Методическая статья

Лаборатория Оценка Net трофических Transfer КПД ПХБ в озерной форели ( Salvelinus namaycush) От его добычи

DOI:

10.3791/51496

⸱

29 августа 2014 г.

 ,  ,  , 
1Great Lakes Science Center, U. S. Geological Survey, 2Annis Water Resources Institute, Grand Valley State University, 3Daniel P. Haerther Center for Conservation and Research, Shedd Aquarium

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Техника для лабораторного оценки чистой трофической эффективности переноса полихлорированных бифенилов (ПХБ), к рыбоядных рыб от их добычи представлена. Для максимального применимость результатов лабораторных исследований в этой области, рыбоядная рыбы следует кормить добычу рыбы, которые обычно едят в области.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Техника для лабораторного оценки чистой трофической эффективности переноса (γ) полихлорированных бифенилов (ПХБ), к рыбоядных рыб от их добычи описано здесь. Во время 135-дневного лабораторного эксперимента в, мы кормили Bloater (Coregonus hoyi), который был пойман в озере Мичиган в озерной форели (Salvelinus namaycush) хранится в восьми лабораторных танков. Bloater является естественной добычей для озерной форели. В четырех из танков, относительно высокая скорость потока используется для обеспечения относительно высокую активность со стороны озерной форели, тогда как низким расходом был использован в других четырех танков, что позволяет низкой активности озерной форели. На основе бак-на-бака, количество съеденной пищи в озерной форели на каждый день эксперимента был записан. Каждое озеро форель взвешивали в начале и в конце эксперимента. Четырех до девяти озерной форели от каждого из восьми танков умерщвляли в начале эксперимента, и все 10 озерной форели, оставшихся в каждом из резервуаров были euthanзуется в конце эксперимента. Мы определили концентрации 75 ПХБ в озерной форели в начале эксперимента, в озерной форели в конце эксперимента, и в Bloaters подается в озерной форели в ходе эксперимента. На основе этих измерений, γ рассчитывали для каждого из 75 ПХБ в каждой из восьми танков. Среднее γ была рассчитана для каждого из 75 ПХБ как для активного и неактивного озерной форели. Поскольку эксперимент был повторен в восьми танков, стандартная ошибка о означает, γ может быть оценена. Результаты этого типа эксперимента полезны в моделях оценки рисков для прогнозирования будущих рисков для человека и дикой природы употребления зараженной рыбы при различных сценариях загрязнения окружающей среды.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Из всех факторов, влияющих на скорость, с которой рыба накапливает загрязняющие вещества, эффективность, с которой рыба удерживает загрязняющие вещества из пищи, которую они едят, является одной из самых важных1-3. Для прогнозирования будущих рисков как для людей, так и для диких животных, употребляющих в пищу зараженную рыбу, при различных сценариях загрязнения окружающей среды были разработаны модели оценки рисков, и надежность этих прогнозов в решающей степени зависит от точности оценок эффективности, с которой рыба удерживает загрязняющие вещества из своей пищи4.

Эффективность, с которой загрязнитель в пище, проглоченной хищником, транспортируется через стенку кишечника, известна как валовая трофическая эффективностьпереноса 5. Часть количества загрязняющего вещества, переносимого через стенки кишечника хищника, может быть в конечном итоге потеряна в результате очищения и/или метаболической трансформации. Эффективность, с которой загрязнитель в пище, проглоченной хищником, сохраняется хищником, включая любые потери из-за элиминации и метаболической трансформации, известна как чистая эффективность трофического переноса.

Валовая трофическая эффективность переноса органических загрязнителей в рыбу от их добычи, по-видимому, зависит от химических свойств загрязнителя, включая липидную принадлежность, измеренную коэффициентом разделения октанол-вода, Kow3,7. Согласно эмпирическому соотношению, разработанному Томанном3, валовая трофическая эффективность переноса относительно высока, когда log Kow равен значению от 5 до 6. Валовая эффективность трофического переноса экспоненциально снижается со скоростью 50% на единицу log Kow по мере увеличения log Kow от 6 до 10, согласно соотношению Томана3.

Тем не менее, валовая и чистая трофическая эффективность переноса полихлорированных бифениловых соединений (ПХБ) к рыбам из их добычи в большинстве случаев, по-видимому, не соответствует соотношению Томана3. Несмотря на то, что эффективность трофического переноса соединений ПХБ в озерный сиг (Coregonus clupeaformis) из его пищи соответствовала соотношению, предложенному Томанном8, эффективность трофического переноса соединений ПХБ была либо слабо связана, либо вообще не связана с log Kow для атлантического лосося (Salmo salar)9, радужной форели (Oncorhynchus mykiss)10, кижуча (Oncorhynchus kisutch)11и северная щука (Esox lucius)11.

Общая цель этого исследования состояла в том, чтобы представить лабораторную технику для оценки чистой эффективности трофического переноса соединений ПХБ из ее добычи на рыбоядную рыбу. Озерная форель (Salvelinus namaycush) была выбрана в качестве рыбоядной рыбы для нашего эксперимента, потому что озерная форель относительно проста в содержании в лабораторных аквариумах. Раздуватель (Coregonus hoyi) был выбран в качестве кормовой рыбы для кормления озерной форели, потому что вздутие живота поедается озерной форелью в ее естественной средеобитания 12. Кроме того, мы определили, соответствует ли чистая эффективность трофического переноса для озерной форели, оцененная в нашем лабораторном эксперименте, соотношению Томана3. Мы также определили, оказывает ли степень активности озерной форели существенное влияние на эффективность чистого трофического переноса (γ) конгенеров ПХБ. Считается, что активность озерной форели в Великих Лаврентьевских озерах в последнее время возросла, потому что изменения в пищевых цепочках заставили озерную форель выделять больше энергии на поиск пищи. Озерная форель была вынуждена тренироваться в одном наборе аквариумов, подвергая эту озерную форель относительно высокой скорости течения, в то время как другой озерной форели позволялось оставаться относительно неактивной, подвергая ее относительно низкой скорости течения. Наконец, обсуждаются конкретные детали нашей лабораторной процедуры, которые необходимо тщательно соблюдать, чтобы обеспечить наивысшую степень точности γ оценок и сделать лабораторные результаты применимыми в полевых условиях, а также будущие направления исследований, основанных на нашей лабораторной технике. Эффективность чистого трофического переноса может быть оценена как в лабораторных, так и в полевых условиях, при этом преимущества и недостатки связаны с обоими подходами. Точность оценки γ зависит от точности оценки потребления продуктов питания. Количество пищи, съеденной рыбой в лаборатории, может быть точно определено при соблюдении надлежащих протоколов, в то время как количество пищи, съеденной рыбой в полевых условиях, обычно оценивается с помощью биоэнергетического моделирования. Использование биоэнергетического моделирования для определения количества съеденной пищи может внести значительную неопределенность в оценки потребления пищи. Было показано, что биоэнергетические модели рыб оценивают потребление пищи без заметной погрешности для случая озерной форели14,15, но значительное смещение в оценках потребления пищи биоэнергетической модели было обнаружено для случая озерного сига15,16. С другой стороны, оценки чистой эффективности трофического переноса, рассчитанные в лаборатории, могут быть неприменимы к полю из-за разницы в нормах подачи между лабораторией и полем17. Данные как лабораторных, так и полевых исследований свидетельствуют о том, что норма кормления может влиять наγ 14,17.

Методология, используемая в настоящем исследовании для оценки γ в лаборатории, применима к ситуациям, когда хищную рыбу кормят добычей, и количество рыбы-добычи, съеденной хищником, можно точно отследить. Для этого экспериментатор должен взвесить всю пищу перед помещением в аквариум; И экспериментатор должен быть в состоянии удалить всю несъеденную пищу из аквариума, а затем взвесить несъеденную пищу. Кроме того, должен быть доступен соответствующий набор смесителей и блендеров для получения достаточной степени гомогенизации образцов как хищных, так и хищных рыб. Наконец, газовая хроматография – масс-спектрометрия, используемая для определения концентраций конгенеров ПХБ, должна быть способна обнаруживать и количественно определять отдельные конгенеры ПХБ при относительно низких концентрациях.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1 Лабораторный эксперимент

  1. Получите добычу рыбы, чтобы подавать в хищных рыб во время эксперимента. Предпочтительно эти хищные рыбы должны быть захвачены в области, замороженные, и хранится при температуре около -30 ° С. Рассмотрим коммерческого рыболовства в качестве потенциального источника для хищных рыб.
  2. Введем хищных рыб в лабораторных танков, которые будут использоваться для проведения эксперимента. До 15 хищных рыб были введены в каждую из 870-L танков и до 30 хищных рыб были введены в каждый из 2380-L танков в предыдущих исследованиях 16,18.
  3. Акклиматизировать хищных рыб в рационе выбранной жертвы рыбы. После того, как акклиматизировались, хищник рыба должна оставаться на этой диете в течение 1-3 месяцев до начала эксперимента.
  4. Отложите образцы хищных рыб путем случайного выбора 10 до 20 композитных образцов из партии хищных рыб. Количество хищных рыб в композиционного образца может варьироваться от 3 до 100, в зависимости от размера добычирыба. Каждая составная проба должна быть в два раза в мешках, заморожены, и хранили при -30 ° С.
  5. Инициировать эксперимент, жертвуя 30 до 50% рыбы в каждом из танков.
    1. Чтобы усыпить рыбу, смешать 8 г Finquel с 45 л воды в большой пластиковый контейнер и поместите рыбу в контейнере с раствором Finquel.
    2. После эвтаназии, не поставить все принесенного в жертву рыбы из одной емкости в сумку, затем дважды пакет и храните при температуре около -30 ° С до времени обработки.
    3. Взвесить каждый из рыбы, оставшейся в каждой из резервуаров, и запись веса; анестетик вероятно, будет необходимо провести взвешивание.
    4. Чтобы обезболить рыбу, смешать 4,6 г Finquel с 45 л воды в большой пластиковый контейнер, а затем поместить рыбу в контейнере с раствором Finquel.
    5. Подождите несколько минут для анестезии вступили в силу до взвешивания рыбы.
  6. На каждый день эксперимента, оттепельСоответствующее количество хищных рыб, и сократить добычу рыбы на куски весом примерно 1 до 5 г. Взвесьте количество хищных рыб, которые будут помещаться в каждом из танков, то падение добычи куски рыбы в каждом баке и позволяют хищных рыб приблизительно 1 час, чтобы накормить. Затем снимите все остатки корма, позволяют еду высохнуть на воздухе в течение примерно 20 мин, а затем взвесить остатки корма для каждого из резервуаров. Запишите количество пищи помещают в резервуар и количество остатки корма для каждого из резервуаров каждый день.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для репрезентативного эксперимента, озерная форель кормили столько еды, сколько они будут потреблять в течение одного периода кормления каждый день 18. Однако хищник рыба также могут быть размещены на основных рационов 16,19.
  7. Прекратить эксперимент, пожертвовав все оставшиеся хищных рыб в каждом из резервуаров. Чтобы усыпить рыбу, смешать 8 г Finquel с 45 л воды в большой пластиковый контейнер и поместите рыбу в контейнере с раствором Finquel. Запись тон вес каждого из жертвенного рыбы. Для получения надежных результатов, эксперимент должен работать не менее 100 дней, предпочтительно в течение по крайней мере 130 дней. Поместите все рыбы из резервуара в один мешок, а затем дважды пакет и храните при температуре около -30 ° С до времени обработки.

2 Рыба усреднении

  1. Выберите набор хищных рыб и / или добычи рыбы композитов для оттаивания. Разрешить композиты частично разморозить. Каждый композит может потребовать от 0,5 до 1 ч до гомогенизации.
  2. Использование соответствующих размеров смесители, гомогенизации каждого из композитов. Для каждого композитный, разместить образец (от 50 до 100 г) гомогената в чистую, ацетон-промыты, и с надписью банку. Тогда ограничить банку и не храните банку в около -30 ° С до времени обработки.
  3. Промыть все оборудование, используемое для гомогенизации рыбы, а затем должным образом промыть дистиллированной водой и метанолом, между образцами.

3 Добыча

  1. Взвесьте 20,0 гталой гомогенизированной ткани рыбы в 200-мл химический стакан.
  2. Добавить приблизительно 40 г сульфата натрия и хорошо перемешать шпателем.
  3. Добавить суррогатной шип раствора, содержащего родственные соединения 30, 61, 161 и 166. Spike в концентрации, что приводит к конечной концентрации 20 нг / мл в экстракте.
  4. Разрешить образец высохнуть при комнатной температуре при перемешивании каждые 20 мин.
  5. Разрешить образец для достижения согласованности сухим песком, после чего образец готов для извлечения.
  6. Настройка устройства для экстракции Сокслета с 500-мл колбу, содержащую тефлона варить чипсы, Сокслета, и конденсатор.
  7. Добавить сушеной рыбы смесь в стеклянную гильзу с грубой пористым диска нижней или бумаги наперсток.
  8. Добавить 150 мл 50% гексана и 50% дихлорметана в химический стакан, используемый для образца и перемешивают, при этом очищая стенки стакана с помощью шпателя.
  9. Передача растворителя в верхней части Сокслета с прикрепленной колбу и позволить ему цикл через Сокслета иВ колбу.
  10. Во второй раз с 150 мл снова.
  11. Поместите Сокслета с присоединенным колбу на нагревательный элемент и прикрепите конденсатор.
  12. Включение нагревательного элемента и привести растворитель до слабого кипения, затем извлечь в течение минимум 16 ч, убедившись, что холодная вода подается в конденсаторах.
  13. После того как растворитель для охлаждения, проверить, если любой из образцов колбах содержат воду. Для тех колбы, содержащие воду, добавить сульфат натрия и водоворот, пока вода не поглощается сульфатом натрия.
  14. Концентрат образец, используя образец концентратор азота или Kaderna Датский (KD) Посуда из стекла установку с горячей водяной бане.
  15. Разрешить образец для испарения до объема менее 2 мл, а затем довести до конечного объема 5 мл с помощью небольших промывали гексаном, чтобы перенести образец из стеклянной посуды, используемой в 5-мл мерную колбу.
  16. Трансфер в-мл 10 флакон и этикетка с информацией по образцам.

  1. Подготовка подкисленного силикагель, добавив 44 г концентрированной серной кислоты до 100 г активированного силикагеля.
  2. Добавить 10 г подкисленного силикагеле в небольшой хроматографическую колонку, содержащую небольшой слой стекловаты на дне.
  3. Добавить 1 мл экстракта образца на колонку после предварительной очистки на колонке с 10 мл гексана.
  4. Элюируют колонку с 20 мл гексана и собирают в конической 20-мл стеклянную трубку.
  5. Поместите стеклянную трубку на атоме азота в испарителе (N-Vap) аппарата в потоке азота и погружают в горячую воду.
  6. Выпаривают до менее чем 1 мл, но не досуха.
  7. Удалить из аппарата N-Vap и передачи в 1-мл мерную колбу с небольшими промывок гексаном.
  8. Трансфер в 1,8 мл пробоотборник флакон помечены с информацией по выборкам.
  9. Spike 4 мкл внутреннего стандарта в пробирку. Образец готов для анализа.

5 Анальныйлиз с помощью газовой хроматографии - масс-спектрометрии с использованием отрицательных химической ионизации

  1. Используйте стандарты для калибровки инструмента: Стандарты доступны в смесях, состоящих из групп хорошо разделенных сородичей. Миксы 1-5 состоят из почти все сородичей, найденных в Arochlors 1016, 1221, 1232, 1242, 1248, 1254, и 1260 Mix 1 используется в качестве калибровочного смеси многоуровневой, и система линейность подтверждается подготовке по крайней мере, пять уровней калибровки в концентрациях от 2 до 100 нг / мл. Миксы 2-5 используются в качестве одиночных точечных калибровку для каждой из сородича.
  2. Настройка хроматографии - масс-спектрометрии системы в режиме отрицательной химической ионизации с водородом в качестве газа-носителя (1 мл / мин) и метан в качестве газа-реагента.
  3. Используйте кварцевого стекла, капиллярной колонки (60 м × 0,25 мм внутреннего диаметра), покрытую DB-XLB при толщине пленки 0,25 мкм для отделения. Программа температура печи от 60 до 212 ° С со скоростью 25 ° С / мин, затем 26От 0 ° C при 1 ° С / мин, а затем до 280 ° С со скоростью 4 ° С / мин, с конечной выдержкой 4 мин. Инжектор и передачи строки температура должна быть установлена ​​на 280 °. Введите от 1 до 2 мкл образца, используя режим впрыска без деления.
  4. Анализ всех стандартов и проб от внутреннего стандарта методом с использованием 13 С-меченого decachlorobiphenyl.
  5. Выполните проверку на начальной калибровки, запустив вторую стандарт источника и Aroclors 1242 и 1260, а затем сравнить предсказанные значения для сородичей Ароклор с наблюдаемыми сумм от этой процедуры регистрации.
  6. После того, как первая процедура калибровки была успешно решена, полный анализ всех образцов. Запуск проверки калибровки каждые десять образцов, используя любой из калибровочных смесей с начальной калибровки.

6 Расчет нетто трофической Transfer эффективности

  1. Рассчитать чистую трофическая эффективность переноса, γ, для каждой комбинации Oе бак и сородич PCB, используя следующее уравнение:
    figure-protocol-1 , Где [печатных плат F] является средняя концентрация конгенер печатной платы из хищных рыб в резервуаре в конце эксперимента, W F является средняя масса хищных рыб в резервуаре в конце эксперимента, [печатных плат I] является средняя концентрация конгенер печатной платы из хищных рыб в резервуаре в начале эксперимента, W I является средний вес хищных рыб в начале эксперимента, и количество конгенера печатной платы внутрь относится к весу PCB сородич внутрь, в среднем, на каждого озерной форели в баке в ходе эксперимента.
  2. Рассчитать знаменатель в уравнении выше путем умножения средней концентрации сородича ПХБ, в хищных рыб композитов по среднему значению (веса) на добычу рыбы, употребляемой за хищных рыб в баке мажорчисле весь ход эксперимента.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Лейк форели показали значительное количество роста в ходе эксперимента, а начальные форели озера в виду вес в диапазоне от 694 до 907 г, а окончательные форели озера в виду вес в диапазоне от 853 до 1566 г (таблица 1). Среднее количество потребляемой пищи на озерной форели в ходе 135-суточного эксперимента варьировались от 641 до 2649 г. Средние концентрации соединений этого печатной платы в озерной форели увеличена в ходе эксперимента, а средняя концентрация соединений печатной платы в диапазоне от 0,0...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Для получения более точных оценок γ, экспериментатор должен иметь возможность точно отслеживать как количество пищи, помещали в каждую из емкостей и сумму остатки корма в каждом из резервуаров в ходе эксперимента. Чтобы достичь этого, экспериментатор должен быть в состоянии удалить все остатки корма из танков и точно определить его вес. В дополнение к точному позиционированию пищи на самом деле съеденных хищных рыб, точное значение γ может также зависеть от достаточного срока эксперимента. Учитывая, что широко цитируемы...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была частично профинансирована Комиссией по рыболовству Великих озер и Институтом водных ресурсов Анниса. Использование торговых наименований, названий продуктов или фирм не подразумевает одобрения со стороны правительства США. Эта статья является вкладом 1867 года Научного центра Великих озер Геологической службы США.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Баки из стеклопластика объемом 870 лФригидные агрегатыRT-430-1
Баки из стеклопластика объемом 2,380 лФригидридные агрегатыRT-630-1
Трикаин метансульфонат (Finquel)Argent Chemical Laboratories, Inc.C-FINQ-UE-100GEugenol также может быть использован в качестве анестетика.
Нож шеф-повара AshlandChicago Столовые приборыSKU 1106336
Разделочная доскаWilliams-Sonoma3863586
Hobart verical mixer (40 кварт)Hobart Corporation
1,9-литровый кухонный комбайнRobot Coupe, Inc.РСИ 2Y1 
Полиэтиленовые пакеты (различных размеров)Arcan Inc.
I-Chem банкиI-Chem220-0125
Электронные весы с верхней загрузкойMettler ToledoMettler PM 6000 
Сульфат натрия, безводный - гранулированныйEMDSX0760E-3
Стеклянные экстракционные наперстки (45 мм х 130 мм)Wilmad-Lab GlassLG-7070-114
Тефлоновая кипящая стружкаChemware919120
Концентратор азота Rapid VapLabconco7910000
N-Vap концентратор азотаOrganomation112
Экстракционная стеклянная посуда Soxhlet (500 мл)Wilmad-Lab Glass  LG-6900-104
ГексановыйБердик и Джексон Кат. 211-4
ДихлорметанBurdick & Джексон Кат. 300-4
СиликагельBDHКат. BDH9004-1KG
Labl Line 5000 многоблочный экстракционный нагревательLab Line Instruments
Agilent 5973 GC/MS с химической ионизациейAgilent5973N
Внутреннее стандартное решение Cambridge Isotope LaboratoriesEC-1410-1.2
Стандарты калибровки конгенера печатных платAccustandardC-CSQ-SET
DB-XLB колонка (60 м x 0,25 мм, 0,25 мкм)Agilent/ J& Ш122-1262

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Madenjian, C. P., Carpenter, S. R., Rand, P. S. Why are the PCB concentrations of salmonine individuals from the same lake so highly variable? Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 51 (4), 800-807 (1994).
  2. Madenjian, C. P., et al. Net trophic transfer efficiency of PCBs to Lake Michigan coho salmon from their prey. Environmental Science and Technology. 32 (20), 3063-3067 (1998).
  3. Thomann, R. V. Bioaccumulation model of organic chemical distribution in aquatic food chains. Environmental Science and Technology. 23 (6), 699-707 (1989).
  4. Calabrese, E. J., Baldwin, L. A. Performing ecological risk assessments. , Lewis. Boca Raton, Florida. (1993).
  5. Madenjian, C. P., et al. Variation in net trophic transfer efficiencies among 21 PCB congeners. Environmental Science and Technology. 33 (21), 3768-3773 (1999).
  6. Jackson, L. J., Schindler, D. E. Field estimates of net trophic transfer of PCBs from prey fishes to Lake Michigan salmonids. Environmental Science and Technology. 30 (6), 1861-1865 (1996).
  7. Gobas, F. A. P. C., Muir, D. C. G., Mackay, D. Dynamics of dietary bioaccumulation and faecal elimination of hydrophobic organic chemicals in fish. Chemosphere. 17 (5), 943-962 (1988).
  8. Madenjian, C. P., O’Connor, D. V., Rediske, R. R., O’Keefe, J. P., Pothoven, S. A. Net trophic transfer efficiencies of polychlorinated biphenyl congeners to lake whitefish (Coregonus clupeaformis) from their food. Environmental Toxicology and Chemistry. 27 (3), 631-636 (2008).
  9. Isosaarl, P., Kiviranta, H., Lie, Ø, Lundebye, A. K., Ritchie, G., Vartiainen, T. Accumulation and distribution of polychlorinated dibenzo-p-dioxin, dibenzofuran, and polychlorinated biphenyl congeners in Atlantic salmon (Salmo salar). Environmental Toxicology and Chemistry. 23 (7), 1672-1679 (2004).
  10. Buckman, A. H., Brown, S. B., Hoekstra, P. F., Solomon, K. R., Fisk, A. T. Toxicokinetics of three polychlorinated biphenyl technical mixtures in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Environmental Toxicology and Chemistry. 23 (7), 1725-1736 (2004).
  11. Burreau, S., Axelman, J., Broman, D., Jakobsson, E. Dietary uptake in pike (Esox lucius) of some polychlorinated biphenyls, polychlorinated naphthalenes and polybrominated diphenyl ethers administered in natural diet. Environmental Toxicology and Chemistry. 16 (12), 2508-2513 (1997).
  12. Madenjian, C. P., DeSorcie, T. J., Stedman, R. M. Ontogenic and spatial patterns in diet and growth of lake trout in Lake Michigan. Transactions of the American Fisheries Society. 127 (2), 236-252 (1998).
  13. Paterson, G., Whittle, D. M., Drouillard, K. G., Haffner, G. D. Declining lake trout (Salvelinus namaycush) energy density: are there too many salmonid predators in the Great Lakes? Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 66 (6), 919-932 (2009).
  14. Madenjian, C. P., O’Connor, D. V., Nortrup, D. A. A new approach toward evaluation of fish bioenergetics models. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 57 (5), 1025-1032 (2000).
  15. Madenjian, C. P., Pothoven, S. A., Kao, Y. C. Reevaluation of lake trout and lake whitefish bioenergetics models. Journal of Great Lakes Research. 39 (2), 358-364 (2013).
  16. Madenjian, C. P., et al. Evaluation of a lake whitefish bioenergetics model. Transactions of the American Fisheries Society. 135 (1), 61-75 (2006).
  17. Madenjian, C. P., O’Connor, D. V., Chernyak, S. M., Rediske, R. R., O’Keefe, J. P. Evaluation of a chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) bioenergetics model. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 61 (4), 627-635 (2004).
  18. Madenjian, C. P., David, S. R., Rediske, R. R., O’Keefe, J. P. Net trophic transfer efficiencies of polychlorinated biphenyl congeners to lake trout (Salvelinus namaycush) from its prey. Environmental Toxicology and Chemistry. 31 (12), 2821-2827 (2012).
  19. Madenjian, C. P., O'Connor, D. V. Laboratory evaluation of a lake trout bioenergetics model. Transactions of the American Fisheries Society. 128 (5), 802-814 (1999).
  20. Ballschmiter, K., Bacher, R., Mennel, A., Fischer, R., Riehle, U., Swerev, M. The determination of chlorinated biphenyls, chlorinated dibenzodioxins, and chlorinated dibenzofurans by GC-MS. HRC Journal of High Resolution Chromatography. 15 (4), 260-270 (1992).
  21. Madenjian, C. P., David, S. R., Pothoven, S. A. Effects of activity and energy budget balancing algorithm on laboratory performance of a fish bioenergetics model. Transactions of the American Fisheries Society. 141 (5), 1328-1337 (2012).
  22. Lieb, A. J., Bills, D. D., Sinnhuber, R. O. Accumulation of dietary polychlorinated biphenyls (Aroclor 1254) by rainbow trout. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 22 (4), 638-642 (1974).
  23. Niimi, A. J., Oliver, B. G. Biological half-lives of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners in whole fish and muscle of rainbow trout (Salmo gairdneri). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 40 (9), 1388-1394 (1983).
  24. Gobas, F. A. P. C., Wilcockson, J. B., Russell, R. W., Haffner, G. D. Mechanism of biomagnification in fish under laboratory and field conditions. Environmental Science and Technology. 33 (1), 133-141 (1999).
  25. Dmitrovic, J., Chan, S. C. Determination of polychlorinated biphenyl congeners in human milk by gas chromatography – negative chemical ionization mass spectrometry after sample clean-up by solid-phase extraction. Journal of Chromatography B. 778 (1-2), 147-155 (2002).
  26. Zorn, M. E., Gibbons, R. D., Sonzogni, W. C. Weighted least-squares approach to calculating limits of detection and quantification by modeling variability as a function of concentration. Analytical Chemistry. 69 (15), 3069-3075 (1997).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи