Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Высокое разрешение Всего горе

22.4K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/50644

⸱

19 октября 2013 г.

 , 
1Endocrine Research Laboratory and Department of Medicine, Royal Victoria Hospital, 2McGill University Health Centre Research Institute

В этой статье

Краткое содержание

Данио, маленькую тропическую рыбу, стала популярной моделью для изучения функции генов во время развития позвоночных и болезней. Временной и пространственной экспрессии генов-мишеней может быть определена путем На месте Гибридизации. Наши улучшенной протокол позволяет для обнаружения низких обильные транскрипты с низкой неспецифической фонового сигнала.

Аннотация

Эта статья посвящена целом монтажа в гибридизация (желание) эмбрионов рыбок данио. Желание технологии облегчает оценку экспрессии генов как с точки зрения распределения ткани и стадии развития. Протоколы описаны для использования WISH из эмбрионов данио рерио с использованием антисмысловых РНК зондов, меченных дигоксигенином. Зонды генерируются путем включения дигоксигенином связанных нуклеотидов через в пробирке транскрипции гена шаблонов, которые были клонированы и линеаризованный. Хорионов эмбрионов собраны в определенные стадии развития удаляются перед инкубации с зондами. После процедуры промывки, чтобы удалить избыток пробы, эмбрионы инкубировали с анти-дигоксигенин антитела, конъюгированного со щелочной фосфатазой. При использовании хромогенного субстрата щелочной фосфатазы, специфической экспрессии гена может быть оценена. В зависимости от уровня экспрессии гена вся процедура может быть завершена в течение 2-3 дней.

Введение

Данио (Danio рерио) стал мощным животной модели для изучения развития позвоночных, болезни, поведение и в-скрининга лекарственных 1-3. Эмбрионов данио рерио могут быть получены в больших количествах из одного перехода. Оплодотворения и развитие происходит внутриутробно и бывший оптически прозрачные эмбрионы быстро развиваться. Критические развития событий в течение первых 48 ч после оплодотворения (ФВЧ). Это включает в себя появление зачатков органа и начало дифференцировки клеток. Нокдаун или чрезмерной экспрессии белков может быть достигнуто путем микроинъекции эмбрионы с антисмысловых морфолино (MO) олигонуклеотиды или мРНК, соответственно, на один или два клеточной стадии (0,75 ФВЧ).

Желание эмбрионов рыбок данио облегчает изучение пространственно-временной экспрессии специфических генов, представляющих интерес. Применение желание технику после микроинъекции эмбрионы с мРНК или МО до более-выражениеESS или нокдаун конкретные уровни белка показывает дифференцированного регулирования других генов.

Изменения в характере экспрессии генов можно соотнести с фенотипические изменения и выявить функции генов-мишеней во время раннего органогенеза. Поскольку зонды могут быть получены и сохранены заранее, ISH метод может быть применен, чтобы показать моделей экспрессии генов по крайней мере 20 генов одновременно с использованием шести-луночных планшетах и ​​на заказ корзины.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Целом монтажа в гибридизация эмбрионов рыбок данио

1.1 Подготовка эмбрионов

  1. Сбор эмбрионов на необходимые стадии развития. См. Киммел и др.. 5 для эмбрионального описания сцены.
  2. Удалить хорионов вручную с помощью пинцета (Дюмон часовых не Щипцы нет. 5).
  3. Исправить эмбрионов в 4%-ного раствора параформальдегида (PFA) состоит в PBS (фосфатно-солевой буфер) в течение ночи при 4 ° С.
  4. Вымойте эмбрионов с PBS по крайней мере 3 раза по 5 мин при комнатной температуре.
  5. Магазин эмбрионов в 100% метаноле (MeOH) при -20 ° С до использования для будущего применения методов, включая целом монтажа на месте гибридизации.
  6. Замораживание поставил эмбрионов в жидком азоте для экстракции РНК и хранить при температуре -80 ° С.
  7. Извлечение РНК из эмбрионов и поставил синтеза кДНК для ПЦР-амплификации и последующего клонирования.

1.2 Синтез дигоксигенином-меченых зондов РНК

  1. ПЦР-амплификации и клонирования генов для зонда шаблона. Установка реакции ПЦР с общим объемом 50 мкл, как показано в таблице 1. Использование более геномной ДНК, кДНК или менее в реакции ПЦР в качестве матрицы. Включите 10 мин расширение времени при 72 ° С после последнего цикла, чтобы убедиться, что продукты реакции ПЦР полной длины и 3 'adenylated для облегчения клонирования TOPO.
Реагент Объем
ДНК-матрицы 100 нг
ПЦР-буфера (10x) 5 мкл
дНТФ (10 мМ) 2 мкл
Праймеры (10 мМ) 1 мкМ каждого
Добавьте воду до конечного объема 49,7 мкл
Taq полимеразы (5 ед / & #956, L) 0,3 мкл
Реакционного объема 50 мкл

Таблица 1. PCR реакции амплификации.

  1. Убедитесь, что размер продукта ПЦР с использованием электрофореза в агарозном геле. Предполагаемый размер ПЦР-продукта для синтеза зондов близка к 1 КБ.
  2. Соблюдайте особую осторожность, чтобы избежать загрязнения нуклеазу проведения эксперимента в стерильных условиях и использованием нуклеазы свободной воды. В случае, если несколько продуктов наблюдаются, гель-очистке соответствующего размера ПЦР-продукта, прежде чем приступить клонирование использованием TOPO TA Cloning Kit. Оптимизация ПЦР устранить появление размытия и несколько полос.
  3. Выполнение реакции TOPO клонирование, как указано в таблице 2. Объединение TOPO векторные и ПЦР-продукта и инкубируют при комнатной температуре в течение 5 мин.
Реагент Химически компетентные клетки Электро компетентных клеток Свежий продукт ПЦР 1-4 мкл 1-4 мкл Солевой раствор 1 мкл Разбавленный раствор соли 1 мкл Воды До общим объемом 5 мкл До общим объемом 5 мкл TOPO вектор 1 мкл 1 мкл Конечный объем 6 мкл 6 мкл

Таблица 2. TOPO клонирование реакции.

  1. Включение / представить продукт TOPO клонирования в один выстрел компетентных клеток. Tего процесс называется преобразованием.
  2. Инкубируйте трансформированных клеток при 37 ° С в течение не менее 1 часа при 260 оборотах в минуту для обеспечения экспрессии генов устойчивости к антибиотикам. Пластина преобразования смеси (50-100 мкл) на предварительно нагретой Лурия-Бертани (LB) агаром, содержащим 50 мкг / мл ампициллина, и X-гал. Инкубировать при 37 ° С в течение ночи.
  3. Определить присутствие вставки на основе появление белой или голубой колоний. Вектор TOPO содержит LacZ гена, который кодирует β-галактозидазы. В присутствии X-гал, производство β-галактозидазы, формирует синий цвет. ДНК лигировали в плазмиду нарушает образование функциональных β-галактозидазы и белые колонии производятся. Белые колонии или светло-голубые колонии подтвердить наличие вставки.
  4. Возьмите белый колоний от агара с использованием стерильных наконечников и поместить их в стерильные 10 мл пробирку, содержащую 4 мл LB средств массовой информации и культуры при 37 ° C в инкубаторе встряхиваниемTor в течение ночи при 200 оборотах в минуту.
  5. Очищают плазмиду ДНК с использованием ДНК плазмиды комплект в соответствии с инструкциями производителей.
  6. Линеаризовать кДНК следующих очистки плазмидной расщеплением 5 мкг кДНК для каждого зонда с соответствующим ферментом рестрикции, который имеет уникальный сайт, расположенный 3 '(в смысле зонды), или 5' (для антисмыслового зонда) к вставке.
  7. Очищают линеаризованной ДНК с использованием экстракции фенолом / хлороформом методом. Добавить равным объемом смеси фенол / хлороформ, вершина энергично в течение 30 сек, спин течение 3 мин при 13000 оборотов в минуту при 4 ° С. Передача верхнюю водную фазу в чистую пробирку и добавляют равный объем хлороформа. Вращаться в течение 3 мин при 13 000 оборотов в минуту при температуре 4 ° C. Передача верхнюю водную фазу в чистую пробирку. Добавить 10% ацетата натрия (3 м) и в 2,5 раза объема 100% этанола, осадок ДНК и хранить при температуре -20 ° C в течение ночи. Вращаться в течение 15 мин при 13 000 оборотов в минуту при температуре 4 ° C. Удаления этанола и мыть гранул с 75% этанола. Протокол может быть остановлен, и ДНК может быть STORed при -20 ° С и возобновились на следующий день. Вращаться в течение 10 мин при 10 000 оборотов в минуту при температуре 4 ° C. Удалить супернатант осторожно и сушить гранулы в течение 2 мин при комнатной температуре. Ресуспендируют гранул в 10 мкл DEPC-обработанной воды и инкубируют при 55 ° С в течение 20 мин. Количественно концентрация ДНК использованием УФ-спектрометра.
  8. Оценка чистоты путем электрофореза в агарозном геле с использованием 1 мкл ДНК на 1% агарозном геле и работает в течение примерно 30 мин.
  9. Настройка реакции мечения РНК. С помощью РНКазы реакционной ампуле, добавляют 1-5 мкг очищенной ДНК-матрицы в стерильной, свободной от РНКазы, DEPC-обработанной дважды дистиллированной водой до объема 13 мкл. Охлаждают реакционную пробирку на льду и добавляют следующие реагенты (см. таблицу 3):
Реагент Объем
NTP маркировки смеси (10x) 2 мкл
Транскрипция любителяER (10x) 2 мкл
Protector ингибитора РНКазы 1 мкл
РНК-полимеразы SP6 или
РНК-полимеразы Т7 2 мкл
Конечный объем 20 мкл

Таблица 3. РНК маркировки реакции.

  1. Смешать реагент осторожно затем собирают в нижней краткие центрифугированием при 2000 оборотах в минуту в течение 30 секунд при комнатной температуре и инкубировали в реакционную смесь в течение 2 ч при 37 ° С.
  2. Удалить матричной ДНК добавлением 2 мкл РНКазы ДНКазы I. Инкубировать в течение 30 мин при 37 ° С и останавливают реакцию добавлением 2 мкл 0,2 М ЭДТА (рН 8,0).
  3. Осадок продуктов реакции добавлением 2,5 мкл 4 М LiCl и 100 мкл 75% этанола. Перемешать раствор и держать при температуре -20 ° С в течение 45 мин OR хранят при температуре -20 ° C в течение ночи и протокол возобновились на следующий день.
  4. Центрифуга суспензию в течение 30 мин при 13000 оборотов в минуту при 4 ° С, затем промыть осадок 500 мкл 70% этанола хранили при -20 ° С, центрифуге в течение еще 10 мин, сухой в течение 2 мин и ресуспендируют в 50 мкл и инкубировать на 30 мин при 37 ° С.
  5. Проверьте качество зонда и целостность при помощи 1-2 мл на 1% агарозном геле в течение примерно 30 мин. Это подтверждает наличие одного продукта работает на ожидаемый размер на геле.
  6. Количественно концентрации зонда путем измерения количества РНК с использованием спектрофотометра. Выход из этой реакции составляет около 10 мкг РНК (100-200 нг / мкл).

1.3 целом монтажа в гибридизация

  1. ДЕНЬ 1
    1. Регидратации
      1. Подготовка корзин использованием нейлоновой сеткой (менее 1 мм, размер пор) и пробирки Эппендорфа. Построить корзины по разрезалг Эппендорфа (1,5 мл), чтобы удалить конических концов. Для идентификации отдельных корзин использовать разноцветные трубы и снимите верхнюю диски от половины из них.
      2. Вырезать небольшие кусочки нейлоновой сеткой, чтобы покрыть разреза концы трубок Эппендорфа. Придерживайтесь разреза концы трубок с нейлоновой сеткой, нагревая их на электрической плитой (устанавливается между средней и высокой) в вытяжной шкаф. После остывания удалить избыток нейлоновая сетка из корзины и хранить их в 100% метаноле при комнатной температуре.
      3. Подготовка последовательных разведений метанола в PBS (75% [объем / объем [метанола, 50% [объем / объем] метанола и 25% [объем / объем] метанол) с помощью первых трех лунках шесть-луночных планшетах с последующим добавлением 100% PBST (фосфатным буферным раствором, содержащим 0,1% Твин-20) в течение ближайших трех скважин.
      4. Тема эмбрионов на месте гибридизации процедуры с помощью корзины на заказ, как показано на Figurea 1а и б. Используйте РНКазы решений вплоть до гибридизацииния шагом в 6-луночные планшеты (4 мл / лунку). Чтобы добиться этого, разместить до 6 корзин в первой скважине. Место обод корзины с первым следующим корзины без дисков в разные цвета расположены последовательно. При использовании такой конструкции до 6 моделей экспрессии генов могут быть определены одновременно.
      5. Наведите обезвоженной эмбрионы того же стадии развития в той же корзины (см. Рисунок 1).
      6. Увлажняет эмбрионов путем перемещения корзины из одной скважины в шесть-луночный планшет к следующему (5 мин для каждого шага). Используйте шесть скважин, заполненных промывочной соответствующий буфер. Эмбрионы подвергают каждое разведение один раз. Таким образом эмбрионы промывали 6х, 5 мин / стирки. Регидратации дегидратированного зародышей достигнуто путем замены метанола с PBS и затем промыванием 3 раза по 100% PBST.
    2. Пермеабилизации Digest регидратации эмбрионов протеиназой К (10 мкг / мл) при комнатной температуре, чтобы сделать их проницаемыми как показано в Таблице 4 .
      Эмбриональной стадии (часы после оплодотворения) Пищеварение периода (протеиназы К)
      До 6 15 сек
      6-12 30 сек
      12-18 3 мин
      24 12-15 мин
      48 25-30 мин
      72 40 мин
      96-120 50 мин

      Таблица 4. Пермеабилизации реакции.

    3. Вторичная фиксация и PBST Моет
      1. Исправить эмбрионов путем инкубации в 4% параформальдегид (вес / объем) в 1 × PBS в течение 20 мин.
      2. Удалите остатки параформальдегиде путем промывки эмбрионов 3x, 5 мин / стирка, 1x в PBST.
    4. Ацетилирование Подготовьте ацетилирования смеси (125 мкл триэтаноламина и 27 мкл уксусного ангидрида в 10 мл DDH 2 O) и инкубировать эмбрионов два раза по 10 минут каждый. Чтобы свести к минимуму эндогенной активности фосфатазы, готовить свежую смесь ацетилирования при необходимости. Для удаления избытка реагента, мыть эмбрионов два раза в PBST (10 мин / стирка)
    5. Предгибридизацию Prehybridize эмбрионов путем переноса эмбрионов из корзин до 1,5 мл стерильной Эппендорф труб и инкубирования 200 мкл смеси гибридизации в течение 2-4 ч в 70 ° С водяной бане.
    6. Предадсорбционного из антител Удалите около 50 эмбрионов из корзины и передавать их в 1,5 мл стерильной Эппендорф труб. Инкубируют с анти-DIG-AP (1:500) антител с использованием блокирующего буфера (1x PBST, 2% сыворотки теленка [объем / объем], 2 мг / мл бычьего сывороточного альбумина [БСА]) при комнатной температуре в течение 2-4 ч, , а затем хранят при температуре 4 ° С в течение ночи. Удалить из инкубатора утромD позволяют эмбрионов до комнатной температуры.
    7. Гибридизация добавить 100-200 нг зонда к предварительно гибридизировали эмбрионов и инкубируют в течение ночи при 70 ° С на водяной бане.
  2. ДЕНЬ 2
    1. SSC (физиологическим раствором цитрата натрия) Моет
      1. Место 50 мл пробирки гибридизации смеси (ТМ), 2х SSC и 0,2 × SSC в химический стакан с водой при 70 ° C водяной бане и prewarm них, по крайней мере, 20 мин. Удаляют смесь реакции гибридизации, содержащий зонд, добавляют 1 мл предварительно нагретого смесь гибридизации в пробирки и инкубируют в течение 15 мин при 70 ° С. Заполните шесть-луночных планшетах с различными разведениями нагретого ТМ в 2х SSC заменой 100% П через 50% до 25% П, чтобы удалить избыток реагентов.
      2. Ожидая, заполнить шесть-луночных планшетах с 2х SSC для мытья и держать их при температуре 70 ° C.
      3. Через 15 минут место эмбрионов из трубки корзины хранится в шесть-луночный планшет наполнен разбавлениес ТМ с 2х SSC и мыть гибридизированной эмбрионов путем перемещения корзины из одной ямы в следующем (15 минут в каждом из 70 ° С водяной бане). Мытье эмбрионов 2x, 15 мин / стирки, в 100% 2х SSC при 70 ° С.
      4. Установите другую водяной бане при температуре 65 ° С. Заполните шесть-луночных планшетов с 0,2 x SSC высокой жесткости моет, чтобы избежать неспецифического гибридизации транскриптов с зондом.
      5. После эмбрионы дважды промывали 2х SSC при 70 ° С, далее следуют два 30 мин промывками в 0,2 × SSC при 65 ° С.
    2. PBST Смывки Подготовьте шесть-луночных планшетах при последовательном разведении 0,2 x SSC в PBST следующим образом: 75% (об / об) 0,2 x SSC, 50% (об / об) 0,2 x SSC, 25% (об / об) 0.2x SSC, а остальные две скважины со 100% PBST. Промыть гибридизированных эмбрионов путем перемещения корзины с одной скважины к следующему (5 мин на каждом этапе при комнатной температуре с использованием коромысло).
    3. Преинкубация Preincubate эмбрионов в течение 3-4 часов при комнатной температуре в БлоCking буфера (1x PBST, 2% сыворотки теленка [объем / объем], 2 мг / мл BSA).
    4. Инкубация с анти-DIG антител Инкубировать эмбрионов с раствором анти-DIG-AP антитела (1:5000) в блокирующем буфере в течение ночи при 4 ° С при осторожном перемешивании.
  3. ДЕНЬ 3
    1. PBST Смывки Подготовьте шесть-луночных планшетах с 4 мл / лунку PBST. Вымойте Инкубированную эмбрионов путем перемещения корзины на шесть-луночный планшет, содержащий PBST 6x для периодов по 15 мин. Эмбрионы могут храниться при 4 ° С и протокол возобновил на следующий день.
    2. Prestaining Prestain эмбрионов путем промывки 2x в течение 15 мин с prestaining буфере при комнатной температуре при осторожном перемешивании до инкубации в присутствии BCIP (5-бром-4-хлор-3-индолил фосфат) и NBT (нитросиний тетразолий). BCIP и NBT являются субстраты, используемые для развития окраски активности щелочной фосфатазы. С зонды крепятся й Щелочная фосфатазаэлектронной развитию фиолетовый цвет указывает на экспрессию гена-мишени. Эмбрионы могут храниться при 4 ° С и протокол возобновил на следующий день.
    3. Окрашивание
      1. Инкубируйте эмбрионов при комнатной температуре в темноте с BCIP и NBT течение 30 мин.
      2. Мониторинг реакции окрашивания каждые 30 мин с использованием стереомикроскопа. Время реакции варьировать от 15 минут до 16 часов в зависимости от уровня экспрессии генов. Время реакции короче для высокий уровень экспрессии генов и больше времени для слабо выраженных генов. Смысл датчиков обнаруживает сигналы, если интересующий ген экспрессирует дополнительный антисмысловой (AS) транскриптов.
    4. Остановка реакции После достижения желаемой интенсивности окрашивания достигается остановить реакцию, путем передачи корзины содержащие эмбрионов в лунки, содержащие стоп-раствора (1 × PBS, рН 5,5, 1 мМ ЭДТА, 0,1% Твин). Это позволит избежать дальнейшего развития окраски. Промойте эмбрионы в течение 10 мин 2x на качалке с нежным AGтации при комнатной температуре.
    5. Вторичная фиксация
      1. Инкубируйте эмбрионов в параформальдегид 4% (вес / объем) в PBS в течение 20 мин.
      2. Промыть эмбрионы (5 мин / стирка) три раза PBST для удаления остаточного формальдегида. Храните фиксированных эмбрионов в универсальное решение в темноте при 4 ° С.
    6. Монтаж, наблюдение и Image Acquisition
      1. Перенос эмбрионов в шесть-луночный планшет, содержащий 100% глицерина с использованием минимально возможного объема PBS. Поместите шесть-луночного планшета на качалку и осторожно перемешивать в течение ночи при комнатной температуре в темноте.
      2. Наведите эмбрионов в 100% глицерина, а потом наблюдать сигнал под стереомикроскопом.
      3. Получить изображения, сохранить как файл формата Tiff или любого другого типа, которая позволяет получать изображения высокого качества за счет использования образа программного обеспечения, таких как Photoshop (рис. 3-6).

2. Дважды я N гибридизация

  1. Для достижения двойного мечения описанным выше способом с 1,1 - 1.3.1.7 используется, но включает одновременной инкубацией как дигоксигенином и флуоресцеина меченых зондов при гибридизации.
  2. Выполните ту же процедуру для последующей гибридизации моет именно SSC и PBST автомойки (шаги 1.3.2.1 и 1.3.2.2) и блокирование инкубации (стадия 1.3.2.3). Выполнение антител и окрашивания реакции последовательно, как описано ниже.
  3. Выдержите эмбрионов с AP-связанной-анти-дигоксигенина антитела (1:5000) при 4 ° С при легком помешивании.
  4. Вымойте и инкубировать с BCIP-NBT (шаги 1.3.3.1 - 1.3.3.6).
  5. После обнаружения, мыть эмбрионов дважды ЗФРТ при комнатной температуре в течение 20 мин.
  6. Инкубируйте эмбрионов при 65 ° С в PBST с 1 мМ ЭДТА в течение 30 минут для инактивации анти-дигоксигенин антителом.
  7. Инкубируйте эмбрионов в 100% метанолом, а затем регидратации в 75%, 50% и 25% метанола умч PBST и обратно в PBST в течение 1 часа.
  8. Выдержите в течение ночи эмбрионов AP связью флуоресцеина (1:2000) в блокирующем буфере при 4 ° С при легком помешивании.
  9. Мытье эмбрионов с PBST (шаг 1.3.3.1) и предварительно пятна эмбрионов 2 раза в течение 15 мин с предварительно окрашивания буфера (0,1 М трис-HCl, рН 8,2) при комнатной температуре при осторожном перемешивании до инкубации в присутствии быстро красный . Протокол может быть остановлена ​​и эмбрионы могут храниться при температуре 4 ° C при осторожном перемешивании и возобновились на следующий день.
  10. Растворите один Fast Red таблетка в 2 мл буфера окрашивания непосредственно перед использованием.
  11. Начало реакции окрашивания путем размещения эмбрионов в окрашивании буфера с Fast Red реагента.
  12. Стоп окрашивание реакции, когда желаемая интенсивность окрашивания будет достигнута. Это может занять от нескольких часов при комнатной температуре, чтобы один или два дня в одночасье, когда окрашивание при 4 ° C. Остановить реакцию немедленно, если интенсивность окрашивания не развивается дальше или начинает показывать неспецифическихность по сравнению с чувством управления.
  13. Выполните действия, описанные выше, для остальных шагов именно сообщение фиксации, монтаж, наблюдения и получения изображений (steps1.3.3.5 и 1.3.3.6).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Использование протокола с 50 эмбрионов в корзину (на ген / в экспериментальных условиях) паттерн экспрессии этого гена может быть достигнуто в одном эксперименте. Почти все эмбрионы обнаруживают аналогичные модели выражение для конкретного гена. Характерные примеры на месте окрашивания гибридизации показаны на рисунках 3-6.

Оба смысла и антисмысловых рибозонды были синтезированы из кДНК, соответствующие PC5.1, PC5.2 6, 7 SCL/tal-1, GATA-1...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Мы разработали более совершенные методы визуализации РНК с высоким разрешением. На месте процедуры гибридизации осуществляется с помощью простых заказ корзин с пористыми днищ (рис. 1). Эмбрионы обрабатываются с использованием РНКазы решений в 6-луночных планшетах при комнатной температуре в стерильных условиях.

Для разделения эмбрионов корзины изготавливаются из различных цветных труб Эппендорф. Корзины с или без оправы используются для облегчения ориентации и для и...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Taq PolymeraseInvitrogen10342053
TopoTA Cloning Kit - Dual Promoter pCRII-TOPOInvitrogenK4650-01
HQ Mini Plasmid Purification KitInvitrogenK2100-01
AgaroseRoche11 685 660 001
Not1 и HindIII Ферменты рестрикцииInvitrogen15441-025, 15207-012
Буферный насыщенный фенол, сверхчистыйинвитроген15513039хранить при температуре 4 °C. Раздражает глаза, кожу и дыхательные пути и подозревает канцероген. Следует соблюдать осторожность при обращении.
ХлороформFisherC607-1Токсичен и подозревается в канцерогене. Работа под вытяжным шкафом.
ДНКаза без РНКазы IRoche4716728001Готовьте небольшие аликвоты и храните при -20°С.
Смесь мечения DIG-РНК с Sp6, T7 и T3 РНК-полимеразойRoche11277073910
ингибитором РНКазыRoche10777-019
3,0 М ацетата натрия (pH 5,5)Fisher50-751-7355
100% этанолКоммерческие спирты
Диэтил Пирокарбонат (DEPC)Sigma40718-25MLDEPC является раздражителем глаз, кожи и дыхательных путей. Избегайте попадания на кожу и в глаза. Используйте защитные очки, перчатки и маску.
NaOHFisherSS255-1
EDTA 0,5 м (pH 8,0)Fisher50-751-7404
Растворимые аквариумные системы с океанической сольюН/Д
Фосфатный буферный раствор (PBS)FisherFL-03-0900
Параформальдегид (PFA)SigmaP6148-1KGГотовить и хранить при -20°С; C в виде аликвот по 40 мл для последующего использования. ПФА токсичен. Используйте защитные очки, перчатки и респиратор от пыли.
Фенилтиокарбомид (ПТК)SigmaP7629-25GPTC обладает высокой токсичностью. Используйте защитные очки, перчатки и респиратор от пыли.
МетанолFisherA947-4
Dumont (Часовой s) Щипцы шаблон No 5Fine Science Инструменты
Шестилуночный кластер клеточных культурSarstedt83.1839
Корзины изготовлены из нейлоновой сетки и трубок EppendorfСобственное приготовлениеЧтобы изготовить корзины, вырежьте трубки Eppendorf (1,5 мл) с ободками или без них, чтобы удалить конический конец. Нарежьте капроновую сетку на мелкие кусочки, соответствующие размеру  отрезанные концы трубок Эппендорфа. Поместите трубки с нейлоновой сеткой, закрывающей отрезанный конец, на электрическую трубку. Нагревайте плиту до тех пор, пока трубка и нейлоновая сетка не слипнутся (проводить в вытяжном шкафу). Отрежьте лишнюю сетку от корзин и храните их в 100% метаноле до использования.
Полиоксиэтиленорбитан монолаурат (твин 20)SigmaP1379-500ML
Протеиназа КферментасEO0491
уксусный ангидридсигма242845
триэтаноламинсигма90279-100мл
формамид, высокая чистотаSigmaF9037
AG501-X8 смолаBio Rad142-6424
Моногидрат лимонной кислотыSigmaC0706-500G
Гепариновая натриевая сольSigmaH3393-25KU
Буфер цитрата натрия физиологического раствора (SSC)SigmaS6639
тРНК из пекарских дрожжей типа XSigmaR5636-1ML
NaClFisherS640-500
Tris-HClFisherBP153-1
MgCl2FisherS25403
Левамизола гидрохлоридSigma31742
N,N-диметилформамид
безводный (DMF)		Sigma227056раздражающее, токсичное, горючее и подозреваемое тератоген. Обращайтесь с соответствующей защитной одеждой, включая перчатки и очки.
5-Бром-4-хлор-3-индолилфосфат (BCIP)SigmaN6639Защищайте этот раствор от света.
Nitroblue tetrazolium (NBT)Sigma840WЗащитите это решение от света.
Альбумин из бычьей сыворотки, очищенная фракция V (BSA)SigmaA8806
Овечья анти-дигоксигенин-AP Fab FragmentsRoche 1093274910
глицеринSigmaG5516-500ML
96-луночные клеточные культуральные планшетыSarstedt83.1835
Tg(mnx1:GFP)ml2/Tg(hb9:GFP)ml2ZIRCTg(mnx1:GFP)ml2
Instant OceanAquarium SystemsН/Д

Ссылки

  1. Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nat. Rev. Genet. 8, 353-367 (2007).
  2. Wolman, M., Granato, M. Behavioral genetics in larval zebrafish: learning from the young. Dev. Neurobiol. 72, 366-372 (2010).
  3. Lawson, N. D., Wolfe, S. A. Forward and reverse genetic approaches for the analysis of vertebrate development in the zebrafish. Dev. Cell. 21, 48-64 (2011).
  4. Arkhipova, V., et al. Characterization and regulation of the hb9/mnx1 beta-cell progenitor specific enhancer in zebrafish. Dev. Biol. 365, 290-302 (2012).
  5. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev. Dyn. 203, 253-310 (1995).
  6. Chitramuthu, B. P., et al. Molecular cloning and embryonic expression of zebrafish PCSK5 co-orthologues: functional assessment during lateral line development. Dev. Dyn. 239, 2933-2946 (2010).
  7. Liao, E. C., et al. SCL/Tal-1 transcription factor acts downstream of cloche to specify hematopoietic and vascular progenitors in zebrafish. Genes Dev. 12, 621-626 (1998).
  8. Stainier, D. Y., Weinstein, B. M., Detrich, H. W. 3rd, Zon, L. I., Fishman, M. C. Cloche, an early acting zebrafish gene, is required by both the endothelial and hematopoietic lineages. Development. 121, 3141-3150 (1995).
  9. Detrich, H. W. 3rd, et al. Intraembryonic hematopoietic cell migration during vertebrate development. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92, 10713-10717 (1995).
  10. Liao, W., et al. The zebrafish gene cloche acts upstream of a flk-1 homologue to regulate endothelial cell differentiation. Development. , 124-381 (1997).
  11. Krauss, S., Concordet, J. P., Ingham, P. W. A functionally conserved homolog of the Drosophila segment polarity gene hh is expressed in tissues with polarizing activity in zebrafish embryos. Cell. 75, 1431-1444 (1993).
  12. Akimenko, M. A., Ekker, M., Wegner, J., Lin, W., Westerfield, M. Combinatorial expression of three zebrafish genes related to distal-less: part of a homeobox gene code for the head. J. Neurosci. 14, 3475-3486 (1994).
  13. Alexander, J., Rothenberg, M., Henry, G. L., Stainier, D. Y. casanova plays an early and essential role in endoderm formation in zebrafish. Dev. Biol. 215, 343-357 (1999).
  14. Milewski, W. M., Duguay, S. J., Chan, S. J., Steiner, D. F. Conservation of PDX-1 structure, function, and expression in zebrafish. Endocrinology. 139, 1440-1449 (1998).
  15. Argenton, F., Walker, M. D., Colombo, L., Bortolussi, M. Functional characterization of the trout insulin promoter: implications for fish as a favorable model of pancreas development. FEBS Lett. 407, 191-196 (1997).
  16. Biemar, F., et al. Pancreas development in zebrafish: early dispersed appearance of endocrine hormone expressing cells and their convergence to form the definitive islet. Dev. Biol. 230, 189-203 (2001).
  17. Thisse, C., Thisse, B., Schilling, T. F., Postlethwait, J. H. Structure of the zebrafish snail1 gene and its expression in wild-type, spadetail and no tail mutant embryos. Development. 119, 1203-1215 (1993).
  18. Cadieux, B., Chitramuthu, B. P., Baranowski, D., Bennett, H. P. The zebrafish progranulin gene family and antisense transcripts. BMC Genomics. 6, 156(2005).
  19. Chitramuthu, B. P., Bennett, H. P. Use of zebrafish and knockdown technology to define proprotein convertase activity. Methods Mol. Biol. 768, 273-296 (2011).
  20. Thisse, C., Thisse, B. High resolution in situ hybridization on whole-mount zebrafish embryo. Nat. Protoc. 3, 59-69 (2008).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

KBCIP NBT
Высокое разрешение Всего горе
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.