Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Мышь Пневмонэктомия модель формирования компенсаторных рост легких

13.2K просмотров

DOI:

10.3791/52294

17 декабря 2014 г.

В этой статье

Краткое содержание

Мышиная пневмонэктомия является широко используемой моделью компенсаторного роста легких. Эта процедура может быть использована в сочетании с отслеживанием линии или трансгенными мышиными моделями для выяснения основных механизмов.

Аннотация

У людей нарушенное восстановление и ремоделирование поврежденного легкого способствует множеству острых и хронических заболеваний легких, которые в конечном итоге могут привести к инвалидности или смерти. Животные модели восстановления и регенерации легких, основанные на травмах, ограничены реакциями, специфичными для травмы, что затрудняет дифференциацию изменений, связанных с реакцией на травму и разрешением травмы, от изменений, связанных с восстановлением легких и регенерацией легких. Тем не менее, использование животных моделей для идентификации этих сигнальных путей восстановления и регенерации имеет решающее значение для разработки новых методов лечения, направленных на улучшение функции легких после повреждения легких. Модель пневмонэктомии у мышей использует компенсаторный рост легких для выделения этих сигналов восстановления и регенерации с целью более четкого определения механизмов альвеолярной ресептации. В этой статье мы опишем нашу технику выполнения мышиной пневмонэктомии и фиктивной пневмонэктомии. Этот метод может быть использован в сочетании с отслеживанием родословной или другими трансгенными мышиными моделями для определения молекулярного и клеточного механизма восстановления и регенерации легких.

Введение

Основная функция легких является обеспечение для обмена двуокиси углерода и кислорода между организмом и атмосферой. У людей, хозяин врожденных и приобретенных условий приводят к снижению площади легкого поверхности, которая приводит к нарушению функции легких. Хотя хозяин терапии, такие как ингаляционных кортикостероидов, бронходилататоров, дополнительного кислорода и хронической механической вентиляции используются для смягчения последствий нарушения функции легких 1-3, идеальная терапия для этих условий будет способствовать отрастания функциональной легочной ткани - то есть, легких регенерации.

Регенерации тканей млекопитающего были хорошо документированы. Африканский колючий мыши могут регенерировать большие участки кожи без образования рубцов 4. Дистальной фаланги у человека может регенерировать после травмы или ампутации 5-7. После пневмонэктомии (ПН), компенсационный рост легких происходит у мышей 8, крысы 9, делатьGS 10, а люди 11. По определению, компенсационный рост легкого включает в себя не только расширение существующих воздушных пространствах, но вновь перегородок этих увеличенных воздушного пространства с расширением, связанной микроциркуляции 12. Анализ экспрессии генов показал, что эта модель повторяет многие из сигнальных событий развития легких 13. Через четыре недели после мыши PNX, площадь поверхности альвеол является таким же, как ложнооперированных животных 14. В этой рукописи мы опишем ПН мыши и фиктивные процедуры ПН.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

ПРИМЕЧАНИЕ: Animal используйте оператор: Все процедуры в этом исследовании, были проведены с одобрения и в соответствии с инструкциями институциональной использования животных и Комитета помощи (IACUC) в больнице Цинциннати детей. Восемь недельных мышей C57BL / 6J мышей мужского пола были получены из Jackson Laboratories (Bar Harbor, ME) и оставляли для акклиматизации в течение одной недели перед использованием. До операции, животные были размещены в патогена барьерном объекта и при условии автоклавного чау и фильтрованной воды объявлений libdium. В каждой клетке мышь поставляется со специальным воздуха и воды, а также номера были сохранены на 12 ч дня и ночи. После восстановления после операции, Мышей содержали в клетках с фильтром на вершинах, при условии, автоклавного чау объявления libidum, и при условии, фильтрованную воду из бутылки с водой.

1. Подготовка инструментов

  1. Сделайте 6 втягивающих кожи с помощью скрепки и булавки. Twist выпрямился скрепки на черенки штифтов бумаги, лEAVE 5 см провода с прямой стальной на одном конце и сделать один 0,5 см "U" образный крючок на конце провода.
  2. Сделайте около 15 х 15 см квадратных хирургических простыней, используя пластиковую упаковку. Подготовьте соус на мышь. Положите бумагу башню между каждым пленкой.
  3. Стерилизовать всех хирургических инструментов наряду со стеком 12 х 12 дюймов пробковой плитки, марля, и ватным тампоном.

2. Подготовка мышь

  1. Анестезии с 2% изофлуран. Взвешивание животных.
  2. В специальных хирургической области подготовки бриться левой грудной клетки и области шеи с электрическим бритвы.
  3. Нанесите каплю искусственной слезы мазь для глаз мыши.
  4. Дезактивации шею и левую грудную клетку с хлоргексидином и изопропилового спирта. Повторите еще два раза.

3. Мышь Oro-интубации трахеи и искусственной вентиляции легких

  1. Есть нестерильных хирургических месту техник на спине мыши в предварительно нагретой области операции.
  2. Подтвердите глубины анестезии путем документирования отсутствие ответа на лапы крайнем случае.
  3. После мытья руки и надевать хирургическую одежду, маску и шляпу, дон стерильные хирургические перчатки.
  4. После драпировки и использование асептической техники, сделать 1 см вертикальный разрез по передней середине шеи, чтобы разоблачить гортань. Слегка втянуть Ремешок мышцы с изогнутыми, зубчатыми 10 см щипцы и раскрыть гортань и трахею, распространяя ремень мышцы кончика прямой ножницами.
  5. Устно вставьте 22 G тупым кончиком ангиокатетера в середине трахеи (рис 1А) и визуально подтвердить размещение (рисунок 1b). Поддержание анестезии и проветрите использованием 1-3% изофлуран через грызунов вентилятора (225 мкл на удар; 200 Стокса в минуту). Применять предел давления 15 см H 2 O.

4. Мышь Пневмонэктомия

  1. Положите мышь в правой боковой позиции пролежни с бэк мыши должна быть обращенаОператор (левая сторона вверх). Используйте самогерметизирующийся полиэтиленовую пленку в качестве стерильной драпировки. Резка через простыни, используйте тупые наконечником изогнутые ножницы, чтобы сделать 2 см длиной, вырезанной параллельно ребрам на 4-й и 5-й межреберье. Вставьте тупым кончиком изогнутые ножницы и рассекают кожу от лежащих в основе ребер и межреберных мышц.
  2. Уберите кожу с четырьмя преднатяжителями подвергать квадрата 1,5 х 1,5 см хирургическое окна (рис 2а). Безопасный втягивающие в пробковой доски.
  3. Рассеките до ребер с использованием изогнутых щипцов, и использовать один конец изогнутых щипцов, чтобы войти в грудной полости.
  4. Использование тупым кончиком микро-ножницы, используйте нижнего ножа, чтобы войти в грудную полость. Сделать 0,5 см разрез между ребрами и повторите в обратном направлении.
  5. Использование двух оставшихся преднатяжителями, откройте грудную клетку в передне-задней оси и безопасный втягивающие в пробковой доски (рис 2, б).
  6. Использование изогнутых тупым наконечником пинцет в левой руке, возьмитесь за левое легкое и сместить верхнюю часть левого легкого с боков и книзу через торакотомии до левой легочной артерии и бронха не подвергаются (3А, Б).
  7. Проведение загруженной титана сосудистой microclip аппликатор в правой руке с телом аппликатора на ладони и изогнутой кончик направлен в сторону от ладони (рис 3C), вставьте наконечника аппликатора в грудной клетке вдоль кривизны задней поверхности левой легких и клип левого бронха и легочной артерии (рис 3D).
  8. Удалить аппликатор, но держать левое легкое убирается. Возьмитесь за тупым кончиком микро-ножницы с правой стороны и сократить бронхов и дистальных легочной артерии на клип и удалить левое легкое (рис 3E).
  9. Удалить ребра преднатяжителями.
  10. Используйте изогнутые тупые щипцы ущипнуть до 1 см кожи нижестоящие по отношению к incisiна но выше уровня диафрагмы и вставить 24 г ангиокатетер через кожу и в левой грудной полости (фиг.4А, В).
  11. Используйте 5-0 проленовой шва разместить два швами вокруг 4-й и 5-й ребра, чтобы закрыть грудной полости.
  12. Удалить втягивающие кожи. Использование двух наборов щипцов для аппроксимации кожу по всей длине надреза и клей кожа закрыты.
  13. Подключите 3 мл Луер-Лок шприц с ангиокатетер и удаления остатков воздуха путем легкого всасывания и отвода ангиокатетера.
  14. Клей шеи разрез закрыт с помощью двух наборов щипцов, как раньше.

5. Мышь Шам Пневмонэктомия

  1. Expose левое легкое, как отмечается в протоколе "мышь Пневмонэктомия". Поднимите грудную клетку с изогнутыми тупыми щипцами, чтобы воздух в левой грудной полости (рис 5а, б).
  2. Поставьте 24 г ангиокатетера в левой ТхоRacic полость, как указано выше, стараясь не повредить левое легкое.
  3. Использование 5-0 проленовой шва и быть осторожными, чтобы не проколоть легкое (5С), поместите две длины шовного материала в 3-м / 4-й и 5-й / 6-го ребра промежутки (рис 5D). Положите обе длины шовного материала перед связывать, чтобы уменьшить риски левой грыжи легких. Свяжите шовный материал, чтобы сделать два прерванных швов (рис 5E).
  4. Клей кожа над грудной разрез, удалить остаточный воздух с ангиокатетер, и приклейте шеи разрез, как описано выше.

6. Реанимация, Анестезия, и восстановление

  1. Выключите изофлуран и управлять 0,1 мг / кг бупренорфина и 0,5 мл физиологического подкожно.
  2. Когда спонтанные дыханий резюме, удалите эндотрахеальную трубку.
  3. Соблюдайте мышь, пока он не станет снова амбулаторно. Прогулки обычно resumэс несколько минут после удаления эндотрахеальной трубки.
  4. Наведите в 27 ° C инкубатора (увлажненной, 25% кислорода), чтобы восстановить O / N.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Мы размещаем несколько гранул чау, смоченной водой на полу клетки в течение первых 24 часов после операции.
  5. Администрирование 0,1 мг / кг бупренорфина путем внутрибрюшинной инъекции два раза в день в течение трех дней после операции. Будьте осторожны, не открывать места операции при работе с животными.

7. Контроль мыши

  1. Взвешивание мышей через 1, 3, 5, и 7 дней после операции.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

. Сюжет PNX и ложнооперированных весов мыши приводится на рис 6 В наших руках, выживание последовательно 95 - 100% для обеих PNX и мнимого пневмонэктомии. Для описания того, как правое легкое повторное растет в этой модели и ожидаемого времени, конечно, мы отсылаем читателя к рукописи Gibney и др. 15 и Вонг и др. 14

Несколько распространенных ошибок следует избегать, чтобы успешно выполнить процедуры обман Пневмонэктомия ПН мыши и мыши...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Мы предоставляем наиболее подробное описание процедур ПН ПН мыши и мыши фиктивных зарегистрированных на сегодняшний день. Мы сделали читатель осознает несколько распространенных ошибок, что следователи Освоение процедуры обычно сталкиваются, и мы наметили несколько методов, разработанных нашей лаборатории, для снижения этих опасностей. Другие лаборатории, использующие эту модель могут быть разработаны другие модификации техники или использовать различные инструменты. При оценке различий в методах, отдельные исследовател...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Авторы выражают благодарность за их помощь Отделу ветеринарных услуг детской больницы Цинциннати. Эта рукопись была подготовлена при поддержке Национального института здравоохранения K12 HD028827. Анна Перл, доктор философии, обучила авторов этой хирургической процедуре.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
6-дюймовый аппликатор для сосудистых зажимовTeleflex Medical (WECK)137062
Horizon маленький титановый красный зажимTeleflex Medical (WECK)1201
Узкий узор 12 см изогнутые щипцыFine Science Tools11003-12
Изогнутые зубчатые 10 см Graefe ЩипцыFine Science Tools11052-10
ИглодержательCastroviejoFine Science Tools12565-14
Прямые 9 см Косоглазие ножницы (тупой кончик)Fine Science Tools14075-09
Прямые 8,5 см закаленные тонкие ножницыFine Science Tools14090-09
Прямой тупой кончик Пружинные ножницы Cohan-VannasFine Science Tools15000-12
Клей для кожиGluture32046
22 G Ангиокатетер
24 G Ангиокатетер
3 мл Шприц
4 Короткие ретракторы
2 Длинные ретракторы
5-0 Пролен на изогнутой режущей иглеEthicon8698G
0,5 мл Шприц на игле
Обычный физиологический раствор
Бупренорфин
Press-n-Seal оберткаGlad Products Company
12 x 12 дюймов Стек пробковых досокОфисный склад
70% этанол
бетадина
Мышиный вентиляторHugo Sachs ElektronnikMinivent Type 845
Изофлуран испарительOHMEDAExcel 210 SE
Искусственная слезная мазьPuralubeNDC: 17033-211-38
с замком Люэра 27 G

Ссылки

  1. Strueby, L., Thebaud, B. Advances in bronchopulmonary dysplasia. Expert review of respiratory medicine. , (2014).
  2. Donn, S. M., Sinha, S. K. Recent advances in the understanding and management of bronchopulmonary dysplasia. Seminars in fetal & neonatal medicine. 14, 332(2009).
  3. Molen, T., Miravitlles, M., Kocks, J. W. COPD management: role of symptom assessment in routine clinical practice. International journal of chronic obstructive pulmonary disease. 8, 461-471 (2013).
  4. Seifert, A. W., et al. Skin shedding and tissue regeneration in African spiny mice (Acomys). Nature. 489, 561-565 (2012).
  5. Vidal, P., Dickson, M. G. Regeneration of the distal phalanx. A case report. Journal of hand surgery. 18, 230-233 (1993).
  6. Potter, P. C., Levine, M. H. Bone Regeneration Following Chronic Suppurative Osteitis of the Distal Phalanx. Annals of surgery. 80, 728-729 (1924).
  7. McKim, L. H. Regeneration of the Distal Phalanx. Canadian Medical Association journal. 26, 549-550 (1932).
  8. Brown, L. M., Rannels, S. R., Rannels, D. E. Implications of post-pneumonectomy compensatory lung growth in pulmonary physiology and disease. Respir Res. 2, 340-347 (2001).
  9. Holder, N. Regeneration and compensatory growth. British medical bulletin. 37, 227-232 (1981).
  10. Hsia, C. C. Lessons from a canine model of compensatory lung growth. Curr Top Dev Biol. 64, 17-32 (2004).
  11. Butler, J. P., et al. Evidence for adult lung growth in humans. N Engl J Med. 367, 244-247 (2012).
  12. Konerding, M. A., et al. Spatial dependence of alveolar angiogenesis in post-pneumonectomy lung growth. Angiogenesis. 15, 23-32 (2012).
  13. Kho, A. T., Liu, K., Visner, G., Martin, T., Boudreault, F. Identification of dedifferentiation and redevelopment phases during postpneumonectomy lung growth. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 305, 542-554 (2013).
  14. Wang, W., Nguyen, N. M., Guo, J., Longitudinal Woods, J. C. Noninvasive Monitoring of Compensatory Lung Growth in Mice after Pneumonectomy via (3)He and (1)H Magnetic Resonance Imaging. Am J Respir Cell Mol Biol. 49, 697-703 (2013).
  15. Gibney, B. C., et al. Detection of murine post-pneumonectomy lung regeneration by 18FDG PET imaging. EJNMMI research. 2, 48(2012).
  16. Rawlins, E. L., Perl, A. K. The a'MAZE'ing world of lung-specific transgenic mice. Am J Respir Cell Mol Biol. 46, 269-282 (2012).
  17. Ochs, M., Muhlfeld, C. Quantitative microscopy of the lung: a problem-based approach. Part 1: basic principles of lung stereology. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 305, L15-22 (2013).
  18. Ysasi, A. B., et al. Effect of unilateral diaphragmatic paralysis on postpneumonectomy lung growth. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 305, L439-445 (2013).
  19. Dane, D. M., Yilmaz, C., Estrera, A. S., Hsia, C. C. Separating in vivo mechanical stimuli for postpneumonectomy compensation: physiological assessment. Journal of applied physiology. 114, 99-106 (2013).
  20. Mortola, J. P., Magnante, D., Saetta, M. Expiratory pattern of newborn mammals. Journal of applied physiology. 58, 528-533 (1985).
  21. MacDonald, K. D., Chang, H. Y., Mitzner, W. An improved simple method of mouse lung intubation. Journal of applied physiology. 106, 984-987 (2009).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги