Методическая статья

Стратегия для чувствительной, крупномасштабного Количественные Metabolomics

DOI:

10.3791/51358

⸱

27 мая 2014 г.

 ,  ,  ,  , 
1Division of Nutritional Sciences, Cornell University, 2Field of Biochemistry, and Molecular Cell Biology, Cornell University

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Метаболита профилирования был ценным активом в изучении обмена веществ в норме и патологии. Используя обычный поэтапное жидкостной хроматографии в сочетании с масс-спектрометрии высокого разрешения с переключением полярности и быстрым рабочим циклом, мы опишем протокол для анализа полярный метаболический состав биологического материала с высокой чувствительностью, точностью и разрешением.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Метаболита профилирования был ценным активом в изучении обмена веществ в норме и патологии. Тем не менее, современные платформы имеют различные лимитирующие факторы, такие как трудоемких образцов препаратов, низких пределов обнаружения, медленных скоростях сканирования, интенсивной оптимизации метода для каждого метаболита, и возможность измерения как положительно, так и отрицательно заряженных ионов в отдельных экспериментах. Таким образом, роман протокол метаболомика могли продвинуться Метаболомика исследования. Амид основе гидрофильные хроматографии позволяет полярный анализ метаболита без какой-либо химической производных. Высокое разрешение MS помощью Q-Exactive (QE-MS) улучшилась ионной оптики, увеличить скорость сканирования (256 мс при разрешении 70000), и имеет возможность проведения положительный / отрицательный переключение. Использование холодного стратегию извлечения метанола, и муфта столбец амидной с QE-МС позволяет надежное обнаружение 168 целевых полярных метаболитов и тысячами дополнительных особенностей одновременно. Датобработка осуществляется с помощью коммерчески доступного программного обеспечения в весьма эффективным способом, и неизвестные характеристики, извлеченные из масс-спектров, может быть получен в базах данных.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Метаболомика, определенные в качестве эксперимента, который измеряет несколько метаболитов одновременно, был в районе интенсивных интерес. Метаболомика обеспечивает прямое считывание молекулярной физиологии и обеспечила понимание развития и заболевания, такие как рак 1-4. Ядерный магнитный резонанс (ЯМР) и газовой хроматографии-масс-спектрометрии (ГХ-МС) являются одними из наиболее часто используемых инструментов 5-9. ЯМР, особенно был использован для потока экспериментов с тяжелым изотопом меченых соединений, таких как 13 C меченых метаболитов, являются ЯМР-активных 10,11. Однако, эта стратегия требует относительно высокой чистоты образца и большое количество образцов, что ограничивает ее применение в метаболомики. Между тем, данные, полученные от ЯМР необходим интенсивный анализ и соединение назначение сложных спектров ЯМР трудно. ГХ-МС широко используется для полярных метаболитов и липидов исследований, но она требует летучих compounспуск и поэтому часто дериватизация метаболитов, которая иногда включает сложную химию, что может занять много времени и вводит экспериментальную шум.

Жидкостной хроматографии (LC), соединенный с тройной квадрупольный масс-спектрометрии использует первый квадрупольные для выбора неповрежденные родительские ионы, которые затем фрагментированные во втором квадруполе, а третий квадрупольного используется для выбора характерные фрагменты или ионы дочь. Этот метод, который записывает переход от родительских ионов к конкретным дочерних ионов, называется несколько мониторинг реакции (MRM). MRM является очень чувствительным, специфической и надежный метод как для малых молекул и белков количественного 12-15,21. Тем не менее, MRM имеет свои ограничения. Для достижения высокой специфичностью метод МРМ должна быть построена для каждого метаболита. Этот метод состоит в идентификации конкретного фрагмента и соответствующая оптимизированная энергию удара, которая требует предварительной знание Недвижимrties из метаболитов, представляющих интерес, таких, как информация химической структуры. Таким образом, с некоторыми исключениями, связанных с нейтральной потерю общих фрагментов, это не возможно идентифицировать неизвестные метаболиты с этим методом.

В последние годы, масс-спектрометрия высокого разрешения (HRMS) инструменты были освобождены, таких как LTQ-Orbitrap и Exactive серии, в QuanTof и TripleTOF 5600 16-18,22. HRMS может обеспечить массы к заряду (m / z) интактных ионов с точностью в несколько частей на миллион. Поэтому HRMS инструмент работает путем обнаружения все ионы-предшественники (т.е. полный режим сканирования) могут получить прямой структурной информации из точной массы и, как следствие элементного состава анализируемого вещества, и эта информация может быть использована для выявления потенциальных метаболитов. В самом деле, вся информация о соединения могут быть получены с точной массе, до уровня структурных изомеров. Кроме того, полныйметод сканирования не требует предварительных знаний о метаболитов и не требует оптимизации метода. Более того, так как все ионы с м / з попадания в диапазоне сканирования могут быть проанализированы, HRMS имеет почти неограниченные возможности в плане количества метаболитов, которые могут быть количественно за один проход по сравнению с методом MRM. HRMS также сопоставимы с тройной квадруполь MRM в количественном мощности из-за короткого рабочего цикла, что приводит к сопоставимым количество точек данных, которые можно получить в полном MS сканирования. Поэтому HRMS предоставляет альтернативный подход для количественных метаболомики. Недавно улучшенная версия СУЛР называется Q-Exactive масс-спектрометрии (QE-МС) может работать под переключения между положительными и отрицательными мод с раз достаточно быстро циклов из одного метода, который расширяет диапазон обнаружения 19. Здесь мы опишем нашу стратегию метаболомики помощью QE-МС.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Подготовка LC-MS Реагенты, учреждении метод хроматографии, и создание инструмента оперативных процедур

  1. Подготовка LC растворителей
    1. Приготовления 500 мл подвижных фаз. 20 мМ ацетата аммония и 15 мМ гидроксида аммония в 3% ацетонитрил / вода, конечный рН 9,0; и B составляет 100% ацетонитрила.
    2. Свободно Закройте бутылку и поместите его на водяной бане ультразвуком, и разрушать ультразвуком в течение 10 мин без дополнительной системы отопления. (Этот шаг, чтобы гарантировать, что все аммонийные соли полностью растворить и что нет пузырьков остаточного воздуха.)
    3. Передача 250 мл растворителя на 250 мл стеклянной бутылке для ЖХ-МС использования, и держать остаток при 4 ° С.
  2. Приготовьте раствор калибровки низкого диапазона массы. Важно использовать индивидуальные области низких масса калибровочной смеси для применения метаболомики чтобы гарантировать, что точные массы обнаружены при низких молекулярных масс.
    1. Взвесьте 5 мг и Sodiфторацетатом мкм и гомованилиновой кислоты и растворить их в 5 мл воды, чтобы получить конечную концентрацию 1 мг / мл. Растворить диазинон в метаноле, чтобы получить конечную концентрацию 10 мг / мл.
    2. Для подготовки 1 мл отрицательной низкой калибровочного раствора масса, смешать 960 мл термо отрицательной калибровочного раствора с 20 мл fluoroaceate натрия и раствором гомованилиновой кислоты. Чтобы 1 мл положительной низкой калибровочного раствора масса, смешать 990 мл термо положительного решения калибровки и 10 мл диазинон решение. (Калибровочный раствор низкая масса должна храниться при температуре 4 ° С и быть готовым свежим каждые 2 месяца.)
  3. Калибровка QE-МС по низкой диапазон масс
    1. Перед выполнением калибровки низкий диапазон масс, проводить стандартный массовый калибровку (м / з, 150-2,000) в положительные и отрицательные режимов, основанных на инструкциями изготовителя.
    2. После того, как регулярная калибровка масса проходит, настроить диапазон сканирования для 60-900 т / г в панели управления прибороми источником CID 25 эВ для положительного режиме и 35 эВ для режима отрицательной применяется. (Это даст устойчивых сигналов иона фрагмента кофеина и сульфат-иона. Диапазон сканирования здесь фиксировано, потому что последний м / з не должно быть больше, чем 15x исходного м / з)
    3. После того, как источник ионов стабильно, то выполнить индивидуальную калибровку. Примечание: стабильный источник определяется как менее 10% от общего ионного тока вариации в положительном режиме, и менее 15% в отрицательном режиме. В индивидуальные ионы калибровки и соответствующий м / з приведены в таблице 1.
  4. Установите приборы LC-MS для полярной анализа метаболита. LC соединен с QE-МС для разделения метаболита и обнаружения.
    1. Оборудуйте QE-МС с подогревом электрораспылительной ионизационного электрода (H-ESI). Установите соответствующие параметры настройки для зонда, как указано: температуры нагревателя, 120 ° С; оболочка газа, 30; вспомогательный газ, 10; продувочного газа, 3; спрей напряжения, 3,6 кВ дляположительн. и 2,5 кВ для режима отрицательной. Установите температуру капилляров на 320 ° С и S-объектив на 55.
    2. Построить метод полной проверки следующим образом: Полный диапазон сканирования: от 60 до 900 (м / г); разрешение: 70000; Максимальное время впрыска: 200 мс с типичными времени впрыска вокруг 50 мс; автоматическая регулировка усиления (AGC): 3000000 ионы. Эти настройки привести к рабочим циклом около 550 мс для выполнения сканирования в обоих положительной и отрицательной режиме.
    3. Создание метода хроматографии. Применять столбец кислоты (100 х 2,1 мм ID, 3,5 мм) для разделения соединения при комнатной температуре 13,15. В качестве подвижной фазы, как описано выше, и мобильная фаза В является ацетонитрил. Используйте линейный градиент следующим образом: 0 мин, 85% Б; 1,5 мин, 85% В, 5,5 мин, 35% В; 10 мин, 35% B, 10,5 мин, 35% B, 14,5 мин, 35% В, 15 мин, 85% В и 20 мин, 85% B. расход 0,15 мл / мин от 0 до 10 мин и 15 до 20 мин и 0,3 мл / мин с 10,5 до 14,5 мин.

2. Preparation метаболита образцов

  1. Подготовка экстракции растворителем. Смешайте 40 мл метанола (ЖХ-МС класса) и 10 мл воды (ЖХ-МС класс) в 50 мл трубки, и держать его в -80 ° C морозильнике в течение по крайней мере 1 часа перед использованием. Примечание: Эта процедура и следующие шаги могут быть изменены по добыче биологической ткани и жидких образцах.
    1. Рак толстой кишки НСТ Культура 8 клеток в трех 10 см чашки или 6-луночных планшетах с полной среде для роста, RPMI 1640, дополненной 10% тепла инактивированной фетальной бычьей сыворотки и 100 000 единиц / л пенициллина и 100 мг / л стрептомицина.
    2. Когда клетки достигают 80% слияния, быстро удалить среды, и поместите блюдо или тарелку сверху сухим льдом 13,15. Добавить 1 мл экстракционного растворителя немедленно (80% метанол / вода), а также передавать пластину к -80 ° C морозильник. Для 10-см чашку, добавляют 3 мл экстракционного растворителя в каждую лунку. (Попробуйте снять среды как можно больше, чтобы избежать эффекта ионного подавления из-за остаточных солей из среды.)
    3. Оставьте пластину в течение 15 мин. Удалите ее из морозильника, и очистить клетки в растворителе на сухом льду. Передача раствора до 1,7 мл пробирки Эппендорфа и центрифуге со скоростью 20000 мкг при 4 ° С в течение 10 мин. (Подготовка клеток метаболиты из трех отдельных блюд, чтобы сделать три дублирующие образцы. Цель сохраняя две трубы, чтобы иметь один в качестве резервного.)
    4. Передача супернатант в двух новых Эппендорф, и высушите их в скорости вакууме. Это занимает около 3-6 ч в зависимости от скорости вакууме используется. (Образцы можно также сушили в течение ночи в атмосфере газообразного азота.)
    5. После сушки, хранения труб каждого образца в -80 ° C морозильник. Когда все готово, восстановить один образец в 20 мл воды (ЖХ-МС класса), и вводят в 5 мл LC-QE-МС для анализа.

3. Настройка Sample последовательности

  1. После калибровки образом осуществляется на QE-MS, уравновесить колонку LC в течение 5 мин с 85% A при скорости потокаСкорость 0,15 мл / мин, которая является исходным условием LC градиента.
  2. Настройте последовательности выборок в случайном порядке. Примечание: В этом смысле, это распределяет колебаний вносимые ЖХ-МС для каждого образца и обеспечивает более точное сравнение между различными образцами. Каждые 6 образцов, добавьте стирки серию, которая разделяет тот же метод MS, за исключением LC градиент 95% в течение 10 мин и затем колоночной уравновешивания 5 мин при 85% А с расходом 0,15 мл / мин. Добавить пустые образцы (100% воды) после каждого мытья перспективе оценить фон системы и перенести уровнях.
  3. Сохранить последовательность и как только колонна LC показывает стабильное давление около 400 фунтов на квадратный дюйм, начать работать последовательности. Если нет другой образец для запуска после этой последовательности, а затем добавить стоп перспективе в конце последовательности, имеющей скорость потока 0 мл / мин в конце градиента и выбрать "Standby" после окончания последовательность.
  4. Повторно запустить тот же набор образцов 12 ч после калибровки. (Это яс целью оценки колебания ошибке масса после калибровки.)

4. Сообщение Анализ Инструмент Очистка и обслуживание

  1. В конце последовательности, колонку промывают 95% A при скорости потока 0,2 мл / мин в течение 2 часов, а при необходимости, обратный колонку перед стиркой.
  2. Удалите столбец LC и непосредственно подключить LC для ионного источника с помощью союза. Подготовка очистки растворитель, вода / метанол / муравьиная кислота (об.: об: об 90:10:0.2), установленный MS в режиме ожидания, и система мыть ЖХ-МС при скорости потока 0,1 мл / мин в течение 1 ч, чтобы удалить остаточный осадок солей или других примесей. Опустите расход, если есть слишком много давления в системе.
  3. Установите температуру капилляров при 50 ° С, и снимите ионный клетку. Осторожно вынуть конус ионный развертки и ионный передачи трубку после того как температура капиллярной падает до 50 ° С. Использование грубую сетку, например, наждачной бумагой, чтобы удалить примеси, оставшиеся на поверхности конуса ион развертки.
  4. Поместите переноса ионовтрубка в 15 мл пробирку, содержащую Фалькон 10 мл 90% вода / метанол с 0,1% муравьиной кислоты. После обработки ультразвуком трубку на водяной бане для обработки ультразвуком в течение 20 мин, декантируют растворитель внутри, заменить его 10 мл чистого метанола и разрушать ультразвуком течение еще 20 мин. (При необходимости обработку ультразвуком может быть сделано при 40 ° С или даже более высокой температуре, чтобы достичь лучших результатов очистки.)

5. Анализ ЖХ-МС данные

  1. Для обеспечения последовательности выборок проходит гладко, после окончания первых двух образцов в последовательности, проверьте пики для неизвестных метаболитов. Используйте файл CSV список метаболитов имена, нейтральный химическую формулу и режим детектирования (положительное или отрицательное), в качестве входного файла и выходной файл содержит извлеченные пики и массовое ошибку в промилле. Если пик формы является ненормальным или ошибка масса выключен более чем на 5 частей на миллион, то остальная часть последовательности должна быть остановлена ​​и устранение неисправностей должно быть сделано.
  2. Выберите метод «пик выравниваниеи добыча рамка "на коммерчески доступного программного обеспечения. Выберите исходные данные из LC-MS и групповой них. Возьмите образцы в середине последовательности выполнения в качестве справочного хроматографии образца для пикового выравнивания. Загрузить семя кадра, содержащую известных метаболитов для целенаправленного анализа метаболитов с данными, собранными и соответствующего кадра семени.
  3. Выполнить анализ данных в положительной и отрицательной режиме отдельно. Используйте настройки по умолчанию для других параметров. Выключите функцию поиска базы данных и запустить рабочий процесс. Экспорт обработанных данных в качестве листа первенствовать, содержащей площадь пика каждого кадра. Первые наборы кадров соответствуют метаболитов в целевой список. Примечание: Для целенаправленного анализа метаболита, информация метаболиты получается на основе предыдущих исследований 13,15.
  4. Для нецелевого анализа метаболита, выбрать метод "добычи компонента". Загрузите пустые образцы для вычитания фона. Установите пик интенсивности порогт 10 5, ширина м / з из 10 частей на миллион и отношением сигнал-шум 3.
  5. Используйте базу данных человеческого метаболом для идентификации неизвестных соединений. Используйте CV фильтр для удаления компонентов с большими резюме в образцах повторных. Вручную пройти каждого компонента и выбрать тех, с четко определенной пика или относительно большой разницы в различных типах образцов для поиска в базе данных. Экспорт данных с хитами в базе данных. (Пик выравнивание может не появиться, если оценка пик выравнивание слишком низкая.)

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Точность данных метаболомики сильно зависит от производительности LC-QE-MS приборов. Чтобы оценить, насколько прибор работает в хорошем состоянии, и является ли метод применяется собственное, несколько известных метаболитов LC пики извлекаются из общей ионной хроматографии (TIC), как показано на рисунке 1. Полярные метаболиты, в том числе аминокислот, гликолиз промежуточные , TCA промежуточные, нуклеотиды, витамины, АТФ, НАДФ + и так далее имеют хорошее удержание на колонке и хорошо пиковых ф...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Наиболее важные шаги для успешного профилирования метаболита в клетки, используя этот протокол, являются: 1) контроль за питательную среду и тщательного извлечение клеток; 2) доведение метод LC основана на MS установки метода чтобы у пассажиров было достаточно (обычно не менее 10) точек данных через пика для количественного; 3) делать калибровку низкую массовую перед запуском образцов; 4) введение не более 5 мл, чтобы избежать время удерживания сдвига и уширение пика под воздействием воды; и 5) подготовки и проведения о...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы заявляют никакого конфликта интересов.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы хотели бы выразить признательность Detlef Шумана, Дженнифер Саттон (Thermo Fisher Scientific) и Натаниэль Снайдер (Университет Пенсильвании) за ценные обсуждения на массового калибровки и обработки данных. Исследования сообщили в настоящей публикации при поддержке Национального института рака из Национального института здоровья в рамках премии Количество R00CA168997. Содержание является исключительной прерогативой авторов и не обязательно отражает официальную точку зрения Национального института здравоохранения.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Положительная калибровочная смесьThermo Scientific#88323Чувствительна к свету. Хранить при 4 °deg; C
Отрицательная калибровочная смесьThermo Scientific#88324Хранить при 4 градусах; C
ДиазинонСант Круз Биотехнология#C0413Вызывает раздражение глаз, поэтому работа в капюшоне. Хранить при 4 °deg;
Игольная вставка C H-ESIFisher Scientific#1303200В случае засорения ее можно заменить или очистить 5% муравьиной кислотой/водой (удалить резиновое кольцо).
Амидная колонна XbridgeWaters#186004860Защитная колонна рекомендуется для увеличения срока службы колонны.

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Fiehn, O. Combining genomics, metabolome analysis, and biochemical modelling to understand metabolic networks. Comparative and Functional Genomics. 2 (3), 155-168 (2001).
  2. Mulleder, M., et al. A prototrophic deletion mutant collection for yeast metabolomics and systems biology. Nature Biotechnology. 30 (12), 1176-1178 (2012).
  3. Patel, V. R., Eckel-Mahan, K., Sassone-Corsi, P., Baldi, P. CircadiOmics: Integrating circadian genomics, transcriptomics, proteomics and metabolomics. Nature Methods. 9 (8), 772-773 (2012).
  4. Ideker, T., et al. Integrated genomic and proteomic analyses of a systematically perturbed metabolic network. Science. 292 (5518), 929-934 (2001).
  5. Jonsson, P., et al. A strategy for identifying differences in large series of metabolomic samples analyzed by GC/MS. Analytical Chemistry. 76 (6), 1738-1745 (2004).
  6. Jonsson, P., et al. High-throughput data analysis for detecting and identifying differences between samples in GC/MS-based metabolomic analyses. Analytical Chemistry. 77 (17), 5635-5642 (2005).
  7. Weljie, A. M., Newton, J., Mercier, P., Carlson, E., Slupsky, C. M. Targeted profiling: Quantitative analysis of 1H NMR metabolomics data. Analytical Chemistry. 78 (13), 4430-4442 (2006).
  8. Wiklund, S., et al. Visualization of GC/TOF-MS-based metabolomics data for identification of biochemically interesting compounds using OPLS class models. Analytical Chemistry. 80 (1), 115-122 (2008).
  9. Xia, J., Bjorndahl, T. C., Tang, P., Wishart, D. S. MetaboMiner--semi-automated identification of metabolites from 2D NMR spectra of complex biofluids. BMC Bioinformatics. 9, 507(2008).
  10. Lu, D., et al. 13C NMR isotopomer analysis reveals a connection between pyruvate cycling and glucose-stimulated insulin secretion (GSIS). Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (5), 2708-2713 (2002).
  11. Shen, J., et al. Determination of the rate of the glutamate/glutamine cycle in the human brain b. in vivo 13C NMR. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (14), 8235-8240 (1999).
  12. Kitteringham, N. R., Jenkins, R. E., Lane, C. S., Elliott, V. L., Park, B. K. Multiple reaction monitoring for quantitative biomarker analysis in proteomics and metabolomics. Journal of Chromatography. B, Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 877 (13), 1229-1239 (2009).
  13. Locasale, J. W., et al. Metabolomics of human cerebrospinal fluid identifies signatures of malignant glioma. Molecular & Cellular Proteomics : MCP. 11 (6), 10-1074 (2012).
  14. Wolf-Yadlin, A., Hautaniemi, S., Lauffenburger, D. A., White, F. M. Multiple reaction monitoring for robust quantitative proteomic analysis of cellular signaling networks. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (14), 5860-5865 (2007).
  15. Yuan, M., Breitkopf, S. B., Yang, X., Asara, J. M. A positive/negative ion-switching, targeted mass spectrometry-based metabolomics platform for bodily fluids, cells, and fresh and fixed tissue. Nature Protocols. 7 (5), 872-881 (2012).
  16. Ramanathan, R., et al. It is time for a paradigm shift in drug discovery bioanalysis: From SRM to HRMS. Journal of Mass Spectrometry : JM. 46 (6), 595-601 (2011).
  17. Lu, W., Clasquin, M. F., Melamud, E., Amador-Noguez, D., Caudy, A. A., Rabinowitz, J. D. Metabolomic analysis via reversed-phase ion-pairing liquid chromatography coupled to a stand alone orbitrap mass spectrometer. Analytical Chemistry. 82 (8), 3212-3221 (2010).
  18. Michalski, A., et al. Ultra high resolution linear ion trap orbitrap mass spectrometer (orbitrap elite) facilitates top down LC MS/MS and versatile peptide fragmentation modes. Molecular & Cellular Proteomics : MCP. 11 (3), 10-1074 (2012).
  19. Michalski, A., et al. Mass spectrometry-based proteomics using Q exactive, a high-performance benchtop quadrupole orbitrap mass spectrometer. Molecular & Cellular Proteomics : MCP. 10 (9), (2011).
  20. Snyder, N. W., Khezam, M., Mesaros, C. A., Worth, A., Blair, I. A. Untargeted Metabolomics from Biological Sources Using Ultraperformance Liquid Chromatography-High Resolution Mass Spectrometry. UPLC-HRMS). J. Vis. Exp. (75), (2013).
  21. Gika, H. G., Theodoridis, G. A., Wingate, J. E., Wilson, I. D. Within-day reproducibility of an HPLC-MS-based method for metabonomic analysis: Application to human urine. Journal of Proteome Research. 6 (8), 3291-3303 (2007).
  22. Want, E. J., et al. Global metabolic profiling procedures for urine using UPLC-MS. Nature Protocols. 5 (6), 1005-1018 (2010).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Metabolomics ProtocolPolar Metabolite AnalysisAmide Hydrophilic ChromatographyQ Exactive MSCold Methanol ExtractionMetabolite Peak ExtractionData Processing SoftwareUntargeted Metabolite AnalysisTargeted Metabolite DetectionMass Error Calibration

Похожие статьи