Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Роман биореактор для высокой плотности Выращивание разнородных микробных сообществ

17.1K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/53443

⸱

25 декабря 2015 г.

 ,  , 
1Civil, Architectural, and Environmental Engineering, Drexel University, 2Chemical and Biomolecular Engineering, University of Pennsylvania

В этой статье

Краткое содержание

Представлена новая конструкция реактора, получившая название биореактор высокой плотности (HDBR), для культивирования и изучения микробных сообществ высокой плотности. Здесь HDBR успешно применяется в конфигурации фотобиореактора (PBR) для изучения метаболизма азота в смешанном сообществе водорослей высокой плотности.

Аннотация

Представлена новая конструкция реактора, получившая название биореактор высокой плотности (HDBR), для культивирования и изучения микробных сообществ высокой плотности. В прошлых исследованиях оценивалась производительность реактора по удалению ХПК1 и азота2-4 гетеротрофными и хемоавтотрофными бактериями соответственно. Конструкция HDBR устраняет необходимость во внешних процессах флокуляции/осаждения, при этом по-прежнему дает сточные воды, содержащие низкое содержание взвешенных твердых частиц. В данном исследовании HDBR применяется в качестве фотобиореактора (PBR) для характеристики удаления азота фотосинтезирующим микробным сообществом на основе водорослей. Как сообщалось ранее, для данной конструкции HDBR была создана стабильная зона биомассы с четким разграничением между биологически активной частью реактора и средой рециркуляции реактора, что привело к низкому содержанию взвешенных твердых частиц. Было замечено, что сообщество водорослей в HDBR удаляет 18,4% от общего количества азота во входящем слое. Варьирование концентраций NH4+ и NO3- в корме не оказывало влияния на удаление NH4+ (n=44, p=0,993 и n=44, p=0,610 соответственно), в то время как концентрация NH4+ в корме отрицательно коррелировала с удалением NO3- (n=44, p=0,000), а концентрация NO3- в корме положительно коррелировала с NO3- удаление (n=44, p=0,000). Последовательное удаление NH4+ в сочетании с накоплением окисленных форм азота при высоких потоках NH4+ указывает на присутствие аммиач- и нитритокисляющих бактерий в микробном сообществе.

Введение

Городские сточные воды обычно обрабатывают процессов с активным илом с целью снижения взвешенные твердые частицы (SS), биологическое потребление кислорода (БПК), органические и неорганические азотные и содержанием фосфора 5,6. Активированный процесс осадка, средство вторичной очистки сточных вод, влечет за собой окисление органического углерода в аэротенка, наполненной смешанной жидкости из поступающих сточных вод и вторичного гетеротрофных микроорганизмов (как правило, называют активного ила) 5-7. Смешанный раствор затем поступает относительно большое осветлитель (отстойник), где шлам оседает для облегчения сбора, либо утилизировать или возвращается в аэротенк, а осветленный, очищенные сточные воды могут продолжать доочистки или обеззараживания до выпуска в получающие воды 5-7. Эффективное разделение очищенных сточных вод и твердых (шлама) на вторичном отстойнике имеет важное значение для нормального функционирования А былСистема обработки tewater, как и любой активный ил продолжает за осветлителей увеличится БПК и SS в сточных 5-8.

Ряд альтернативных биологических процессов существуют для вторичной очистки сточных вод позволяют сократить или устранить необходимость в больших резервуарах, разъясняющие, в том числе прикрепленного роста (биопленки) реакторов, мембранных биореакторов (МБР), и сыпучих шламовых реакторов. В биопленки реакторов, формирование биопленок, в котором микроорганизмов, естественно совокупности и приложить в виде слоя на твердой поверхности, позволяет удержания биомассы и накопления без необходимости осветл бака. Биопленки реакторы могут быть классифицированы на три типа: реакторов с уплотненным слоем, реакторы с псевдоожиженным слоем, и вращение биологических контакторов. Упакованные реакторы слоем, такие как капельных фильтрах и биологических башен, используют стационарную твердую поверхность роста 5,6. Реакторы с кипящим слоем (FBRs) зависит от приложения микроорганизмов к частицам,таких как песок, гранулированный активированный уголь (GAC), или стеклянные бусы, которые хранятся в суспензии с высокой скоростью восходящего потока 9,10. Вращающиеся биологических реакторов зависит от биопленок, образованных на носителе, прикрепленных на вращающемся валу, позволяющих биопленки быть попеременно экспонированных на воздухе и жидкость проходят лечение 5,6. МУРЗ использовать единицы мембранной фильтрации, либо в биореакторе (погруженной конфигурации) или внешне через рециркуляции (конфигурации сторона-поток) 5,11. Мембраны служат для достижения хорошего разделения биомассы и твердых частиц из обрабатываемого жидкого 11,12. Гранулированные шлама реакторов с восходящим потоком реактора, в котором формирование чрезвычайно плотных и хорошо оседающих гранул микроорганизмов происходит, когда они подвергаются воздействию высокой поверхностной воздуха восходящего потока скоростей 13.

В качестве другой альтернативы в активного ила, роман с восходящим потоком реактора системы, которая теперь называется высокой плотности биореактор (HDBR), был Дизайнд и построен по продажам и Shieh (2006) для изучения удаление ХПК активного ила из потоков отходов синтетических в условиях низких F / M, что, как известно, приводит к образованию осадка плохой осаждения (т.е., наполнители шлама) 1,7,14. Система HDBR использованы модифицированные реакторы с псевдоожиженным слоем, который, как правило, состоят из реактора с восходящим потоком и внешней рециркуляции резервуара. Реакторы с кипящим слоем, как правило, работает с частотой поток рециркуляции потока, достаточно высоких, чтобы субстрат роста биопленки приостановлено, но достаточно низких, так что биопленки покрытые подложки сохраняется. В отличие от реакторов с кипящим слоем, то HDBR описано в продаже и Shieh (2006), используемый относительно низкие цены рециркуляционный поток потока, который, наряду с внешним аэрации, предотвратить нарушение зоны биомассы, образованной в реакторе 1. Последующие исследования показали, способность этого реактора конструкции как успешно лечить целый ряд потоков азота с помощью нитрификации / денитрификации бактерий 3,4. Во всех шпильких годов формирование стабильной, плотной зоне биомассы в рамках HDBR отпала необходимость во внешнем флокуляции процесса / оседания 1-4.

Как мы сообщаем, использование HDBR расти густые культуры был также протестирован в фотобиореактор (PBR) конфигурации для выращивания водорослей. Мы обсудим преимущества и недостатки этой новой системы реактора для выращивания водорослей и потенциал для преодоления большой барьер в коммерциализации водорослей биотоплива, связанных с уборки биомассы (т.е. хорошо твердой и жидкой фаз 15,16). Следующий протокол описывает шаги, необходимые для сборки, запуска, образец из, и поддерживать HDBR с водорослями, как микробного сообщества интерес. Изменения в запуске и эксплуатации протокола гетеротрофных и нитрифицирующих / Денитрифицирующие культур также будут упомянуты. Наконец, будут выделены общие преимущества, недостатки, и неизвестные этой новой конструкции реактора.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Реактор Ассамблея

  1. Упорядочить компоненты реактора в соответствии с схеме на рисунке 1.
    1. Поместите реактор (R) на смесительной пластине, добавить мешалкой в ​​реактор. Поместите рецикла бак (RT) рядом с пластиной и мешалкой реакторе таким образом, чтобы сточные воды (вверху) отверстие резервуара направляется к краю лабораторном столе.
    2. Поместите контейнер для отходов (W) под стоков (верхняя) порт рециркуляции бака (RT). Поместите подачи бак (FT) рядом с рециркуляции бака (RT).
      Примечание: Бак подачи имеет общую емкость 5 л
  2. Безопасный реактор (R) против опрокидывания с соответствующим размером стенда и зажима. Точно так же, обеспечить рециркуляции танк (RT) для предотвращения движения.
  3. Вставьте неопрена перистальтический насос в рециркуляции (насос A) и кормить головы (Насос B) насоса. Обратитесь к таблице материалов для дополнительных спецификаций труб. Установите головки насоса на насос дисков с винтами ProViДед с приводами насосов.
  4. Подключите шланг накачки, чтобы порты на реакторе и рециркуляции бака. Вставьте конец трубки Pump Б в бак подачи и рециркуляции бака. Подключите верхний порт реактора в мусорную бака с трубкой. Применение зажимы трубки в портах реактора.
    Примечание: Фотосинтетические общины могут извлечь выгоду из искусственном освещении лампами предоставленной.

2. Подготовка исходных растворов, влиятельных / корм Solutions, и водорослей модификатора

  1. Подготовка минерального сырья решение. Добавьте следующее в 1-литровую мерную колбу на 500 мл деионизированной воды: 200 г бикарбоната натрия, 40 г одноосновного фосфата калия, 4 г сульфата магния, 4 г хлорида железа, 4 г хлорида кальция, 1 г хлорида меди, 1 г кобальта гексагидрата хлорида, 1 г гексагидрата хлорида никеля, 1 г гептагидрата сульфата цинка. Добавить еще 400 мл деионизированной воды. Вихревой силой поощрять растворение солей. После диссспособность по солей, добавить деионизированную воду, чтобы довести общий объем раствора до 1 л
  2. Подготовка исходного раствора аммиака. В 1 л мерной колбе, растворяют 38.214 г хлорида аммония в примерно 900 мл деионизированной воды. После растворения, добавить деионизированной водой до довести общий объем до 1000 мл.
    Примечание: 1 мл исходного раствора, разбавленного до объема 1 л дает 10 мг L -1 NH + 4 -N решение.
  3. Подготовка исходного раствора нитрата. В 1 л мерной колбе, растворяют 72.413 г нитрата калия в примерно 900 мл деионизированной воды. После растворения, добавить деионизированной водой до довести общий объем до 1000 мл.
    Примечание: 1 мл раствора разбавленные до 1 л дает 10 мг L-1 NO 3 - -N решение.
  4. Подготовка кормов / втекающего раствора. Чтобы сделать подачи раствора, содержащего 20 мг · л -1 NH 4 + -N и 20 мг L -1 NO 3 - -N, разбавленные 2 млmmonia раствор и 2 мл нитрата маточного раствора до 1 л общего объема. До разбавления, добавить 0,5 мл минерального раствора / л раствора, достигнутый. Подготовьте 5 л сточной в общей сложности для запуска реактора.
  5. Подготовка водорослей модификатора.
    1. Накопление большого объема (по крайней мере, 10 л) воды из водного водорослей, содержащих такие как поток или водоем. Разрешить водоросли урегулировать оставив пробы воды в покое на 24 ч.
    2. Декантировать и отбросить ясно (нон-водоросли, содержащий воду) в верхней части образцов, оставляя концентрированной суспензии водорослей в образце бутылок. Смешайте водоросли суспензии из всех образцов в один контейнер и повторить оседание и декантации шаги.
    3. Измерьте биомассы в течение концентрированного образца.
      1. Высушите бумажный фильтр вакуумный (0,45 мкм MCE вакуум-фильтра) и алюминия весит лодка O / N в печи, которая была установлена ​​до 103 ° C После остывания в эксикаторе в течение 30 мин при комнатной температуре измерения СОmbined массу фильтра и весят лодку.
      2. Вакуумный фильтр 20 мл концентрированной суспензии водорослей и вернуть фильтр и весят лодке печь для сушки O / N.
      3. Измерьте общую массу фильтра и весят лодку. Рассчитайте плотность биомассы в течение концентрированного образца.
        Примечание: общий объем пробы воды, что следователи необходимо собрать, будет зависеть от тела источник воды.

3. Посев и запуск реактора

  1. Добавить 750 мл исходного раствора в реактор. Заполните рециркулирующего бак 500 мл исходного раствора.
  2. Использование длинный пипетку осторожно добавить инокуляции суспензии, содержащей 1,5 г водорослей в нижней части реактора. Разрешить посевной оседают на дно реактора, обеспечить это путем визуального наблюдения, прежде чем перейти к следующему шагу.
  3. Как только клетки осели, удалить зажимы трубок и включите насос А на медленной скорости потока (10 revolutioнс мин -1 / 38 мл мин -1). Воздух в ловушке в трубке будет исключен в реактор.
    Примечание: Добавление 750 мл в реактор предотвратит биомассы нарушается с помощью насоса из выходящий из реактора. Сожмите трубку, чтобы убедиться, что весь воздух был исключен.
  4. Постепенно добавить исходный раствор в резервуаре рецикла как раствор перекачивают в реактор. Продолжить добавление пока оба реактора и рециркулирующий бак не на полную мощность и сточных начинается, чтобы выйти из рецикла резервуара через верхний порт.
    Примечание: объем исходного раствора, чтобы быть добавлены в резервуар рециркулирующего будет варьировать в зависимости от объема затравки в реактор.
  5. Налейте оставшееся подачи раствора в баке подачи.
  6. Установите циркуляционного насоса (насос A) до 19 оборотов мин -1, установление скорости рециркуляции потока 72,5 мл мин -1. Заметим, водоросли начинают чердак из нижней части реактора. Используя градацию на реакторе, определить водоросли биomass Высота зоны. Убедитесь, что высота является постоянным, прежде чем приступить к следующему шагу.
  7. Включите смешивания пластины при очень низкой скорости; значение 1 или 2 целесообразно начинать. Смешивания бар будет оказывать помощь в лофтинг биомассы дальше, но агрессивный смешивания вызовет водоросли, чтобы оставить реактор, введите рециркуляции танк, и оставить в стоке. Установите скорость перемешивания при настройке, необходимой для установления четкой границы водорослей внутри реактора (рис 2А); зона биомассы водорослей должна быть примерно 10-15 см в высоту.
  8. Начните подачи насоса после наблюдения четкую границу между водорослей вилки и жидкости реактора. Установите насос 25 оборотов мин -1, установление скорости потока 1,5 мл мин -1. Соблюдайте выходе из реактора жидкости отходящего порт из-за тяжести и перемещения, вызванные входящего потока влиятельных.

4. Отбор проб и анализ

  1. Осуществлять сбор образец деятельность PRIили выполнении технического обслуживания системы реактора. Соберите 20 мл сточных и влиятельных образцов в день. Сбор образцов сточных вод из рецикла в баке. Собирают образцы втекающих непосредственно из резервуара подачи.
  2. Образцы Вакуумный фильтр для удаления взвешенных веществ до хранения и анализа.
  3. Хранить втекающий и стоков образцов при -20 ° C до дальнейшего анализа. Ограничьте число циклов замораживания-оттаивания образцов, подвергнутых. При необходимости образцы могут быть разделены на аликвоты для поддержания целостности образца.
  4. Провести анализ проб на нитраты, нитриты, аммиак и, используя стандартные методы 17.
    Примечание: авторы используемые ионной хроматографии (IC) для получения результатов, представленных в данном документе. Обратитесь к таблице материалов для уточнения.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

HDBR был использован для выращивания водорослей в течение нескольких соотношениях втекающий аммиака и нитрата концентрации, при сохранении общего содержания азота в сырье на уровне 40 мг -NL -1. Влиятельных и стоков были взяты образцы в день; Образцы плотность биомассы были приняты в начале и в конце каждого состояния. Реактор взял в среднем 3-5 дней, чтобы достичь стационарного равновесия после условия были изменены. В широком диапазоне условий влиятельных был создан особым зона биомассы, как это наблюдается...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

В этом разделе будет начать с обсуждения изменений протокола, необходимых для решения возможных оперативных вопросов, а также с использованием различных микробных сообществ. Будут обсуждаться сильные данной конструкции реактора, в том числе способность управлять контроль потока кислорода и образование больших хлопьев плотности внутри реактора. Текущие проблемы и возможные пути исследования также будут упомянуты.

Протокол нюансы и вариации
Работа HDBRs для выращивания различны...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать и заявлять, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.

Благодарности

Авторы хотели бы выразить признательность Аспен Уокер из Университета Пенсильвании за ее помощь в обслуживании реактора и сборе образцов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Аэрационный каменьAlitaAS-3015C
АэраторTop FinAir-1000
Хлорид аммонияSigma AldrichA9434
Колонка для анионного анализаShodexIC SI-52 4E
Стакан (600 мл)Corning Pyrex1000-600Используется в качестве смесительной емкости (МВ). Добавление заусенцев шланга на дне и уровней 500 мл. Наружный диаметр штуцеров шланга 3/8".
Хлорид кальцияSigma AldrichC5670
Колонка для анализа катионовShodexIC YS-50
Гексагидрат хлорида кобальтаSigma AldrichC8661
Хлорид медиSigma Aldrich222011
Хлорид железаSigma Aldrich157740
Фильтр (вакуум)Fisherbrand09-719-2Э0.45 μ м мембранный фильтр, MCE, 47  Диаметр мм
Градуированный цилиндр (1 000 мл)Corning Pyrex3025-1LИспользуется в качестве корпуса реактора (R). Добавление штуцеров для шланга на дне, 500 мл и 1 л уровней. Наружный диаметр штуцеров шланга 3/8".
ВЭЖХ/ИСShimadzuProminence
Сульфат магнияSigma AldrichM2643
Masterflex L/S Частотно-регулируемый приводMasterflex07553-50Привод для рециркуляционных и питательных насосов (2 необходимых)
Никель хлорид гексагидратSigma AldrichN6136
Нитрат калияSigma AldrichP8291
(Моноосновный) Фосфат калияSigma AldrichP5655
Головка насосаMasterflex07018-20Головка насоса переработки
Головка насосаMasterflex07013-20Головка питательного насоса
Трубка насосаMasterflex6404-18Трубка насоса вторичной
Трубка насосаMasterflex6404-13Трубка питательного насоса
Натрий бикарбонатSigma AldrichS5761
Сульфат цинка гептагидратSigma AldrichZ0251
переработки

Ссылки

  1. Sales, C. M., Shieh, W. K. Performance of an aerobic/anaerobic hybrid bioreactor under the nitrogen deficient and low F/M conditions. Water Res. 40 (7), 1442-1448 (2006).
  2. Nootong, K. Performance and kinetic evaluations of a novel bioreactor system in the low-oxygen/low-fluid shear reaction environments. , University of Pennsylvania. 3225514(2006).
  3. Nootong, K., Shieh, W. K. Analysis of an upflow bioreactor system for nitrogen removal via autotrophic nitrification and denitrification. Bioresour Technol. 99 (14), 6292-6298 (2008).
  4. Ramanathan, G., Sales, C. M., Shieh, W. K. Simultaneous autotrophic denitrification and nitrification in a low-oxygen reaction environment. Water Sci Technol. 70 (4), 729-735 (2014).
  5. Rittmann, B. E., McCarty, P. L. Environmental Biotechnology: Principles and Applications. , McGraw-Hill Higher Education. (2001).
  6. Tchobanoglous, G., Burton, F. L., Stensel, H. D. Wastewater Engineering: Treatment and Reuse. , 4th edn, McGraw-Hill Science/Engineering/Math. (2002).
  7. Palm, J. C., Jenkins, D., Parker, D. S. Relationship between Organic Loading, Dissolved-Oxygen Concentration and Sludge Settleability in the Completely-Mixed Activated-Sludge Process. Journal Water Pollution Control Federation. 52 (10), 2484-2506 (1980).
  8. Jenkins, D. Towards a Comprehensive Model of Activated-Sludge Bulking and Foaming. Water Science and Technology. 25 (6), 215-230 (1992).
  9. Shieh, W., Keenan, J. Ch. 5 Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology. Bioproducts. 33, Springer. Berlin Heidelberg. 131-169 (1986).
  10. Shieh, W. K., Li, C. T. Performance and Kinetics of Aerated Fluidized-Bed Biofilm Reactor. Journal of Environmental Engineering-Asce. 115 (1), 65-79 (1989).
  11. Alvarez-Vazquez, H., Jefferson, B., Judd, S. J. Membrane bioreactors vs conventional biological treatment of landfill leachate: a brief review. Journal of Chemical Technology & Biotechnology. 79 (10), 1043-1049 (2004).
  12. Fenu, A., et al. Activated sludge model (ASM) based modelling of membrane bioreactor (MBR) processes: a critical review with special regard to MBR specificities. Water Res. 44 (15), 4272-4294 (2010).
  13. Liu, Y., Tay, J. H. The essential role of hydrodynamic shear force in the formation of biofilm and granular sludge. Water Res. 36 (7), 1653-1665 (2002).
  14. Chudoba, J., Grau, P., Ottová, V. Control of activated-sludge filamentous bulking-II. Selection of microorganisms by means of a selector. Water Research. 7 (10), 1389-1406 (1973).
  15. Christenson, L., Sims, R. Production and harvesting of microalgae for wastewater treatment, biofuels, and bioproducts. Biotechnol Adv. 29 (6), 686-702 (2011).
  16. Henderson, R., Parsons, S. A., Jefferson, B. The impact of algal properties and pre-oxidation on solid-liquid separation of algae. Water Res. 42 (8-9), 8-9 (2008).
  17. Jackson, P. E. Encyclopedia of Analytical Chemistry. Meyers, R. A. , John Wiley & Sons. Chichester UK. (2000).
  18. Wilkinson, G. N., Rogers, C. E. Symbolic descriptions of factorial models for analysis of variance. Applied Statistics. 22, 392-399 (1973).
  19. Chambers, J. M. Ch. 4. Statistical Models in S. Chambers, J. M., Hastie, T. J. , Wadsworth & Brooks/Cole. (1992).
  20. R Core Team. R: A Language and Environment for Statistical Computing. , R Foundation for Statistical Computing. Vienna, Austria. (2015).
  21. Ramanathan, G., Sales, C. M., Shieh, W. K. Apendix:Simultaneous autotrophic denitrification and nitrification in a low-oxygen reaction environment. Water Science & Technology. 70 (4), 729-735 (2014).
  22. Wastewater Management Fact Sheet - Energy Conservation. 832F06024, Environmental Protection Agency. Washington, DC. 1-7 (2006).
  23. Curtis, T. P. Ch 13. Environmental Biotechnology. Mitchell, R., Gu, J. D. , Wiley-Blackwell. (2010).
  24. Asada, K. THE WATER-WATER CYCLE IN CHLOROPLASTS: Scavenging of Active Oxygens and Dissipation of Excess Photons. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol. 50, 601-639 (1999).
  25. Mullineaux, P., Karpinski, S. Signal transduction in response to excess light: getting out of the chloroplast. Curr Opin Plant Biol. 5 (1), 43-48 (2002).
  26. Mallick, N., Mohn, F. H. Reactive oxygen species: response of algal cells. Journal of Plant Physiology. 157 (2), 183-193 (2000).
  27. Fridovich, I. Oxygen toxicity: a radical explanation. J Exp Biol. 201 ((Pt 8)), 1203-1209 (1998).
  28. Doyle, S. M., Diamond, M., McCabe, P. F. Chloroplast and reactive oxygen species involvement in apoptotic-like programmed cell death in Arabidopsis suspension cultures. J Exp Bot. 61 (2), 473-482 (2010).
  29. Eisma, D., et al. Suspended-matter particle size in some West-European estuaries; part II: A review on floc formation and break-up. Netherlands Journal of Sea Research. 28 (3), 215-220 (1991).
  30. Thomas, D. N., Judd, S. J., Fawcett, N. Flocculation modelling: A review. Water Research. 33 (7), 1579-1592 (1999).
  31. Harris, R. H., Mitchell, R. The role of polymers in microbial aggregation. Annu Rev Microbiol. 27, 27-50 (1973).
  32. Raszka, A., Chorvatova, M., Wanner, J. The role and significance of extracellular polymers in activated sludge. Part I: Literature review. Acta Hydrochimica Et Hydrobiologica. 34 (5), 411-424 (2006).
  33. Lakaniemi, A. M., Intihar, V. M., Tuovinen, O. H., Puhakka, J. A. Growth of Dunaliella tertiolecta and associated bacteria in photobioreactors. J Ind Microbiol Biotechnol. 39 (9), 1357-1365 (2012).
  34. Lakaniemi, A. M., Intihar, V. M., Tuovinen, O. H., Puhakka, J. A. Growth of Chlorella vulgaris and associated bacteria in photobioreactors. Microb Biotechnol. 5 (1), 69-78 (2012).
  35. Natrah, F. M. I., Bossier, P., Sorgeloos, P., Yusoff, F. M., Defoirdt, T. Significance of microalgal-bacterial interactions for aquaculture. Reviews in Aquaculture. 6 (1), 48-61 (2014).
  36. Dittami, S. M., Eveillard, D., Tonon, T. A metabolic approach to study algal-bacterial interactions in changing environments. Mol Ecol. 23 (7), 1656-1660 (2014).
  37. Watanabe, K., et al. Symbiotic association in Chlorella culture. FEMS Microbiol Ecol. 51 (2), 187-196 (2005).
  38. Burke, C., Thomas, T., Lewis, M., Steinberg, P., Kjelleberg, S. Composition, uniqueness and variability of the epiphytic bacterial community of the green alga Ulva australis. ISME J. 5 (4), 590-600 (2011).
  39. Krohn-Molt, I., et al. Metagenome survey of a multispecies and alga-associated biofilm revealed key elements of bacterial-algal interactions in photobioreactors. Appl Environ Microbiol. 79 (20), 6196-6206 (2013).
  40. Cooper, E. D., Bentlage, B., Gibbons, T. R., Bachvaroff, T. R., Delwiche, C. F. Metatranscriptome profiling of a harmful algal bloom. Harmful Algae. 37, 75-83 (2014).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Роман биореактор для высокой плотности Выращивание разнородных микробных сообществ
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.