозаикиMaunaKea Technologies
Программное обеспечение для обнаружения судовMaunaKea Technologies

Ссылки

  1. Folkman, J. Fundamental concepts of the angiogenic process. Curr Mol Med. 3 (7), 643-651 (2003).
  2. Laemmel, E., Genet, M., Le Goualher, G., Perchant, A., Le Gargasson, J. F., Vicaut, E. Fibered confocal fluorescence microscopy (Cell-viZio) facilitates extended imaging in the field of microcirculation. A comparison with intravital microscopy. J Vasc Res. 41 (5), 400-411 (2004).
  3. Charnley, N., Donaldson, S., Price, P. Imaging angiogenesis. Methods Mol Biol. 467, 25-51 (2009).
  4. Faye, N., Fournier, L., Balvay, D., Taillieu, F., Cuenod, C., Siauve, N., Clement, O. Dynamic contrast enhanced optical imaging of capillary leakage. Technol Cancer Res Treat. 10 (1), 49-57 (2011).
  5. Kurose, I., Kubes, P., Wolf, R., Anderson, D. C., Paulson, J., Miyasaka, M., Granger, D. N. Inhibition of nitric oxide production. Mechanisms of vascular albumin leakage. Circ Res. 73 (1), 164-171 (1993).
  6. Faye, N. F. L., Balvay, D., Thiam, R., Orliaguet, G., Clement, O., Dewachter, P. Macromolecular capillary leakage is involved in the onset of anaphylactic hypotension. Anesthesiology. , (2012).
  7. Faye, N., Fournier, L., Balvay, D., Thiam, R., Orliaguet, G., Clement, O., Dewachter, P. Macromolecular Capillary Leakage Is Involved in the Onset of Anaphylactic Hypotension. Anesthesiology. 117 (5), 1072-1079 (2012).
  8. Tozer, G. M., Kanthou, C., Baguley, B. C. Disrupting tumour blood vessels. Nat Rev Cancer. 5 (6), 423-435 (2005).
  9. Ntziachristos, V., Schellenberger, E. A., Ripoll, J., Yessayan, D., Graves, E., Bogdanov, A., Josephson, L., Weissleder, R. Visualization of antitumor treatment by means of fluorescence molecular tomography with an annexin V-Cy5.5 conjugate. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (33), 12294-12299 (2004).
  10. Cuccia, D. J., Bevilacqua, F., Durkin, A. J., Merritt, S., Tromberg, B. J., Gulsen, G., Yu, H., Wang, J., Nalcioglu, O. In vivo quantification of optical contrast agent dynamics in rat tumors by use of diffuse optical spectroscopy with magnetic resonance imaging coregistration. Appl Opt. 42 (16), 2940-2950 (2003).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги