Методическая статья

Использование электроретинограммы чтобы оценить функцию в грызунов Retina и защитные эффекты дистанционного конечностей ишемического прекондиционирования

DOI:

10.3791/52658

⸱

9 июня 2015 г.

 , 
1Discipline of Physiology and Bosch Institute, Sydney Medical School, University of Sydney

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Электроретинограмма (ЭРГ) — это электрический потенциал, генерируемый сетчаткой в ответ на свет. В данной статье описывается, как использовать ЭРГ для оценки функции сетчатки у крыс, адаптированных к темноте, и как она может быть использована для оценки нейропротекторного вмешательства, в данном случае дистанционного ишемического прекондиционирования.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ЭРГ — это сумма всей активности сетчатки. ЭРГ обычно регистрируется роговицей, которая действует как антенна, собирающая и суммирующая сигналы от сетчатки. ЭРГ является чувствительной мерой изменений в функции сетчатки, которые являются панретинальными, но менее эффективна для обнаружения повреждений, ограниченных небольшой областью сетчатки. В настоящей работе мы описываем, как регистрировать «вспышку» ERG, которая представляет собой потенциал, генерируемый при воздействии на сетчатку кратковременной световой вспышки. Описаны методы обезболивания, мидриаза и лечения роговицы во время записи; как сохранить темную сетчатку адаптивной; материалы электродов и их размещение; диапазон и калибровка энергии стимула; Запись параметров и извлечение данных. Мы также описываем метод индуцирования ишемии в одной конечности и то, как использовать ЭРГ для оценки влияния этой удаленной от сетчатки ишемии на функцию сетчатки после светового повреждения. Описан протокол с двумя флэш-накопителями, который позволяет изолировать конусный компонент адаптированной к темноте ERG и, таким образом, разделить компоненты стержня и конуса. Поскольку ЭРГ может быть зарегистрирована с помощью минимально инвазивных методов, она широко используется в исследованиях физиологии, фармакологии и токсикологии сетчатки. Мы опишем один из примеров такой полезности, в котором ЭРГ используется для оценки функции поврежденной светом сетчатки, с нейропротекторным вмешательством и без него; Предварительное кондиционирование методом дистанционной ишемии.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эрг электрический потенциал, создаваемый сетчатки в ответ на свет, и записаны с поверхности роговицы глаза. Когда условия записи будут тщательно управлять, ЭРГ может быть использована в различных способов оценки функции сетчатки. Здесь мы описали, как записать 'флэш ЭРГ', потенциал генерируется, когда сетчатка подвергается краткого, яркой вспышкой, представленной в Ganzfeld фоне. Ganzfeld рассеивает свет равномерно и вспышка света достигает сетчатки весь приблизительно равномерно. Если сетчатка адаптируются к темноте перед записью, и темно-адаптация сохраняется, как животное готовится к записи, ЭРГ получены порождается как палочек и колбочек фоторецепторов.

Темно-адаптированы флэш ЭРГ имеет характерный сигнала, который был проанализирован в двух направлениях. Во-первых, ранние и поздние компоненты сигнала ЭРГ были отмечены, и связана с последовательностью нейронааль активации в сетчатке. Раннее компонент короткое время ожидания отрицательно собирается потенциал, волны (рис 1). Это сопровождается положительным потенциалом-происходит, называется би-волну. Растет фаза б-волны показывает колебания, которые считаются отдельным компонентом (колебательные потенциалы или ОП). Волны считается порождается фоторецепторов, б-волна клетками внутренней ядерного слоя, и ОП по амакринных клеток 1.

Основываясь на прочность стимула, ответы на очень тусклые вспышки называется скотопическое порог срабатывания возможно. Скотопическое порог срабатывания понимается быть получены из ганглиозных клеток сетчатки 2-4. Во-вторых, флэш-ЭРГ может быть отделена от световой адаптации, или в соответствии с протоколом двух флэш описано ниже, в rod- и конусных приводом компонентов. Под фотопических условиях, волны не прощупывается у крыс, потому что население конус низкий, но ОПС и б-волна вясно 5. У приматов, чьи сетчатки имеют более высокие населения конуса, и rod- и cone- пути генерации обнаруживаемого а-волна 6.

Два полезных мероприятия часто, извлеченные из вспышки ERG являются амплитуды а- и В-волн, измеренные как показано на рисунке 1, с типичными ответами флэш показанных на рисунке 2. При население фоторецепторов снижается, например, воздействия разрушительно яркий свет, все компоненты ЭРГ снижаются. Нейропротекторные вмешательства, такие как удаленный ишемическая предварительной подготовки (RIP), может быть подтверждено сохранение амплитуд а- и В-волн (рис 3). В целом, анализ ЭРГ позволяет сравнивать между здоровой, легкой и поврежденных neuroprotected сетчатки.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Этот протокол следует рекомендациям по уходу животное университета Сиднея.

1. Внесение Электроды

  1. Построить положительный электрод (тот, который будет контактировать с роговицы) с короткого (5 см) длины платиновой проволоки 1-2 мм в диаметре. Изготовьте его в петлю на несколько мм в диаметре. Подключите эту петлю к обычной свинца, достаточно долго, чтобы достичь входного каскада усилителя (рисунок 4).
  2. Построить отрицательный электрод (который пойдет в рот животного), используя Ag / AgCl осаждения 1-2 мм в диаметре, также подключенный к конференц-свинец (рисунок 4).
  3. Как электрод (который будет идти в крупе животного), используйте чистую иглу (23 G), также подключенный к проводу соответствующей длины (см рисунок 4).
  4. В идеале, используйте три свинцовых кабелей, предоставляемые производителями приборов, чтобы соединить три электрода (положительного U94; Роговица, отрицательный → рот ссылка → крупу) к усилителю.

2. Подключение и калибровка световой раздражитель и ERG Set-вверх

  1. Создание (или местонахождение) небольшую лабораторию записи, которые могут быть сделаны темными. Одета с одного или обоих из света более-скамейки из красного или красной головой лампы.
  2. Используйте метр люкса, чтобы подтвердить, что красный свет освещенности идущие глаз крысы во время установки не превышает 1 лк.
    Примечание: фильтр нейтральной плотности может быть использован для уменьшения яркости лампы и источником света лампы должны излучать специально красный свет. Темно-адаптация будет нарушена, если источники света излучают более низкие (видимые) длины волн.
  3. Заглушить все рассеянный свет, поступающий в лабораторию записи (это часто требует настойчивости с непрозрачной лентой) и подготовить фильтр нейтральной плотности (это могут быть приобретены в листах), достаточно большой, чтобы соответствовать по, и так скептически, любой экран компьютера у вас будет в лаборатория
    Примечание: Рассеянный свет исвет экрана достаточно, чтобы нанести ущерб темно адаптации крыс глаз.
  4. Подключите усилитель к оборудованию сбора данных. Подключите положительные, отрицательные и справочные ведет к усилителю. Убедитесь, что компьютер и LED Ganzfeld блок питания надежно подключен к источнику заземления.
    Примечание: Некоторые лаборатории специализируются точки заземления, подключается к строительной площадке; водопровод является эффективной альтернативой.
  5. Калибровка светодиодный источник света с исследования качества радиометра. Fix датчик измерителя в положение, при котором глаз животного будет находиться во время эксперимента.
  6. Запрограммируйте Ganzfeld светодиоды запустить полный поле ERG протокол с ступенчатых увеличивается в флэш энергии, длительности вспышки, вспышки повторения и время между вспышками, называется interstimuls интервал (ISI), настройки. Для протокола пример полного поля табл 1.
    Примечание: полный поле ERG мигает увеличится с повторяющимися вспышками тусклых бправый мигает в такт мудрым моды. Близнец программа флэш вытекает из протокола полный поля и позволяет изоляции палочек и колбочек ответов.

3. За день до ERG экспериментированию

  1. Темно-адаптировать Спрэг Dawley крыс в течение 12 часов до начала записи. Это удобно делать это в лаборатории записи, когда рассеянный свет был ликвидирован.

4. День ERG экспериментированию

  1. Организовать животных, чтобы быть осторожно нагревают во время записи. Мы используем легкого металла платформу, созданную таким образом, чтобы голова животного может отдохнуть в правильной точке на входе в Ganzfeld. Платформа имеет встроенный трубки, через которую мы перекачивать воду, предварительно нагретую до 40 ° С на водяной бане.
    Примечание: Опыт показывает, что это удерживает внутреннюю температуру животного при 37 ° С.
  2. Взвесьте крысы в ​​условиях низкой освещенности. Вес Запись и составляют правильный кетамин (60 мг / кг) и Ксилазин (5 мг / кг) дозы. Задержите крысу поколенияTLY и ввести анестетик внутрибрюшинно.
  3. Примечание время инъекции. После того, как животное находится в бессознательном состоянии (обычно в течение 5 мин) проверить глубину анестезии, слегка зажимая одну ногу площадку, чтобы увидеть, если рефлекторный ответ присутствует. Лучше всего подождать, пока этот рефлекс не отсутствует или слабый, прежде чем продолжить.
  4. Нанесите каплю атропина и другой из proxmethacaine к роговице.
  5. Вырезать 10 см длины черной ниткой. Сделайте петлю с простым узлом и скольжения петли над экватором глаза. Затянуть слегка; Эффект привлечь глазное яблоко немного вперед, с минимальным давлением. Это позволяет роговицы видно из век.
  6. Применить карбомер глазные капли на поверхности роговицы. Убедитесь, карбомер остается на поверхности роговицы и не проливать на веки или лица.
  7. Поместите впитывающую постельные принадлежности поверх нагретой платформы.
  8. Положение крысы на постельные принадлежности, с головой в рекомендуемой место в открытии Ganzfeld.
  9. Вставьте INTernal датчик температуры в прямой кишке. Безопасный температурный зонд в положении лентой зонд шнур к хвосту.
  10. Вставьте электрод сравнения (23 г) иглы подкожно в заднюю ногу, и подключиться к усилителю.
  11. Поместите отрицательный электрод (осадок Ag / AgCl) надежно во рту. Чтобы предотвратить это ускользает из рот, закрепите соединительный провод к устойчивой поверхности.
  12. Поместите положительный электрод по центру роговицы. Использование микроманипулятора, убедитесь, что электрод касается роговицы осторожно.
  13. Проверьте температура тела на 37,0 - 37,5 ° С.
  14. После того, как животное правильно и электроды находятся в месте, задрапировать всю установку (Ganzfeld и животных) с непрозрачного материала (для сохранения темно адаптации). Мы используем мягкую черную ткань.
  15. В программное обеспечение сбора, установленного при частоте дискретизации 2 кГц при времени сбора 100-1000 мс с 5 мс выборки предварительно сбора. Установите полосовые фильтры 1-1,000Гц и обеспечить отбор срабатывает попробовать период ~ 250 мс следующей вспышки.
  16. Проверьте записи базового. Он должен быть свободным от посторонних шумов, но показать некоторые усилитель шума и дыхательной колебания.
  17. Если базовый показывает посторонний шум, начинают поиск и устранение неисправностей. Большинство проблем связано с проскальзывание в положении электрода или заземления. Используйте клетка Фарадея, чтобы записи были свободны от посторонних шумов.
  18. Запуск тестовой вспышки, 0,4 журнала шотландец cd.sm -2. ЭРГ сигнала как на рисунке 2А должен появиться. В наших лабораторных типичных ответов на 0,4 журнала шотландец cd.sm -2 вспышки являются (волны: -474 ± 39 мкВ и б-волны: 1512 ± 160 мкВ, п = 11).
  19. Разрешить животных до темно-ре-адаптации в течение 10 мин. Это удобно использовать эти 10 минут, чтобы перепроверить базовый уровень.
  20. После подтверждения стабильного сигнала начать запись.
  21. В конце сессии записи, проверить, что тела TEMPERATЮр была сохранена. Удалить электродов. Повторно карбомер полимера к роговицы. Разрешить животных для восстановления на тепловой площадку до тех пор, пока полностью мобильным и активным, прежде чем вернуться в помещениях для содержания животных.

5. Дистанционное ишемии

  1. Выполните дистанционного ишемии либо активных или обезболивание грызунов.
  2. Если животное находится под наркозом, положите его на разогретую платформы (выше) и скольжения сфигмоманометрическая манжету на верхней части задних конечностей, с отрывом от колена.
  3. Если животные используются для обрабатывается, можно выполнить эту процедуру без анестезии; это требует двух человек. Один человек сдерживает животное осторожно и второй применяется сфигмоманометрическая манжеты и работает сфигмоманометре.
  4. Для активных животных, использовать кусок полотенце ~ 15 см х 30-50 см, чтобы мягко обернуть животное, с одной задней конечности бесплатно. Положите животное на спину на (скажем) левого предплечья, с его головы заправленные между рукой и туловищем владельца и местаманжеты, как описано выше.
  5. Выпустите манжету и обеспечить клапан давления воздуха закрыт. Насос манжету до 160 мм рт.ст. обезболивание животных и 180 мм рт.ст. в активных животных. Это превышает систолическое давление (обычно 140 мм рт.ст. и 160 мм рт.ст. соответственно).
  6. Поддержание этого давления по мере необходимости, с помощью ручного насоса.
  7. После запланированное время для ишемии (мы используем 2 периода по 5 минут, разделенных на 5 мин реперфузии), выкачать давление в манжете, ослабив клапан давления воздуха.
  8. Подтверждение эффект дистанционного ишемии с температуры кожи зонда, прикрепленного к подушечку лапы. Температура кожи, как правило, падает с 32-30 ° С, в течение 5 мин и восстанавливает на реперфузии.

6. Свет Нанесенный

  1. Убедитесь, что крысы в ​​темно-адаптированы ночь, перед процедурой легкий ущерб.
  2. В соответствующее время после ишемии конечности (в наших опытах без задержки), каждое животное помещают отдельно в плексиглас коробки, Wiй воды и пищи в пол на основе контейнеров.
    Примечание: Свет-индуцированного повреждения могут быть предприняты только в белых животных.
  3. Включение предварительно откалиброван 1000 лк белым светом при стандартной времени (как правило, 9 утра) и поддерживать это состояние в течение 24 ч.

7. ЭРГ Извлечение данных и анализ

  1. Приобретать усредненные волновые формы ЭРГ. При необходимости, правильно для ненулевого базовой, путем вычитания.
  2. Измерьте амплитуду а-волны (представленной на средних и высоких интенсивностей стимулирования), а разность напряжений между линией и первым (<30 мс задержки) корыто (Рисунок 1).
  3. Измерьте амплитуду б-волны как разность напряжений между пиком а-волны и позитив следующей волны, как правило, происходит в латентности 80-100 мс (рис 1).
  4. Изолировать колебательные потенциалы с помощью преобразования Фурье для фильтрации данных из 60-235 Гц, с 90 Гц переходной полосой 7. При необходимости изоляции колебательный потенциал сигнала затем могут вычитаться из нефильтрованного сигнала, чтобы подтвердить личность волны корыта.
  5. Неявный (задержки) из а- и б-волновых пиков также может быть полезной мерой (Рисунок 1). Используйте двойной вспышки, чтобы изолировать реакцию стержня. Вычтите ответ конуса (флэш 2) из смешанного ответ (флэш-1), чтобы изолировать реакцию стержня (рис 2).
  6. Нормализовать отдельному интенсивности света а-волну и б амплитуд (пост-обработка / пост-обработка-Baseline), или в среднем по группам лечения. Кривые интенсивности-ответ участок амплитуды групповых и ошибки в отношении флэш-энергии.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Протокол может быть использован для измерения зрительной функции сетчатки грызунов в естественных условиях. Волны, мера функции фоторецепторов, и б-волна, мера внутренней функции сетчатки, в примечаниях на рисунке 1.

Стержневые доминируют ERG сигнала возрастает с увеличением светового стимула, как показано на рисунке 2А. Волны становится очевидным при ~ 0,4 журнала шотландец cd.sm -2 и амплитуда волн увеличивается до уровня насыщения в 2,...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Флэш-метод темного приспособлены ЭРГ описано выше надежный метод для оценки функции сетчатки у крыс. И волны и б-волна сократились на свет повреждения. Удаленная ишемическая предварительная смягчены сокращения легкие повреждения, вызванной в а-волны и В-волны. Это сохранение функции сетчатки позволяет предположить, что дистанционное ишемическая предварительная побудило нейропротекцию, напоминающие другие формы защитного предварительной таких как гипоксия, ишемия и упражнения 8-10. Сигнал записывается ЭРГ опре...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Джонатан Стоун директор КБСС Pty Ltd

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы благодарны за помощь миссис Шарон Spana в мониторинга грызунов, обработки и экспериментов. Поддержка кандидат финансирование было предусмотрено университета Сиднея и австралийской научно-исследовательского центра передового опыта в Vision.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
ПК компьютер
Powerlab, 4-х канальное оборудование для сбораAD InstrumentsPL 35044Приобретение ERG
Animal Bio AmpAD InstrumentsFE 136Усилитель для ERG
Лабораторная диаграммаAD InstrumentsПрограммное обеспечение для сбора сигналов
GanzfieldФотометрические решенияFS-250AСветовой стимул
Ганцфилд операционная системаФотометрические решения
Исследовательский радиометр Международныесветовые технологииILT-1700калибровка света серии
ЛюксметрLX-1010Bпроверка красный свет иллюстрация
ExcelMicrosoft
Свинцовые проводаAD InstrumentsПодключение положительный, отрицательный Заземляющие электроды к усилителю
Подводящие провода - аллигаторAD Instrumentsзаземление ганцфилда и оборудование для приобретения к компьютеру
Платиновая проволока 95%A& E металлыпозитивный электрод
Ротовой электрод Ag/AgCl PelletSDRE205отрицательный электрод
26 G иглаBDзаземляющий электрод
Водяной насос
Водяная баня
Трубка
Гомеотермическая система одеяла с гибким зондомHarvard Appartus507222F
Атропин 1% противBausch & Локальныймидриаз
Проксметикаин 0,5% сBausch & Ломбместный анестетик
Виско слезы глазные каплиNovartisкарбомерный полимер
Ниткавтягивающее веко
Пинцет
многоразовый клейBlu tacDim красный налобный фонарь. Приставные электроды
Абсорбирующая подстилка
Кетамил - кетамин 100 мг/мл - 50 млTroy Laboratories Pty Ltdдиссоциативный
ксилий - ксилазин 100 мг/мл - 50 млTroy Laboratories Pty Ltdмиорелаксант
Scale
данных Ломба

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Arden, G. B., Heckenlively, J. Principles and practice of clinical electrophysiology of vision. , MIT Press. 139-183 (2006).
  2. Bui, B. V., Fortune, B. Ganglion cell contributions to the rat full-field electroretinogram. Journal of Physiology-London. 555 (1), 153-173 (2004).
  3. Fortune, B., et al. Selective ganglion cell functional loss in rats with experimental glaucoma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (6), 1854-1862 (2004).
  4. Alarcon-Martinez, L., et al. Short and long term axotomy-induced ERG changes in albino and pigmented rats. Molecular Vision. 15 (254-255), 2373-2383 (2009).
  5. Lyubarsky, A. L., et al. Functionally rodless mice: transgenic models for the investigation of cone function in retinal disease and therapy. Vision Research. 42 (4), 401-415 (2002).
  6. Bush, R. A., Sieving, P. A. A PROXIMAL RETINAL COMPONENT IN THE PRIMATE PHOTOPIC ERG A-WAVE. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 35 (2), 635-645 (1994).
  7. Liu, K., et al. Development of the electroretinographic oscillatory potentials in normal and ROP rats. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (12), 5447-5452 (2006).
  8. Casson, R. J., Wood, J. P. M., Melena, J., Chidlow, G., Osborne, N. N. The effect of ischemic preconditioning on light-induced photoreceptor injury. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 44 (3), 1348-1354 (2003).
  9. Lawson, E. C., et al. Aerobic Exercise Protects Retinal Function and Structure from Light-Induced Retinal Degeneration. Journal of Neuroscience. 34 (7), 2406-2412 (2014).
  10. Grimm, C., et al. HIF-1-induced erythropoietin in the hypoxic retina protects against light-induced retinal degeneration. Nature Medicine. 8 (7), 718-724 (2002).
  11. Weymouth, A. E., Vingrys, A. J. Rodent electroretinography: Methods for extraction and interpretation of rod and cone responses. Progress in Retinal and Eye Research. 27 (1), 1-44 (2008).
  12. Bayer, A. U., Cook, P., Brodie, S. E., Maag, K. P., Mittag, T. Evaluation of different recording parameters to establish a standard for flash electroretinography in rodents. Vision Research. 41 (17), 2173-2185 (2001).
  13. Pugh, E. N., Lamb, T. D. AMPLIFICATION AND KINETICS OF THE ACTIVATION STEPS IN PHOTOTRANSDUCTION. Biochimica Et Biophysica Acta. 1141 (2-3), 111-149 (1993).
  14. Breton, M. E., Schueller, A. W., Lamb, T. D., Pugh, E. N. ANALYSIS OF ERG A-WAVE AMPLIFICATION AND KINETICS IN TERMS OF THE G-PROTEIN CASCADE OF PHOTOTRANSDUCTION. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 35 (1), 295-309 (1994).
  15. Mizota, A., Adachi-Usami, E. Effect of body temperature on electroretinogram of mice. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 43 (12), 3754-3757 (2002).
  16. Szabo-Salfay, O., et al. The electroretinogram and visual evoked potential of freely moving rats. Brain Research Bulletin. 56 (1), 7-14 (2001).
  17. Charng, J., et al. Conscious Wireless Electroretinogram and Visual Evoked Potentials in Rats. Plos One. 8 (9), (2013).
  18. Galambos, R., Juhasz, G., Kekesi, A. K., Nyitrai, G., Szilagyi, N. NATURAL SLEEP MODIFIES THE RAT ELECTRORETINOGRAM. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (11), 5153-5157 (1994).
  19. Galambos, R., Szabo-Salfay, O., Szatmar, E., Szilagyi, N., Juhasz, G. Sleep modifies retinal ganglion cell responses in the normal rat. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (4), 2083-2088 (2001).
  20. Guarino, I., Loizzo, S., Lopez, L., Fadda, A., Loizzo, A. A chronic implant to record electroretinogram, visual evoked potentials and oscillatory potentials in awake, freely moving rats for pharmacological studies. Neural Plasticity. 11 (3-4), 241-250 (2004).
  21. Huang, J. C., Salt, T. E., Voaden, M. J., Marshall, J. NON-COMPETITIVE NMDA-RECEPTOR ANTAGONISTS AND ANOXIC DEGENERATION OF THE ERG B-WAVE IN-VITRO. Eye (London). 5 (4), 476-480 (1991).
  22. Sasovetz, D. KETAMINE HYDROCHLORIDE - EFFECTIVE GENERAL ANESTHETIC FOR USE IN ELECTRORETINOGRAPHY. Annals of Ophthalmology. 10 (11), 1510-1514 (1978).
  23. Mojumder, D. K., Wensel, T. G. Topical Mydriatics Affect Light-Evoked Retinal Responses in Anesthetized Mice). Investigative Ophthalmology & Visual Science. 51 (1), 567-576 (2010).
  24. Fraunfel, F. t, Burns, R. P. ACUTE REVERSIBLE LENS OPACITY - CAUSED BY DRUGS, COLD, ANOXIA, ASPHYXIA, STRESS, DEATH AND DEHYDRATION. Experimental Eye Research. 10 (1), 19(1970).
  25. Calderone, L., Grimes, P., Shalev, M. ACUTE REVERSIBLE CATARACT INDUCED BY XYLAZINE AND BY KETAMINE-XYLAZINE ANESTHESIA IN RATS AND MICE. Experimental Eye Research. 42 (4), 331-337 (1986).
  26. Behn, D., et al. Dark adaptation is faster in pigmented than albino rats. Documenta Ophthalmologica. 106 (2), 153-159 (2003).
  27. Sugawara, T., Sieving, P. A., Bush, R. A. Quantitative relationship of the scotopic and photopic ERG to photoreceptor cell loss in light damaged rats. Experimental Eye Research. 70 (5), 693-705 (2000).
  28. Machida, S., et al. P23H rhodopsin transgenic rat: Correlation of retinal function with histopathology. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 41 (10), 3200-3209 (2000).
  29. Brandli, A., Stone, J. Remote Ischemia Influences the Responsiveness of the Retina. Observations in the Rat. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 55 (4), 2088-2096 (2014).
  30. Maccarone, R., Di Marco, S., Bisti, S. Saffron supplement maintains morphology and function after exposure to damaging light in mammalian retina. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (3), 1254-1261 (2008).
  31. Hood, D. C., Birch, D. G. Assessing abnormal rod photoreceptor activity with the a-wave of the electroretinogram: Applications and methods. Documenta Ophthalmologica. 92 (4), 253-267 (1996).
  32. Robson, J. G., Frishman, L. J. The rod-driven a-wave of the dark-adapted mammalian electroretinogram. Progress in Retinal and Eye Research. 39, 1-22 (2014).
  33. Hood, D. C., Birch, D. G. A COMPUTATIONAL MODEL OF THE AMPLITUDE AND IMPLICIT TIME OF THE B-WAVE OF THE HUMAN ERG. Visual Neuroscience. 8 (2), 107-126 (1992).
  34. Wachtmeister, L. Oscillatory potentials in the retina: what do they reveal. Progress in Retinal and Eye Research. 17 (4), 485-521 (1998).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Retinal FunctionRemote Ischemic PreconditioningDark Adapted ERGA Wave B WaveKetamine Xylazine AnesthesiaGanzfeld StimulationCorneal Electrode PlacementLight Damage ModelPhotoreceptor Response Assessment

Похожие статьи