Method Article

Рано Метаморфические вставки Технология насекомых полета контроля действий

DOI:

10.3791/50901

July 12th, 2014

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы представляем новую хирургическую процедуру имплантации электродов в Manduca sexta на ранних стадиях метаморфизма. Этот метод позволяет механически стабильно и электрически надежно соединиться с нервно-мышечной тканью для изучения динамики нейрофизиологии полета. Мы также представляем новую платформу магнитной левитации для исследований привязного рысканья насекомых.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Early Metamorphosis Insertion Technology (EMIT) — это новая методология интеграции микрофабрикованных нейромышечных платформ записи и активации насекомых во время их метаморфического развития. При этом имплантаты сливаются со структурой и функцией нервно-мышечной системы в результате метаморфической перестройки тканей. Имплантаты появляются вместе с насекомым, где развитие ткани вокруг электроники во время развития куколки приводит к биоэлектрически и биомеханически улучшенному тканевому интерфейсу. Этот относительно более надежный и стабильный интерфейс был бы полезен для многих исследователей, изучающих нейронную основу локомоции насекомых с ослаблением травматических эффектов, вызванных вставками взрослой стадии. В этой статье мы имплантируем наши электроды в непрямые летательные мышцы Manduca sexta. Расположенные в дорсально-грудной клетке, эти основные полетные мышцы, приводящие в действие дорсовентральные и дорсопродольные мышцы, приводят в действие крылья и обеспечивают механическую энергию для гребков вверх и вниз. Относительное сокращение этих двух групп мышц было исследовано с целью изучения того, как нейрофизиологически координируется маневр рысканья. Чтобы охарактеризовать динамику полета, насекомых часто привязывают проводами и их полет фиксируют цифровыми камерами. Мы также разработали новый способ привязать Manduca sexta к магнитно левитирующей раме, где насекомое подключено к коммерчески доступному беспроводному нейронному усилителю. Эта установка может быть использована для ограничения степени свободы рыскания «только» при передаче соответствующих сигналов электромиографии от дорсовентральных и дорсопродольных групп мышц.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Установка электродов, даже с прикрепленными электронных систем в насекомых для телеметрических приложений записи, был основным способом понять, как функцию нервной системы в процессе естественного полета 1. Присоединение или имплантации искусственных систем у насекомых поставил множество проблем, связанных с потенциалом нарушить естественный полет насекомого. Поверхностная вложение или хирургическое введение искусственных платформ на взрослого насекомого является ненадежным из-за возможного смещения вставленных устройств, вызванных тела, вызванных инерционными и сил напряжения. Внешне прилагается или хирургически вставляются электроды также склонны быть отвергнут насекомых, как инородное тело. Кроме того, операция имплантации требует удаления чешуек и свай вокруг экзоскелета. Толстый слой кутикулы также должен быть пробит для хирургических иннервации, которые могут вызвать повреждение тканей обеспечение, тем самым препятствуя естественной полета насекомого. Все тHESE факторы могут сделать хирургическая или поверхностным операция имплантации сложной и деликатной задачей. В целях смягчения этих проблем, связанных с внешне крепления контроля и зондирования системы для насекомых, роман методология участием метаморфическую рост будет описано в этой статье.

Развитие метаморфических из holometabolic насекомых начинается с трансформации личинки (или нимфы) в взрослым с промежуточной стадии куколки (рис. 1). Процесс метаморфоза включает обширный перепрограммирование тканях, включая дегенерацию последующим ремоделирования. Это преобразование превращает земную личинку со взрослым насекомым демонстрируя несколько сложным поведением 2,3.

Выживание насекомых после экстремальных парабиотического операций была продемонстрирована где были проведены операции на ранних стадий метаморфизма 4,5. В этих операций, то с развитием гистогенеза каустикред хирургические раны в ремонте в более короткие сроки. После этих наблюдений, новая методика была разработана, где была выполнена имплантация электропроводных электродов на ранних стадиях метаморфических роста (рис. 1). Это позволяет биомеханики надежное крепление на насекомых 6. Высоконадежный интерфейс также обеспечены нервной насекомого и нервно-мышечной систем 7. Этот метод известен как "Ранний Metamorphosis вставки технологии" (вывод) 8.

После восстановления всей системы тканей, структуры, вставленные в куколки появляются с взрослого насекомого. Летные мышечные группы составляют до 65% от общего грудной массы тела и, таким образом, является относительно удобной мишенью для процедуры EMIT 9. Во время основной фланге обыграл, изменения в морфологии полета, питающего dorsolongitudinal (DL) и дорсовентральной (DV) мышцы вызвать крыла articulatГеометрия ионно генерировать подъемную 10. Поэтому функциональная координация DL и DV мышц был активным тема исследования под полета нейрофизиологии. Tethering насекомых в электронном виде запрограммированных визуальных сред был самым распространенным методом для изучения нейрофизиологии сложных двигательных поведения 11,12. Цилиндрические арены, состоящие из светоизлучающих диодных панелей были использованы для этих виртуальной реальности условиях, где летающие насекомые привязаны в середине и движение моделируется динамического обновления окружающий панорамный визуальное отображение. В случае небольших насекомых, таких как плодовой мушки Drosophila, модем достигается путем присоединения металлический штифт на дорсальную грудной клетки насекомого и размещение штифт под постоянным магнитом 13,14. Этот метод позволяет только количественное двигательных реакций через визуальных наблюдений с камерами высокой скорости без каких-либо электрофизиологического анализа. Более того, эта метод был неэффективным приостановить больше и тяжелее тело Manduca Sexta. Чтобы решить эту проблему, мы выиграли от магнитно левитирующих кадрах, где легкий вес рамы с магнитами, прикрепленные к их нижней которые левитировать через электромагнитных сил. В сочетании с имеющимися в продаже нейронных усилителей и светодиодных массивов, это обеспечивает платформу для управления выводом полета двигателя и записать, связанных электрофизиологии Manduca Sexta.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ПРИМЕЧАНИЕ: Источником материалов и реагентов, необходимых для следовать протоколу предусмотрено в "Реагенты" Таблица ниже.

1. Подготовка Печатные платы (ПХД) для записи электрода Connection

ПРИМЕЧАНИЕ: Для того чтобы обеспечить практическую экспериментальную процедуру, проволочные электроды припаяны к печатной плате, чтобы вставить эти электроды в разъем FFC (гибкий плоский кабель).

  1. Вырежьте 0.5x5 см 2 части медью ламината.
  2. Использование тонкий наконечник маркера, сделать три 0.1x5cm 2 прямоугольника колодки как травление шаблонов масок.
  3. Протравите подвергается ламинат с использованием травителя PCB внутри проветриваемом помещении или вытяжного шкафа. Обложка около 1 см длины ламината вырез с нереакционноспособного ленты. Заполните градуированную мензурку с по меньшей мере 100 мл травителя на печатной плате и ленты меди ламинат вырез на внутренней стороне градуированный стакан с скотча. Половина меди ламинат cutouт должна быть погружена в травителя на печатной плате.
  4. Поместите стакан на вращающейся платформе в течение 20 мин.
  5. Извлеките вырез от травителя и поместить его в химический стакан, наполненный водой в течение 10 мин.
  6. Использование папиросной бумаги, применять изопропиловый спирт и удалить маркировку, чтобы разоблачить, не травления меди колодки.
  7. Разрежьте печатную плату на меньшие квадраты длиной около 1 см.
  8. Отрежьте два куска покрытием, отжигают, проволоки из нержавеющей стали (0,11 "с покрытием, 0,008" голые), используя острый нож к длине 3 см каждый. Эти куски проволоки из нержавеющей стали являются активные электроды, которые будут вставлены в грудной клетки насекомого.
  9. Использование лезвие, удалить 4-5 мм от пластиковым покрытием от каждого конца каждого провода. Использование микроскопа рекомендуется.
  10. Отрежьте один 0,7 см кусок изолированного провода нержавеющей стали для создания расширения наконечник для заземляющего электрода. Аккуратно удалите покрытие с лезвием или расплавить его с пылу пайки ИКна как выполняется на этапе 1.9.
  11. Для подключения заземления, вырезать один кусок гибкого (гибким или индуктор) провода на длину 4,5 см.
  12. Припой 0,7 см кусок нержавеющей стали, полученного на стадии 1,10 к проводу заземления, полученного на стадии 1.11. Подвергается наконечник из нержавеющей стали должно быть в конце заземлением.
  13. Лента подготовленный электрод доска твердо пайки рабочей использованием нереакционноспособный ленту. Используйте ленту, чтобы замаскировать все, кроме 1-2 мм из площадок на плате, где электроды будут припаяны. Это масках, без пайки конец колодки будут вставлены в разъем FFC, описанной в шаге 4.1.
  14. Выравнивание три электродных проволок, так что один конец каждого может быть припаяны к соответствующим прокладки на электроде плате. Применение поток из нержавеющей стали через электродных площадок для облегчения пайки.
  15. Припой каждой из открытых электродов на колодки.
  16. Погрузить электроды в ацетоне и изопропиловом спирте в течение 10 минкаждый для очистки припоя остатки. Использование ультразвуковой ванне улучшает эффективность очистки.

2. Хирургическое Вносимые в Manduca Sexta Куколки

ПРИМЕЧАНИЕ: Насекомые будут наиболее активными во время переходов между днем ​​и ночью. Таким образом, искусственный дневной / ночной цикл должен быть установлен в пределах камеры насекомых с помощью автоматических таймеров выходе. Они должны быть установлены для имитации 7 ч темноты и 17 ч света цикл.

  1. Изучите Sexta куколки Мандука ежедневно, чтобы определить подходящее время вставки. Куколки готовы для вставки примерно один день после того, как крылья обладают темные пятна.
  2. Чтобы обезболить куколки, поместите их в холодильник (4C) около 6 часов.
  3. Подготовьте вставки рабочее пространство. Рабочее пространство должно включать изопропиловый спирт, острые щипчики, лопасти, и 30 г шприц. Как вариант, цианоакрилат клей может быть использован для повышения фиксацию электрода.
  4. Стерилизовать иглу, пинцет и электроды, опуская их в или протирая изопропилового спирта.
  5. Снимите куколки из холодильника и перенести его в рабочую область.
  6. Определить местоположение на грудной клетке, соответствующей группы мышц, представляющего интерес. В центре внимания работы в этом примере дорсовентральной мышцы, ответственные за движения крыла хода вверх.
  7. Используя острый нож, аккуратно поцарапать 1x1 см 2 прямоугольник через exocutical слоя. Используя пинцет, медленно снимите эти куски.
  8. (Дополнительно) Используйте вакуум для удаления крыла волосы с открытой области грудной клетки.
  9. Медленно введите иглу около 5 мм в среднегруди где крылья придают грудной клетки, чтобы создать две точки вставки, нацеленные на группу мышц.
  10. С помощью пинцета, руководство двух записи электроды в двух точек вставки.
  11. (Необязательно) Чтобы повысить механическую прочность, убрать волосы вокруг электродови щедро применять цианакрилатного клея вокруг каждой точки вставки на грудную клетку с проволочной аппликатора.
  12. Подготовить клетку для возникновения с соответствующими материалами (грубая и текстурированных), покрывающей стены и потолок так, что насекомое может подняться на появление. Могут быть использованы перфорированные картонные коробки или упаковки бумаги.
  13. Подготовьте жесткой фиксации палку длиной около 6 см и диаметром 2 мм. Пластиковые мешалки, ватный тампон или металлические провода можно использовать для этого шага.
  14. Аккуратно вставьте эту палку через отверстие под выступающей хоботка.
  15. Fix обе стороны палкой по клетке поверхности такой, что куколка не может вращаться. Расположите куколку внутри клетки таким образом, что среднегрудь вверх. Обширная движение может привести к повреждению электрода, потеря гемолимфы, или сделать вставки бесполезно.

3. Установка заземляющий электрод в Manduca Sexta

ПРИМЕЧАНИЕ: На первом (см.ENCE) электрод должен быть вставлен в животе или дистальных отделах грудной клетки, чтобы предотвратить взаимные сигнала. Эта вставка может быть сделано либо на поздних стадиях развития куколки или после насекомое выходит. Окно для заземляющего электрода должен быть подготовлен в стадии куколки или для куколок или взрослой стадии введения заземляющий электрод.

  1. Для куколки вставки стадии: после пилинга из mesothoracic кутикулы вокруг активного электрода (см. шаг 2.7), поцарапать другой прямоугольник через exocutical слоя (около 0.5х0.5 см 2) на спинной части живота рядом с грудной клетки, используя 30 г шприц игла. Вставьте заземляющий электрод в это окно по методике, описанной в разделе 2.
  2. Для взрослого вставки этап заземляющий электрод: как только насекомое появилось, поместите его в холодильник при температуре 4 ° С в течение 6 до 24 часов с иммобилизации.
    Остальные шаги такие же, как для куколок и взрослой стадии вставок.
  3. Подготовьте INSER Тион рабочее пространство, включая изопропиловый спирт, острыми пинцетом, в 30 G иглы для подкожных инъекций, цианакрилатного клея, кусок проволоки для нанесения клея, тепловой cauterizer (опционально), а также стоматологической восковой палочкой (опционально).
  4. Найдите точку вставки примерно 1-2 см от регистрирующих электродов вдоль заднего брюшка.
  5. Медленно введите иглу для прокола живота и обеспечить место введения.
  6. С помощью пинцета осторожно вставьте заземляющий электрод в месте введения и оказать давление, пока это не глубоко 3-4 мм. Держите электрод на месте и использовать провод применять клей вокруг места введения.
  7. (Необязательно) Чтобы повысить механическую прочность, использовать тепловую cauterizer и собрать небольшой (2-3 мм) шарик воска на конце. Поместите кончик близко к месту ввода и применять тепла, в частности, что воск окружает электрод и держит его крепко на месте.

4. Подготовка Совета адаптер

ontent "> ПРИМЕЧАНИЕ:. плата адаптера необходимо подключить электродный доска к беспроводной headstage записи через ФФК (плоский гибкий кабель) разъем Для этого, доска похожа на электродной борту должен быть подготовлен в соответствии с шагами от 1,1 до 1,7 .

  1. Припой разъем FFC на одном конце, подготовленной доске.
  2. Припой три 30 AWG (American Wire Gauge) подключить провода к трем колодки на другом конце.
  3. Припой три мини разъемы для трех площадок на платы адаптера для чтения осциллографа, как описано в следующей стадии.
  4. Припой другой конец этих трех проводов к разъему headstage.
  5. Закрепить монтажную плату headstage в верхней части левитации кадра.

5. Предварительной записи с осциллографа (опционально)

ПРИМЕЧАНИЕ: Для того чтобы оценить надежность электродов и наблюдать отношение сигнала к шуму, привязанные осциллографа качество записи может быть до развертывания WirelСистема записи ESS. Мини разъемы проводов на платы адаптера следует использовать для этого.

  1. Подключите осциллограф к внеклеточной нервной усилителя записи. Установите параметры усилителя в высоких частот отсечки частотой 1 Гц, низкочастотный отсечения частотой 20 кГц, и коэффициентом усиления 100.
  2. Подключите каждому наружному мини проволочных соединителей на платы адаптера для входных каналов усилителя.
  3. Снимите насекомое с имплантированного электрода борту из клетки, когда она находится в активном состоянии (в свое время рассвета). Место кусок папиросной бумаги под насекомого для того, чтобы почивать на до начала замеров.
  4. С помощью пинцета, сдвиньте электрода плату в рецептора FFC на платы адаптера. Соблюдайте плоский и низкий базовый уровень напряжения, когда насекомое отдыхает и генерация электромиограмме (ЭМГ) шипы, как насекомое машет крыльями.
    ПРИМЕЧАНИЕ: См. раздел 6: Наблюдая насекомых полета с Системой Wireless Звукозаписывающая для предстив результаты осциллографа.
  5. Отрегулируйте параметры просмотра осциллографа по мере необходимости. Захват данные на осциллограф и сохранить данные.

6. Наблюдений насекомых полета с системой беспроводной Звукозаписывающая

ПРИМЕЧАНИЕ: электромагнитная левитация платформа может быть построен для беспроводной записи сигналов ЭМГ во привязной Manduca Sexta полета. Левитация платформа состоит из рамы разработан, чтобы сбалансировать механизм модема. Левитация позволяет кадр, и поэтому насекомое, рыскания во время тестирования без ограничении привязывать проводов. Рама может быть быстрым-прототип с использованием плавленого моделирование осаждения (FDM) машины. Магнит должен быть присоединен к нижней части этой кадра, подлежащего подвеске серией магнитов в базовой платформы. Насекомое подключен к разъему ФФС подвешенной к верхней части рамы. Это левитации платформа расположена внутри светодиодной Arena, который был построен УсинG 60 панели, состоящие из множества отдельных светодиодов 5x7. Эта система была основана на установленных методов разработки условий для визуальной стимуляции фруктов летит 15, 16, 17. Арена управляется микроконтроллером позволяя моделирования правое и левое направление вращения, а также контролем скорости вращения.

  1. Настройка беспроводного систему записи, подключив headstage к разъему платы адаптера на левитации платформы.
  2. Удаление насекомых из клетки когда он находится в активном состоянии предпочтительно в свое время рассвете.
  3. С помощью пинцета осторожно вставьте электрода плату в рецептора FFC на левитации кадре такой, что насекомое приостанавливается твердо в установке.
  4. Поместите магнитный инструмент вблизи магнитного переключателя на headstage для активации беспроводной передачи данных. Синий свет загорается, оповещая о том, что headstage активен.
  5. Выключите свет вкомната для полной темноте. Красная лампочка может быть использован для добавления освещение в комнате. Откройте программное обеспечение сбора данных телеметрии на компьютере и выбрать соответствующий предварительно загруженный файл конфигурации, если это предусмотрено. Начните сбор данных, чтобы начать сигналы обзора.
  6. Выберите соответствующий пользовательский интерфейс для наблюдения сигналов ЭМГ на беспроводной системы записи для обеспечения надежного беспроводного операции соединения и электрода.
  7. Включите все компоненты светодиод Арена: Регулируемый DC питания и микроконтроллер. Микроконтроллер может настроить оборотов в минуту циклического картины света, а также может управлять направлением света вращения.
  8. Медленно сбалансировать левитации платформы в арене. Совместите над центром левитации базе тщательно кадр, иначе кадр будет быстро вытащил на землю может травмировать насекомое.
  9. Инициировать системы видеозаписи.
  10. Выберите соответствующую вкладку записи программного обеспеченияИнтерфейс. Назначить время записи и сохранения файла назначения. Выберите соответствующие настройки вывода для сохранения данных. Нажмите кнопку Пуск, чтобы начать сеанс записи в программном обеспечении. Это позволит сохранить файл данных, который может быть импортирован в численных вычислительных средах.
  11. Заметим, как насекомое летит в направлении, которое соответствует движению светодиодов. Измените направление светодиодов и убедитесь, что насекомое меняет направление. Выполните это столько раз, сколько это необходимо.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Схема общей процедуры EMIT представлена ​​на рисунке 1, показывающую основные этапы цикла метаморфических в Hawkmoth и соответствующих шагов вставки электрода. Вставка электрод должны быть выполнены в конце стадии куколки от 4 до 7 дней до вылупления. Это позволяет мышечные волокна разработать вокруг электродов и закрепить имплантат в насекомого.

Типичный результат завершенной конце куколки вставки стадии, где две активные электроды и заземляющие электроды были вставлены пок...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Есть несколько важных шагов в ходе хирургической вставки из регистрирующих электродов, которые влияют на возможность записи данных на более поздних ступенях протокола. Регистрирующие электроды должны быть вставлены в куколки одного дня после экспонирования крыла пятна на ее спинной стороне. Если вставка выполняется два или более дней после этого времени, ткани насекомого не хватит времени, чтобы развить вокруг и стабилизации вставленные электроды. Это может привести к движению имплантированных электродов и ненадежных за...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

У авторов нет конфликта интересов в данном исследовании.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

А.Б. благодарностью отмечает Национальный научный фонд для финансирования в рамках программы Cyber ​​физических систем (1239243) и Отдел высшее образование (1245680); и обороны Агентство перспективных исследований проекта (DARPA) для поддержки на ранних стадиях этой работы. Более ранние этапы этой работы была выполнена AB в лаборатории профессора Amit Лала в Корнельском университете. А.Б. благодаря Ayesa Синха и профессор Лал для экспериментального руководством и генерации идей на данном этапе. Мандука Sexta (Линней 1763) были получены из колонии поддерживается кафедры биологии в Университете Дьюка, Дарем, Северная Каролина, США. Бабочки были использованы в течение 5 дней вылупления. Мы хотели бы поблагодарить треугольник Biosystems International, особенно Дэвид Juranas и Кэти Millay за отличную техническую помощь и использования их системы Neuroware. Мы также хотели бы поблагодарить Уилл Caffey за помощь в ходе экспериментов.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Проволока из нержавеющей стали с покрытиемA-M Systems7919000.008' ’ Голый, 0.011' ’ с покрытием, отожженный
Можно использовать гибкий электродный проводLitz или индукторную проволоку.
Разъем для поверхностного монтажа FFCHirose ConnectorFH28E-20S-0.5SH(05)
ПинцетGrobet СШАПромойте 70% спиртом перед использованием на насекомомом.
СалфеткиKimberly-Clark Worldwide34155Можно использовать нежные салфетки любого размера.
Тефлоновая ленташириной 5 мм Тефлоновая лента.
Игла для подкожных инъекцийBecton Dickinson & Co.30511Можно использовать иглу для подкожных инъекций 20-30 G. На видео показали 30 G.
Жесткая фиксирующая палкаМожно использовать различные материалы (<>например, ., мешалки для кофе
КлеткаПластиковая клетка для домашних животных, выстланная упаковочной бумагой или аналогичной обивкой. Вентиляционные отверстия необходимы.
Термический прижигательAdvanced Meditech InternationalCH-HI CT2103 (наконечник)Дополнительное оборудование, используемое для нанесения стоматологического воска.
Стоматологический воскOrthomechanics LC., Broken Arrow, OklahomaДополнительный материал, используемый для стабилизации электродов на насекомомом.
магнитной левитацииСпециально разработанная рама, изготовленная на собственном предприятии с 3D-прототипированием.
) для появления насекомых Платформа

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Taubes, G. Biologists and engineers create a new generation of robotics that imitate life. Science. 288 (7), 80-83 (2000).
  2. Duch, C., Bayline, R. J., Levine, R. B. Postembryonic development of the dorsal longitudinal flight muscle and its innervation in Manduca sexta. Journal of Comparative Neurology. 422 (1), 1-17 (2000).
  3. Levine, R. B., Morton, D. B., Restifo, L. L. Remodeling of the insect nervous system. Current opinion in neurobiology. 5 (1), 28-35 (1995).
  4. Williams, C. M. Physiology of insect diapause: the role of the brain in the production and termination of pupal dormancy in the giant silkworm Platysamia cecropia. Bio. Bull. 90, 234-243 (1946).
  5. Williams, C. M. The juvenile hormone. II. Its role in the endocrine control of molting, pupation, and adult development in the Cecropia silkworm. Bio. Bull. 121, 572-585 (1961).
  6. Bozkurt, A., Lal, A., Gilmour, R. Radio control of insects for biobotic domestication. 4th International IEEE/EMBS Conference on Neural Engineering. , 215-218 (2009).
  7. Bozkurt, A., Gilmour, R. F., Lal, A. In vivo electrochemical characterization of a tissue–electrode interface during metamorphic growth. IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 58 (8), 2401-2406 (2011).
  8. Bozkurt, A., Gilmour, R. F., Lal, A. Insect–machine interface based neurocybernetics. IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 56 (6), 1727-1733 (2009).
  9. Chapman, R. F. The Insects: Structure and Function. , Cambridge University Press. (1998).
  10. Eaton, J. L. Morphology of the head and thorax of the adult tobacco hornworm, Manduca sexta (Lepidoptera:Sphingidae). I. Skeleton and muscles. Annals of the Entomological Society of America. 64, 437-445 (1971).
  11. Resier, M. B., Dickinson, M. H. A modular display system for insect behavioral neuroscience. Journal of Neuroscience Methods. 167 (2), 127-139 (2008).
  12. Dombeck, D. A., Reiser, M. B. Real neuroscience in virtual worlds. Current opinion in neurobiology. 22 (1), 3-10 (2011).
  13. Weir, P. T., Dickinson, M. H. Flying drosophila orient to sky polarization. Current Biology. 22 (1), 21-27 (2012).
  14. Ristroph, L., Bergou, A. J., et al. Discovering the flight autostabilizer of fruit flies by inducing aerial stumbles. Proceedings of the National Academy of Sciences. 107 (11), 4820-4824 (2010).
  15. Strauss, R., Schuster, S., Götz, K. G. Processing of artificial visual feedback in the walking fruit fly Drosophila melanogaster. The Journal of experimental biology. 20 (9), 1281-1296 (1997).
  16. Lindemann, J., Kern, R., Michaelis, C., Meyer, P., van Hateren, J., Egelhaaf, M. FliMax, a novel stimulus device for panoramic and highspeed presentation of behaviourally generated optic flow. Vision Research. 43 (7), 779-791 (2003).
  17. Reiser, M. B., Dickinson, M. H. A modular display system for insect behavioral neuroscience. Journal of neuroscience methods. 167 (2), 127-139 (2008).
  18. Bozkurt, A., Gilmour, R. F., Lal, A. Balloon-assisted flight of radio-controlled insect biobots. IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 56 (9), 2304-2307 (2009).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Early Metamorphic Insertion TechnologyInsect Flight Behavior MonitoringElectromyography RecordingIndirect Flight MusclesManduca sextaMetamorphic Tissue RemakingNeuromuscular Recording PlatformsMagnetically Levitating FrameWireless Neural AmplifierDorsoventral Muscles

Related Articles