Методическая статья

Чистый отбор проб и анализ реки и эстуарии для изучения следов металлов

DOI:

10.3791/54073

⸱

1 июля 2016 г.

 ,  , 
1Department of Oceanography, National Sun Yat-sen University, 2Institute of Oceanography, National Taiwan University, 3Taiwan Ocean Research Institute, National Research Laboratories, 4Department of Oceanography and Marine Sciences, Texas A&M University at Galveston

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Требуется особая осторожность с использованием "чистых методов" для правильного сбора и обработки проб воды для исследований следов металлов в водной среде. Представлен протокол отбора проб, обработки и аналитических процедур с целью получения достоверных данных мониторинга окружающей среды и результатов с высокой чувствительностью для детальных исследований микропримесей металлов.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Большинство концентраций следов металлов в окружающих водах, полученных несколько десятилетий назад, считались ненадежными из-за отсутствия контроля загрязнения. Разработка некоторых методов, направленных на снижение загрязнения микропримесями металлов в последние пару десятилетий, привела к тому, что концентрации, о которых в настоящее время сообщается, на порядки ниже, чем в прошлом. Эти низкие концентрации часто обуславливают необходимость предварительного концентрирования проб воды перед инструментальным анализом проб. Поскольку загрязнение может появиться на всех этапах анализа микропримесей, включая сбор проб (и во время подготовки контейнеров для отбора проб), хранение и обращение, предварительную обработку и инструментальный анализ, необходимо проявлять особую осторожность для снижения уровня загрязнения на всех этапах. Усилия по разработке и использованию «чистых методов» в исследованиях микропримесей металлов позволяют ученым более подробно исследовать распределение следов металлов, а также химическое и биологическое поведение. Это усовершенствование также обеспечивает необходимую точность и прецизионность данных о микропримесях металлов, что позволяет соотнести условия окружающей среды с концентрацией следов металлов в водной среде.

В этом протоколе, представленном здесь, подробно описаны необходимые материалы для подготовки образцов, сбора образцов, предварительной обработки образцов, включая предварительную концентрацию, и инструментального анализа. За счет снижения загрязнения на всех вышеупомянутых этапах анализа на микропримеси металлов можно достичь гораздо более низких пределов обнаружения и, следовательно, точности. Эффективность «чистых методов» дополнительно демонстрируется с использованием заготовок с низким полем и хорошим извлечением для стандартного эталонного материала. Таким образом, качество данных позволяет оценить распределение микропримесей металлов и их связь с параметрами окружающей среды.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Было Общепризнанно , что некоторые результаты трассировки металла , полученные для природных вод могут быть неточными из - за артефактов , возникающих из неадекватных методов , применяемых в процессе сбора проб, обработки и определения 1,2. Реальная концентрация (в суб-нМ до диапазона нМ в поверхностных водах 3) растворенных следов металлов в настоящее время до двух порядков ниже , чем предполагалось ранее опубликованных значений. Такая же ситуация была обнаружена в морской химии, где принятые растворенные следовые концентрации металлов в водах океана уменьшились на несколько порядков в течение последних 40 лет или около того, как улучшается отбор проб и аналитические методы были введены. Были предприняты усилия для повышения качества данных с разработками «чистых методов» , направленных на снижение или устранение загрязнения следов металла на всех этапах анализа следов металла 4-8. Для определения концентрации следов металлов при температуре окружающей средыУровни, концентрирование часто требуется. Ионообменные методы 8-12 были широко применяются для эффективного предконцентрации.

Заражение может возникать из стенок контейнеров, очистка контейнеров, отбор образцов, обработки проб и хранения, а также сохранение и анализа образцов 7,13. Все исследования с использованием методов чистого , проведенные в последнее время, показывают , что концентрации следов металлов в природных водах , как правило , значительно ниже пределов обнаружения обычных методов 7. Поскольку признание подозрительных данных следов металлов в начале 1990 - х годов, чистые методы были включены в US EPA (Агентство по охране окружающей среды) Руководящие принципы для определения 14 следов металлов и Геологическая служба США приняла чистые методы их мониторинга качества воды проектов 15. Чистые методы исследования следов металлов необходимо применять во всех проектах, с тем чтобы создать прочную и точную базу данных.

В принципе, пробы воды, используемые для определения следов металлов следует собирать с соответствующими шестернями для отбора проб конкретного материала и композиции, хранится и обрабатывается должным образом с использованием соответствующих контейнеров и устройств, прежде чем приступать к инструментальному анализу. Так как взвешенные частицы (SPM) могут подвергаться изменениям в течение периода хранения проб и изменения состава воды, быстрое отделение ВОП из проб воды является обычной практикой для изучения следов металлов в водной среде. Для определения концентраций растворенных следов металлов в природных водах, фильтрация необходима и рядный методы пригодны для фильтрации и эффективной.

Распределение и поведение следов металлов в водных средах , таких как поверхностные и грунтовые воды могут быть затронуты естественными (например, погодным условиям ) и антропогенные (например, сбросы сточных вод) факторы, а также другие условия окружающей среды, такие как ренального геологии, морфология, использование земли и растительности, и климат 16-19. Это может затем привести к различиям в физико - химических параметров , таких как концентрации взвешенных частиц (SPM), растворенного органического углерода (DOC), антропогенные лигандов (например, этилендиаминтетрауксусной кислоты, ЭДТА), соль, окислительно - восстановительный потенциал и рН 17-20. Таким образом, точные и соответствующие исследования следов металлов требуют соответствующего сбора образцов для анализа следов металлов, а также для определения соответствующих факторов и параметров.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Пробоотборник Подготовка

  1. пробоотборник
    1. Сборку пробоотборник
      1. Подключите длинный фторированный этилен-пропилен (FEP) трубки 4 м (ID 0,635 см, наружным диаметром 0,95 см или аналогичный) к 1,5-м химически стойкого силикона насосной трубки (OD 0,635 см).
      2. Вставьте полипропилен Y-соединитель в насосную трубку, и подключить насосную трубку 50 см в одну розетку, а также капсулы 0,45 мкм фильтр (Вливая трубкой 20 см) до другого.
      3. Соберите тюбинги в чистой комнате (скамейки) после того, как они очищаются (смотрите ниже), и сохраните сборку в два слоя полиэтиленовых пакетов.
    2. чистка Sampler
      1. Fill (путем присоединения 1,5-м насосной трубки на шланговый насос) комплекта трубок с лабораторным раствором моющего средства и замочить его в течение 24 часов. Промойте трубки установить деионизованной водой, затем залейте его 10% (об / об) HCl (х.ч.) и выдержите в течение 48 часов.
      2. Тщательно промыть трубки набор с деионизованной шАтера несколько раз, и хранить сборку в полиэтиленовых пакетах. Очистите Y-разъемы и короткие насосные трубы путем замачивания их в 50% (об / об) HNO раствор 3 (х.ч.) в течение 24 ч.
    3. Капсульные фильтры
      1. Очистить фильтры капсульного сначала спуская их с деионизированной водой, а затем 10% (об / об) раствора HCl в течение стадии замачивания 48-ч.
      2. После кислотной замачивания, промойте фильтры с деионизированной водой и добавляют 1 мл 21% (вес) раствора NH 4 OH (суб-вареные) в каждый фильтр , чтобы нейтрализовать кислоту.
      3. Уплотнение индивидуальный фильтр с петлей 30 см очищенную-насосной трубки, соединяющей вход и выход, а также хранить в полиэтиленовых мешках на молниях.
  2. контейнеры для проб
    1. Использование полиэтилена (PE, 1000 мл) и FEP (500 мл и 1000 мл) бутылок для контейнеров для определения следов металлов.
      1. Очистите бутылки путем замачивания их в первую очередь в производстве моющих средств (1%), то в 50% (об / об) HNO 3(Х.ч.) и 10% растворы (об / об) раствор HCl (х.ч.) в течение 24, 48 и 24 ч, соответственно, и ополоснуть бутылки с деионизированной водой между двумя ваннами шагами.
      2. После окончательной замачивания HCl, ополоснуть бутылки тщательно деионизованной воды (DIW) и высушить бутылки (с крышкой) запечатанные в чистом помещении или класс-100 чистой скамейке.
      3. Уплотнительные Очищенные бутылки в полиэтиленовые мешки молниями и двойной мешок их в полиэтиленовые мешки для транспортировки.
    2. Чистые стеклянные бутылки для растворенного органического углерода (DOC) определения
      1. Замочите янтарного боросиликатного стеклянные бутылки (40 мл) для анализа растворенного органического углерода (DOC), в 10% HCl в течение 48 часов. Ополосните очищенные стеклянные бутылки с деионизованной водой, и сгорает их при 480 ° С в течение 2 часов перед использованием. Уплотнение бутылки индивидуально в молниях полиэтиленовые мешки для транспортировки.

2. Отбор проб

  1. Сбор образцов воды
    1. Upoп прибытие на месте отбора проб, метки идентификации образца номер на внешней сумке, и держать бутылки в их оригинальные сумки.
    2. На берегу реки или на лодке, есть один человек открыть сумку с пробоотборником и прикрепите 4-м FEP трубки к 3-м полипропиленовой полюсу (очищенную). Продлить полюс, как далеко от берега, насколько это возможно и держать входное отверстие трубки FEP приблизительно 30 см ниже поверхности проточной речной воды до того, как насос включен.
    3. Есть еще один человек прикрепить насосную трубку к головке насоса перистальтического насоса (насоса для отбора проб с внутренними батареями). Включите насос и слить воду (вниз по течению сторона) по меньшей мере, в 3 раза от общего объема сэмплер. Нанести на неопудренных перчатки и открыть сумку бутылок и колпачков, чтобы начать заполнение образца бутылки.
      1. В качестве альтернативы, если другой человек есть в наличии, есть третье лицо будет отвечать за открытия внутренних мешков, а также образцы крышек, а также проведение трубки отбора проб, который истощает образец в Ьottle.
    4. Сбор нефильтрованного образца в 125 мл пластиковой бутылки для измерения проводимости, температуры и рН в полевых условиях.
    5. Сбор отфильтрованные пробы (500 мл или 1000 мл для сбора пробы твердых частиц) первого (через выпускное отверстие без фильтра), а затем закрыть отверстие с пластиковым зажимом, чтобы заставить воду проходить через фильтр-капсула для сбора отфильтрованной пробы воды (1 -L для растворенного определения следов металлов).
    6. Сбор отфильтрованных выборок (через выпускное отверстие с фильтром) в 40-мл из янтарного стекла бутылки для DOC и ЭДТА измерений.
    7. Сбор образцов воды при скорости потока приблизительной 500 мл / мин до 1000 мл / мин. Заменить капсульные фильтры, когда давление начинает расти (в соответствии со спецификацией фильтров.Сильно). Для каждого типа образца, собирать дополнительные образцы, а также полевые заготовки, в выбранных местах, чтобы служить в качестве контроля качества аликвоты.
    8. Поместите стеклянные бутылки 40 мл на сухом льду и хранили Iп лед в груди, и полиэтиленовые бутылки в ледяных сундуков.
  2. Сбор твердых взвешенных частиц (SPM)
    1. Сбор SPM на 0,4 мкм из поликарбоната (PC) (мембранные фильтры промывают кислотой и предварительно взвешивали) путем вакуумной фильтрации, используя пластиковую воронку фильтрации и сосуд.
    2. Замораживание сухие мембранные фильтры в лаборатории до получения концентрации СЗМ и предоставить образцы частиц для определения частиц следов металла.

3. пробоподготовки (Растворенный следовых количеств металлов)

  1. Для определения растворенного следов металла, добавляют 2 мл концентрированного суб-вареные HNO 3 (на 1 л пробы) в бутылку для образца. Передача растворенного образцы следов металлов (подкисленной) в FEP бутылки. С другой стороны, образцы могут быть собраны непосредственно в FEP бутылки. УФ-облучения образцов в FEP бутылках в течение 24 часов (8 15 Вт УФ лампы).

4. концентрирование и лечение для анализа следов металлов

  1. концентрирование смолы
    1. Взвешивают 2 г катионообменной смолы в небольшую (10-30 мл) емкость пластиковую чашку и добавить небольшое количество 2 3 н раствора HNO в чашку. Налить смолу в колонку емкость хроматографии на 10 мл. Очистите смолы путем промывания колонки 5 мл 2 N HNO 3 (суб-вареные) дважды, и смыть водой высокой степени чистоты (HPW) 3 раза.
    2. Добавляют 10 мл 1 М NH 4 OH (суб-вареные) в колонну , чтобы превратить смолу в NH 4 + -форме.
  2. Буферный раствор (1 М ацетат аммония)
    1. Добавьте 57 мл ледяной уксусной кислоты (суб-вареные) в приблизительно 800 мл HPW. Добавить ~ 60 мл раствора гидроксида аммония (21%, к югу от вареной) и смешивают с уксусной кислотой. Настраивают конечный рН до 5,5, и конечный объем до 1000 мл.
  3. Процедура концентрирование (растворенных следов металлов)
    1. Доводят рН подкисленный, УФ-облученных образцов до 5,5 ± 0,3 добавлением 30 мл 1 М аммоний AceTели буферный раствор , а некоторые (~ 2,8 мл) NH 4 OH (суб-вареные) в образцах.
    2. Поместите бутылку образца ~ 30 см выше колонку, наполненную катионной смолой (раздел 4.1) и соедините бутылку образца и столбец концентрирование на ~ 60 см FEP трубки и хроматографического крышкой и разъем (женский Luer).
    3. Контроль скорости потока на 3-5 мл / мин с использованием 2-ходовой кран, соединенный над колонной. Разрешить образцы пройти через колонки концентрирование. После того, как образцы прошли колонку, отсоедините трубки и крышки из колонн.
    4. Treat столбцы с 2 х 5 мл HPW и 4 х 5 мл 1 М ацетата аммония (рН 5,5) и 2 х 5-мл HPW отделить основные катионы других следов металлов.
    5. Поместите PE флакон 30 мл кислоты, промывают чуть ниже колонку и колонку промывают 7 х 1 мл 2 N HNO 3 (суб-вареные) в бутылку PE.
    6. Определить объем 2 N HNO 3 стоков (~ 8,0 мл), получая вес ай удельный вес 2 N HNO 3 сточных вод.
  4. Переваривание взвешенных частиц
    1. Замораживание сухих фильтров ПК с образцами СЗМ и взвесить их после сушки. Место образцы СЗМ, с фильтрами, в предварительно взвешенную перфторалкоксиалкан алканов (PFA) судов (60 мл емкости) и добавляют 3 мл концентрированной HNO 3 в сосуды.
    2. Затянуть сосуды с постоянным крутящим моментом 2,5 кг-м, а затем гидролизовали в обычной печи при 130 ° С в течение 12 часов. После охлаждения, откройте сосуды и добавляют 2 мл HF в сосуды.
    3. Затянуть сосуды с постоянным крутящим моментом 2,5 кг-м, а затем гидролизовали в обычной печи при 130 ° С в течение 12 часов. После охлаждения открыть сосуды и добавить 16 мл 4,5% раствора борной кислоты в сосуды.
    4. Затянуть сосуды с постоянным крутящим моментом 2,5 кг-м, и переваривают в обычной печи при температуре 130 ° С в течение 12 часов. Взвешивание каждого судна и определить удельный вес каждого раствора дайджестас получением конечного объема дайджеста.
    5. Вычислить коэффициент разбавления для каждого гидролизата от конечного объема и веса SPM на фильтре (конечный объем переваривать, деленной на массу образца на фильтре).

5. Анализ проб

  1. Микроэлементы металлы
    1. Определение следов металлов (Cd, Co, Cu, Fe, Mn, Ni, Pb и Zn) концентрации в предварительно концентрированного растворенного образца и раствора от частиц с использованием пламенной атомной абсорбционной спектрометрии, графитовой печи атомно-абсорбционной спектрометрии, и / или индуктивно-связанной плазмой масс-спектрометр.
    2. Определить основные концентрации ионов и некоторых следов металлов, в подвыборках нарисованных перед концентрирование и сборниках в виде взвешенных частиц, с помощью индуктивно связанной плазмой атомно-эмиссионной спектрометрии.
  2. Вспомогательные параметры
    1. Определить образец температуры, рН, солености и проводимости в области, с использованием портативных устройств.
    2. Определение растворенного илиГанич углерода (DOC) концентрации углеродной анализатор общего органического, основанный на мокром окислении с обнаружением диоксида углерода с помощью инфракрасной спектрометрии 21. Определить общую концентрацию EDTA с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (с детектором SPD-M10AV Diodearray) в соответствии с установленными процедурами 22,23.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

С развитием и использованием "чистых методов", теперь хорошо известно, что для того, чтобы получить точные концентрации следов металлов в окружающей воде, концентрирование микропримесей металлов в водах образцов является обычной практикой. В то время как большинство критериев качества воды для следов металлов в природных водах находятся в диапазоне низких мкг / л, более низкие пределы обнаружения необходимы для исследования геохимических и биологических эффектов на следовых металлов в ко...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Получение достоверных данных следов металлов в природных водах требует большой осторожности, как подчеркивалось в ходе сбора проб, обработки, предварительной обработки и анализа, направленных на уменьшение загрязнения. Трассировка концентрации металлов в природных водах, полученных с использованием "чистых" методов в последние два десятилетия установлено, что концентрации могут быть на несколько порядков ниже, чем сообщалось ранее. Критерии качества воды для следов металлов в водах теперь более легко определит...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

У авторов нет конфликта интересов, который можно было бы раскрыть.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы благодарят докторов Бобби Дж. Пресли, Роберта Тейлоя, Пола Бута, мистера Брайана Браттина и мистера Майка Меткалфа за их помощь во время кропотливого полевого отбора проб и лабораторной работы для практической разработки и применения "чистых методов".

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Азотная кислотаSeastar ChemicalsБазовая марка
гидроксида аммонияSeastar ChemicalsБазовая марка
Уксусная кислота SeastarChemicalsБазовая марка
азотной кислоты J. T. Baker9601-05Марка реагента
Соляная кислотаJ. T. Baker9530-33Марка
Хроматографические колонкиBio-Rad7311550 Поли-Преп
Колпачки колоннBio-Rad7311555
Разъемы колпачков (гнездовые люэры)Bio-Rad7318223
2-х ходовые запорные краныBio-Rad7328102
Катионообменная смолаBio-Rad1422832 Челекс-100
Портативный пробоотборник (насос для отбора проб)Cole PalmerEW-07571-00
FEP ТрубкаCole PalmerEW-06450-076,4 мм внутренний диаметр, внешний диаметр 9,5 мм
Трубка для сцеживанияCole PalmerEW-06424-246,4 мм I.D. C-Flex
Капсульный фильтр (0,4 мм)Fisher ScientificWP4HY410F0полипропиленовый корпус
1 л Бутылка из полиэтилена низкой плотностиNALGE NUNC INTERNATIONAL312088-0032
1 л (или 500 мл) Бутылка FEPNALGE NUNC INTERNATIONAL381600-0032
реагента

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Taylor, H. E., Shiller, A. M. Mississippi River Methods Comparison Study: Implications for water quality monitoring of dissolved trace elements. Environmental Science and Technology. 29, 1313-1317 (1995).
  2. Windom, H. L., Byrd, J. T., Smith, R. G., Huan, F. Inadequacy of NASQAN data for assessing metal trends in the nation's rivers. Environmental Science and Technology. 25 (6), 1137-1142 (1991).
  3. Mason, R. P. Trace Metals in Aquatic Systems. , Wiley-Blackwell. (2013).
  4. Wen, L. -S., Santschi, P., Gill, G., Paternostro, C. Estuarine trace metal distributions in Galveston Bay: importance of colloidal forms in the speciation of the dissolved phase. Marine Chemistry. 63, 185-212 (1999).
  5. Wen, L. -S., Stordal, M. C., Tang, D., Gill, G. A., Santschi, P. H. An ultraclean cross-flow ultrafiltration technique for the study of trace metal phase speciation in seawater. Marine Chemistry. 55, 129-152 (1996).
  6. Benoit, G. Clean technique measurement of Pb, Ag, and Cd in freshwater: A redefinition of metal pollution. Environmental Science and Technology. 28, 1987-1991 (1994).
  7. Benoit, G., Hunter, K. S., Rozan, T. F. Sources of trace metal contamination artifacts during collection, handling, and analysis of freshwater. Analytical Chemistry. 69 (6), 1006-1011 (1997).
  8. Jiann, K. -T., Presley, B. J. Preservation and determination of trace metal partitioning in river water by a two-column ion exchange method. Analytical Chemistry. 74 (18), 4716-4724 (2002).
  9. Fardy, J. J. Preconcentration Techniques for Trace Elements. Alfassi, Z. B., Wai, C. M. , CRC Press. 181-210 (1992).
  10. Pai, S. -C. Pre-concentration efficiency of Chelex-100 resin for heavy metals in seawater. Part 2. Distribution of heavy metals on a Chelex-100 column and optimization of the column efficiency by a plate simulation method. Analytica Chimica Acta. 211, 271-280 (1988).
  11. Pai, S. -C., Fang, T. -H., Chen, C. -T. A., Jeng, K. -L. A low contamination Chelex-100 technique for shipboard pre-concentration of heavy metals in seawater. Marine Chemistry. 29, 295-306 (1990).
  12. Pai, S. -C., Whung, P. -Y., Lai, R. -L. Pre-concentration efficiency of Chelex-100 resin for heavy metals in seawater. Part 1. Effects of pH and salts on the distribution ratios of heavy metals. Analytica Chimica Acta. 211, 257-270 (1988).
  13. Salbu, B., Oughton, D. H. Trace Elements in Natural Waters. Salbu, B., Steinnes, E. , CRC Press. 41-69 (1995).
  14. U.S. Environmental Protection Agency. Method 1669. Sampling ambient water for trace metals at EPA Water Quality criteria levels. , 30 U.S. Environmental Protection Agency. Washington, D.C. Available from: https://www3.epa.gov/caddis/pdf/Metals_Sampling_EPA_method_1669.pdf (1996).
  15. Horowitz, A. J., et al. Problems associated with using filtration to define dissolved trace metal concentrations in natural water samples. Environmental Science and Technology. 30, 954-963 (1996).
  16. Cortecci, G., et al. Geochemistry of trace elements in surface waters of the Arno River Basin, northern Tuscany, Italy. Applied Geochemistry. 24 (5), 1005-1022 (2009).
  17. Markich, S. J., Brown, P. L. Relative importance of natural and anthropogenic influences on the fresh surface water chemistry of the Hawkesbury-Nepean River, south-eastern Australia. The Science of the Total Environment. 217, 201-230 (1998).
  18. Shafer, M. M., Overdier, J. T., Hurley, J. P., Armstrong, D., Webb, D. The influence of dissolved organic carbon, suspended particles, and hydrology on the concentration, partitioning and variability of trace metals in two contrasting Wisconsin watersheds (U.S.A.). Chemical Geology. 136, 71-97 (1997).
  19. Warren, L. A., Haack, E. A. Biogeochemical controls on metal behaviour in freshwater environments. Earth-Science Reviews. 54, 261-320 (2001).
  20. Jiann, K. -T., Santschi, P. H., Presley, B. J. Relationships between geochemical parameters (pH, DOC, SPM, EDTA Concentrations) and trace metal (Cd, Co, Cu, Fe, Mn, Ni, Pb, Zn) concentrations in river waters of Texas (USA). Aquatic Geochemistry. 19 (2), 173-193 (2013).
  21. Peltzer, E. T., et al. A comparison of methods for the measurement of dissolved organic carbon in natural waters. Marine Chemistry. 54, 85-96 (1996).
  22. Nowack, B., Kari, F., Hilger, S. U., Sigg, L. Determination of dissolved and adsorbed EDTA species in water and sediments by HPLC. Analytical Chemistry. 68 (3), 561-566 (1996).
  23. Bergers, P. J. M., de Groot, A. C. The analysis of EDTA in water by HPLC. Water Research. 28 (3), 639-642 (1994).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи