Методическая статья

Intra-подвздошной артерией Инъекции для эффективного и селективного моделирования Микроскопическое костными метастазами

DOI:

10.3791/53982

26 сентября 2016 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этой рукописи подробно описана процедура инъекции внутриподвздошной артерии (IIA), техника доставки раковых клеток конкретно в ткани задних конечностей, включая кости, для установления экспериментальных метастазов в кости. Несмотря на то, что первоначально этот протокол был разработан для моделей опухолей молочной железы, его можно легко распространить на другие типы рака.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Инъекция внутриподвздошной артерии (ИИИ) является эффективным подходом к введению метастатических поражений различных раковых клеток у животных. По сравнению с широко используемыми внутрисердечными и внутрибольшеберцовыми инъекциями, инъекции ИБИ имеют ряд преимуществ. Во-первых, он может доставлять большое количество раковых клеток конкретно в кости задних конечностей, тем самым обеспечивая пространственно-временные синхронизированные события колонизации на ранних стадиях и обеспечивая надежную количественную оценку и быстрое обнаружение диссеминированных опухолевых клеток. Во-вторых, он вводит раковые клетки в кровоток, не повреждая местные ткани, тем самым предотвращая воспалительные и ранозаживляющие процессы, которые затрудняют процесс колонизации костей. В-третьих, инъекция ИИА вызывает очень слабый рост метастазов в некостных органах, тем самым предотвращая развитие других жизненно важных метастазов у животных и позволяя непрерывно контролировать вялотекущие повреждения костей. Эти преимущества особенно полезны для изучения прогрессирования от одиночных раковых клеток к многоклеточным микрометастазам, что в прошлом было в значительной степени неуловимо. В сочетании с передовыми подходами биологической визуализации и гистологии костей инъекции IIA могут применяться для различных исследовательских целей, связанных с метастазами в кости.

Введение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Метастазы приходится более 90% случаев смерти, вызванных солидных опухолей. Кость является наиболее распространенным органом, пострадавших от метастазов различных видов рака, особенно рака молочной железы и рака простаты. Когда поставлен диагноз в клинике, метастазы в кости, как правило, уже вошли в продвинутую стадию либо с остеолитических или остеобластов изменений в костной ткани, часто сопровождается неврологической симптоматикой.

Предыдущие исследования в основном сосредоточены на откровенных остеолитических костных метастазов 1-3, однако мы в настоящее время имеют ограниченное понимание микрометастаз в костях до начала процесса остеолитического. Это, по крайней мере, частично из-за отсутствия соответствующих экспериментальных моделей и подходов. Генетически сконструированные мышиные модели рака молочной железы часто метастазирует в легкие, но гораздо менее эффективно для костей 4. Аналогично, ортотопически пересаженные опухоли развиваются редко спонтанные метастазы в кости, с некоторыми кости тропических 4Т1 молочных желез carcinomсуб-клоны и MSP избыточно экспрессируется PyMT трансгенной мышиной модели как исключения 5-7. Intra-большеберцовый бурение может доставить раковые клетки до костей 8-10, но он также получает повреждения и воспаление местных тканей. В настоящее время внутри сердца инъекции линии клеток рака молочной железы был основным подходом к расследованию кости колонизацию 11-13. Тем не менее, после того, как раковые клетки вводят в левый желудочек лишь ограниченную часть, наконец, достигнет кости и костный мозг, что делает его трудно отслеживать микроскопические метастазы в измеримой моды.

В данном исследовании мы устанавливаем технику, а именно внутри подвздошной артерии (IIA) раствор для инъекций 14, чтобы передавать раковые клетки в ткани задней конечности, тем самым обогащая раковые клетки в кости и костного мозга , не причиняя ущерба местным тканям. Из-за специфичности кости, такой подход также позволяет достаточно времени для индолентными раковых клеток, чтобы в конечном счете колонизировать до ANimals поддаваться первичных опухолей или метастазов в других жизненно важных органов. В сочетании с различными другими способами, такими как биолюминесценции визуализации, иммунофлуоресцентного окрашивания и гистоморфометрии кости, IIА инъекции является потенциально полезным для широкого круга научных целей, связанных с костными метастазами, особенно для отслеживания прогресса в направлении от одиночных раковых клеток к многоканальному клетки микрометастазов. В частности, мы показали, что ИВР инъекции позволяет визуализировать взаимодействия между раковыми клетками и различными типами окружающих клеток в костном микросреды.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все для животных работа была проделана в соответствии с руководящими принципами по уходу за животными в Бейлор медицинского колледжа.

1. Подготовка сотового

Примечание: Различные линии раковых клеток могут быть использованы для МИС инъекции в зависимости от целей исследования. Мы использовали клеточные линии рака молочной железы MCF7, 4T1, 4T07, MDA-MB-361, MDA-MB-231, MDA-MB-436 и линия клеток рака простаты C4-2 в нашем исследовании. Обычно мы используем как GFP- и люциферазы светлячка меченных раковые клетки для нашего исследования и показать некоторые данные здесь из GFP-люциферазы-меченой клеточной линии MCF7.

  1. Поддержание клеток в среде DMEM , содержащей 10% FBS и 0,1 мг / мл пенициллина-стрептомицина , при 37 ° С в 5% CO 2.
  2. Перед IIA инъекции, Trypsinize клетки на 80 - 90% слияния с 0,25% -ным раствором / ЭДТА трипсина. Использование холодной PBS, чтобы промыть клетки дважды, и вновь приостановить клеток в 10 мл PBS для подсчета клеток. Для того, чтобы удалить PBS, центрифуга клетки при 800 мкг в течение 5 мин.
  3. Повторное приостановить клеткипри концентрации 5 × 10 6 клеток / мл в охлажденном льдом PBS.
  4. Используйте 100 мкл GFP- и люциферазы светляков-меченых раковые клетки для IIA инъекции одной мыши.
    Примечание:. Таким образом, число клеток , полученных у каждого животного составляет 5 х 10 5 Это число , возможно , потребуется , чтобы быть изменен на основе агрессивностью клеточных линий.
  5. Держите клеточные суспензии на льду.
    Примечание: Вибрации могут быть необходимы для предотвращения агрегации клеток каждые несколько минут, пока он не будет готов к инъекции. Для некоторых клеточных линий (например, MDA-MB-231), более строгие процедуры (например, проходя через ячейки фильтра 45 мкм) могут быть необходимы для предотвращения агрегации. Обратите внимание, что забивают сосудов может вызвать некроз тканей, и, следовательно, не оправдав эксперименты.

2. Подготовка животных

  1. Для лечения боли на животных, дают 5 мг / кг / день карпрофен (или другой анальгетик) с биологически активной добавки к мышам не менее 24 ч до операции. администрироватьв дозе 0,1 мг / мл бупренорфин подкожно 60 мин до операции. Примечание: необязательная процедура имплантировать эстрадиола поддон в задней части животных, чтобы обеспечить дополнительное эстрадиол. Это ускорит выросшее от ER + раковых клеток (например, MCF-7 клеток) 9.
  2. Обезболить 4 - в возрасте 6 недель мышь (примерно 20 г) с кетамином (80 - 100 мг / кг) и ксилазина (10 -12,5 мг / мл) путем внутрибрюшинной инъекции.
  3. Подтвердить соответствующий уровень седации 20 г мыши по носке и щепоткой наблюдения снижения частоты дыхания на 50% и розовые слизистые оболочки (например, кожи мыши уха и лапа кожи). Держите мониторинг этих жизненно важных признаков каждые 15 минут во время операции. Примечание: Ни один движение животного не указывает на то, что животное достаточно наркозом и готов к операции.
  4. Используйте ветеринара мазь на глаз, чтобы предотвратить сухость кожи.
  5. Бритье мыши на нижней части живота, особенно правой паховой области, где хирургия и инъекции будетпроисходит.
    Примечание: В этом нет необходимости, если используются бестимусных голых мышей.
  6. Положите мышь на спине разведите ноги в своих естественных позиций и придерживаться пальцы на мобильный рассечение картона с лентой.
  7. Протрите правой паховой области с 70% изопропилового этанол смоченные стерильным ватным тампоном, а затем с бетадин хирургической скраб несколько раз.

3. Общие подвздошной вены и артерии Место и Разделение

  1. Сделать кожу надрезать 1,0 - 1,2 см длиной между 4 - м и 5 - м сосками в нижней правой части живота , используя стерильные, # 10 углерода лезвия стали скальпель удерживаемых в № 3 ручки. Затем используют стерильные хирургические драпировка для покрытия тела животного, за исключением участка разреза.
  2. Переместить животное на стандартный стенд сверху рассечение микроскопом. Используйте увеличение в 4 раза для инъекций.
  3. Под 4-кратным увеличением рассечение микроскопа, вставить тупые щипцов разделения между жировой тканью и peritoneuм, и раздвинуть ткани наружу с обеих сторон , чтобы выставить подвздошных сосудов и нервов (см рисунок 1).
    Примечание: артерии между аортой от средней линии и нижней части ветвей артерии называется общей подвздошной артерии. Это где инъекции происходит.
  4. Используйте одну пару прямых тонких щипцов прорвать соединительной ткани (например, мембраны) между судами и нерва, ближе к сосудам.
  5. Переключение прямых тонких щипцов в левую руку. Возьмите пару наклонных тонких щипцов, используя правую руку. Вставьте правую руку щипцов в текущем же положении, в котором были разбиты соединительной ткани. И затем придерживаться правильных щипцов руку через, под сосуды.
  6. В то же время, вставить левую руку щипцов в соединительной ткани на левой стороне сосудов для руководства правой руки пинцет, проходящие через.
  7. После того, как правая рука Щипцы получает под сосуды, пытаются отделить суда от окружающих тиСГУП немного больше, а затем держать их на вершине правой руки щипцов.
  8. Используйте левую щипцов для рук, чтобы доставить кончик 4-0 шелковой нити к правой руке пинцетом, а затем потяните нить осторожно и медленно через под сосуды. Примечание: В настоящее время обе общие вены и артерии сосуды вознесен швом (рисунок 2).

4. Инъекции и после инъекции Care

  1. Подготовка клетки для инъекций в 31 G инсулиновый шприц. С помощью 100 мкл суспензии клеток в PBS на инъекцию. Убедитесь в том, чтобы пипеткой вверх и вниз несколько раз, чтобы отделить клетки и избежать агрегации, так что введенные клетки не засоряют и блокируют кровоток.
  2. С помощью угловых пинцетом в левой руке, положить щипцов под судов по руководством шовного материала, а затем откройте две руки пинцета, имея сосуды проводятся осторожно пинцетом.
    Примечание: Интервал между двумя рукавами пинцетом будет ясайт njection.
  3. Держите 31 G иглу 100 мкл суспензии клеток в правой руке, со скосом иглы вверх, готовый для инъекций.
  4. Вставьте иглу в просвет артерии (кровь будет ввести кончик иглы). Затем надавите клеточную суспензию медленно вводить клетки. Суспензию клеток оттолкнет красной крови в сосуде. Постарайтесь, чтобы не сломать сосуды или утечки суспензии клеток вне.
  5. Когда впрыск закончен, осторожно потяните назад иглу и продолжайте удерживать сосуды вверх на левой руке пинцетом, чтобы остановить кровотечение. Затем отодвигать швом.
  6. Отодвигать левый пинцетом руки, и быстро использовать ватный тампон, чтобы нажать на область разреза артерии, чтобы остановить кровотечение.
    Примечание: Как правило, 5 - 10 мин постоянное давление достаточно, чтобы остановить кровотечение.
  7. Когда кровотечение останавливается, использовать клей кожи, чтобы закрыть кожу края области хирургии. Сделать ушной тег, и проверьте биолюминесценции сигнализации для изучения распределения инжектированных клеток. <бр /> Примечание: Успешная инъекция приведет к изображение , похожее на рисунок 3.
    1. Проверить сигнализацию биолюминесценции путем инъекции 100 мкл 15 мг / мл в PBS люциферин при 75 мг / кг концентрации мыши через внутри орбитального синуса.
      1. Для внутридневных-орбитальным инъекции, положил пальцы на обеих сторонах глаза мыши, использовать давление, чтобы сделать глаз мяч слегка выскочить из рамы глаза, вкладыш 28 G иглы инсулиновый шприц между глазного яблока и носа, а затем медленно толкать шприц, чтобы впрыснуть люциферин ,
        Примечание: При правильном положении, игла должна быть в состоянии достигнуть глубину 2 - 3 мм до попадания твердых тканей (кости).
      2. Поместите мышь в системе формирования изображения в естественных условиях для всего животного изображения в течение 10 - 60 секунд в течение 5 минут (смотрите рисунок 3).
        Примечание: Необязательное процедура имплантировать эстрадиола гранул в заднюю часть животных, чтобы обеспечить дополнительное эстрадиол. Это позволит ускорить рост ER + раковых клеток (например, MCF-7клетки) 15.
  8. Оставьте мышь на теплую грелку, пока он не просыпается. Монитор кровотечение, отек, признаки зияние и боли во время послеоперационного периода. Положите мышей обратно в клетку с покрытием болеутоляющего (carprofin диетическая добавка рекомендуется) не дается для лечения боли, пока никаких признаков боли. Обратите особое внимание и заботу к животным в течение 7 дней после операции.

5. Мониторинг роста Метастатическим

  1. Гистоморфометрия:
    1. Урожай несущих опухоль костной ткани, фиксируют кости в 4% параформальдегида в течение 24 ч, затем декальцинировать их в рН 7,0 14% раствор ЭДТА в течение 3 - 5 дней, и подвергать их в парафин , как описано выше 14.
    2. Раздел парафиновые-встраивать костные ткани при толщине 3 мкм и выполнить стандартный гистологический метод гематоксилин / эозином , как описано выше 14.
  2. Immunohistochemisпытаться:
    1. Тема парафин подшипник опухоль кости скользит по иммуногистохимии окрашивания для различных целей , как описано выше 14. Вкратце, immunostain раковых клеток MCF7 анти-GFP антитела и immunostain остеогенных клеток (пре-остеобластов и остеобластов) анти-Osterix антител и анти-щелочной фосфатазы (ALP) антител, соответственно.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

На рисунке 1 показана анатомическое расположение и взаимосвязь общей подвздошной артерии (красный) и вены (синий).

На рисунке 2 показано относительное положение подвздошных сосудов и нервов при рассечение микроскопии. Как показано на рисунке 2А, сосуды и нервы прямо под брюшной стенкой и может быть раскрыта после того , как разрез кожи и брюшины отталкивается. Общей подвздошно...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Хотя только подвздошной артерии является мишенью для инъекций для раковых клеток, мы рекомендуем разделение обеих подвздошной вены и артерии от окружающих тканей, а также поднять их вместе в виде пучка. Это происходит потому, что вены и артерии широко контактируют друг с другом, и венозной стенки сосуда тонкая и легко сломать. Таким образом, для успешной инъекции, он экономит время и усилия, чтобы задержать два судна вместе, хотя раковые клетки вводят только в артерии. 4-0 шелковый шов используется , чтобы помочь этому ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Исследования в лаборатории Чжана проводились при поддержке X. H.-F. Z. NCI CA151293, CA183878, Фонд исследования рака молочной железы, Министерство обороны США DAMD W81XWH-13-1-0195, награда пилота CA149196-04, Медицинский институт Макнейра и Министерство обороны США H.W. DAMD W81XWH-13-1-0296.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Materials
DMEMHyCloneSH30022.01
FBSGibco16000
Pen/Strep Amphatericin BLonza Biowhittaker17-745E
PBSLonza Biowhittaker17-516F
Trypsin/EDTA растворHyCloneSH30042.01
45 μ М-клеточный фильтрVWR International Laboratory195-2545
MediGel CPF с карпрофеном Контролируемый предмет от ветеринарной помощи в BCMДля обезболивания
Бупренорфин Контролируемый предмет от ветеринарной службы в BCMДля обезболивания
Эстрадиол в гранулахИнновационные исследования АмерикиSE-121
Кетамин и ксилазинКонтролируемый предмет от ветеринарной помощи в BCM
Ветеринарная мазьКонтролируемый предмет от ветеринарной помощи в BCMИзбегайте сухости глаз
БритваOster78005-050Для пушистые мыши
ИзопропилэтанолACROS67-63-0
Бетадин хирургический скрабКонтролируемый предмет из ветеринарной помощи в скальпелевых лезвиях BCM
#10Ted Pella, Inc549-3CS-10Множественная
ручка No 3Ted Pella, Inc541-31Необходимо автоклавировать
Стерильная хирургическая простыняSai Infusion TechnologyPSS-SD1
Прямой щипцы Хирургический инструмент RobozRS-5132Необходимо автоклавирование
Прямые тонкие щипцыИнструменты для тонкой науки11253-20Необходимо автоклавирование
Тонкие щипцы с краямиИнструменты для тонкой науки11253-25Необходимо автоклавирование
4-0 Шелковый шов VicrylJohnson & Johnson Health CareJ214H
31 г инсулиновые шприцыBD328418Многократные
ватные палочки ватные палочки (стерильные)VWR International Laboratory89031-272
Клей для кожиHenry Schein Animal Health31477Для закрытия кожи в месте операции
Аппликатор ушных бирокFine Science Tools24220-00
Ушные биркиFine Science Tools24220-50
D-люциферинGold BiotechnologyLUCKИзбегайте света и положите на лед
инсулиновые шприцы 28 гBD329410Для внутриорбитального введения
ParaformadehydeAlfa Aesar30525-89-4Для фиксации тканей
EDTAOmniPur4050Для декальфикации костной ткани
< strong>Название<strong>Company>Номер в каталогеКомментарии
Оборудование
Dissection микроскопLeicaLeica S6E стерео
IVIS Lumina II Система визуализацииAdvanced Molecular Vision
Name<strong>CompanyНомер в каталогеКомментарии
>Антитела
Anti-GFP антитела (JL-8)Clontech632381
Анти-ALP антителаAbcamab108337
Anti-Osterix антителаAbcamab22552

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kang, Y., et al. A multigenic program mediating breast cancer metastasis to bone. Cancer cell. 3 (6), 537-549 (2003).
  2. Lu, X., et al. VCAM-1 promotes osteolytic expansion of indolent bone micrometastasis of breast cancer by engaging alpha4beta1-positive osteoclast progenitors. Cancer cell. 20 (6), 701-714 (2011).
  3. Ell, B., Kang, Y. SnapShot: Bone Metastasis. Cell. 151 (3), 690-690 (2012).
  4. Kretschmann, K. L., Welm, A. L. Mouse models of breast cancer metastasis to bone. Cancer Metastasis Rev. 31 (3-4), 579-583 (2012).
  5. Lelekakis, M., et al. A novel orthotopic model of breast cancer metastasis to bone. Clin Exp Metastasis. 17 (2), 163-170 (1999).
  6. Rose, A. A., et al. Osteoactivin promotes breast cancer metastasis to bone. Mol Cancer Res. 5 (10), 1001-1014 (2007).
  7. Welm, A. L., et al. The macrophage-stimulating protein pathway promotes metastasis in a mouse model for breast cancer and predicts poor prognosis in humans. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (18), 7570-7575 (2007).
  8. Li, X., et al. Loss of TGF-beta Responsiveness in Prostate Stromal Cells Alters Chemokine Levels and Facilitates the Development of Mixed Osteoblastic/Osteolytic Bone Lessions. Mol. Cancer. Res. 10 (4), 494-503 (2012).
  9. Gregory, L. S., Choi, W., Burke, L., Clements, J. A. Breast Cancer Cells Induce Osteolytic Bone Lesions In vivo through a Reduction in Osteoblast Activity in Mice. PLoS ON. 8 (9), e68103(2013).
  10. Waning, D. L., et al. Excess TGF-β mediates muscle weakness associated with bone metastases in mice. Nat Med. 21 (11), 1262-1271 (2015).
  11. Simmons, J. K., et al. Animal Models of Bone Metastasis. Vet Pathol. 52 (5), 827-841 (2015).
  12. Werbeck, J. L., et al. Tumor microenvironment regulates metastasis and metastasis genes of mouse MMTV-PymT mammary cancer cells in vivo. Vet Pathol. 51 (4), 868-881 (2014).
  13. Xiang, J., et al. CXCR4 Protein Epitope Mimetic Antagonist, POL5551, Disrupts Metastasis and Enhances Chemotherapy Effect in Triple Negative Breast Cancer. Mol Cancer Ther. 14 (11), 2473-2485 (2015).
  14. Wang, H., et al. The osteogenic niche promotes early-stage bone colonization of disseminated breast cancer cells. Cancer Cell. 27 (2), 193-210 (2015).
  15. Hoffmann, J., et al. Characterization of new estrogen receptor destabilizing compounds: effects on estrogen-sensitive and tamoxifen-resistant breast cancer. J Natl Cancer Inst. 96 (3), 210-218 (2004).
  16. Tannehill-Gregg, S. H., Levine, A. L., Nadella, M. V., Iguchi, H., Rosol, T. J. The effect of zoledronic acid and osteoprotegerin on growth of human lung cancer in the tibias of nude mice. Clin Exp Metastasis. 23 (1), 19-31 (2006).
  17. Slyfield, C. R., Tkachenko, E. V., Wilson, D. L., Hernandez, C. J. Three-Dimensional Dynamic Bone Histomorphometry. J Bone Miner Res. 27 (2), 486-495 (2012).
  18. Koba, W., Jelicks, L. A., Fine, E. J. MicroPET/SPECT/CT imaging of small animal models of disease. Am J Pathol. 182 (2), 319-324 (2013).
  19. Simmons, J. K., et al. Canine prostate cancer cell line (Probasco) produces osteoblastic metastases in vivo. Prostate. 74 (13), 1251-1265 (2014).
  20. Amend, S. R., et al. Thrombospondin-1 regulates bone homeostasis through effects on bone matrix integrity and nitric oxide signaling in osteoclasts. J Bone Miner Res. 30 (1), 106-115 (2015).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

RNA Seq

Похожие статьи