Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Характеристика человека моноцитов дендритные клетки путем обработки изображений проточной цитометрии: Сравнение между двумя моноцитов Isolation протоколов

13.7K просмотров

DOI:

10.3791/54296

18 октября 2016 г.

В этой статье

Краткое содержание

В этом исследовании сравниваются два различных метода выделения моноцитов человека для получения in vitro дендритных клеток (ДК). Моноциты отбираются путем адгезии или отрицательно обогащаются магнитной сепарацией. Выход и жизнеспособность моноцитов, а также жизнеспособность MDDC, пролиферацию и экспрессию поверхностных маркеров CD11c/CD14 будут сравниваться между обоими методами.

Аннотация

Дендритные клетки (ДК) — это антигенпрезентирующие клетки иммунной системы, которые играют решающую роль в реакциях лимфоцитов, защитных механизмах хозяина и патогенезе воспаления. Выделение и изучение ДК имеют важное значение в биологических исследованиях из-за их отличительных особенностей. Несмотря на то, что ДК являются важными ключевыми медиаторами иммунной системы, они очень редко встречаются в крови, составляя примерно 0,1 - 1% от общего количества мононуклеарных клеток крови. Таким образом, альтернативы методам выделения основаны на дифференцировке ДК из моноцитов, выделенных из мононуклеарных клеток периферической крови (ПМЦ). Использование надлежащих методов изоляции, сочетающих в себе простоту, доступность, высокую чистоту и высокую производительность клеток, является обязательным для рассмотрения. В настоящем исследовании будут сравнены два различных метода генерации ДК. Моноциты отбирали путем адгезии или отрицательно обогащали с помощью процедуры магнитной сепарации с последующей дифференцировкой в ДК с IL-4 и GM-CSF. Жизнеспособность, пролиферацию и фенотип моноцитов и MDDC оценивали с помощью красителей на жизнеспособность, анализа МТТ и анализа поверхностных маркеров CD11c/CD14 с помощью визуализационной проточной цитометрии. Несмотря на то, что метод магнитной сепарации позволил получить значительно более высокий процент моноцитов с более высокой пролиферативной способностью по сравнению с методом адгезии, результаты продемонстрировали способность обоих методов одновременно генерировать моноциты, способные пролиферировать и дифференцироваться в жизнеспособные CD11c+ MDDC после семи дней в культуре. Оба метода дали > 70% CD11c+ MDDC. Таким образом, наши результаты дают понимание, которое способствует разработке надежных методов выделения и определения характеристик ДК человека.

Введение

Дендритные клетки (ДК) являются важными медиаторами врожденной и адаптивной системы иммунитета. Они действуют, чтобы вызвать первичные иммунные реакции и способствуют развитию иммунологической памяти. Эти клетки в первую очередь ответственны за захват антигена, миграции и стимуляции Т - клеток и, следовательно , называют профессиональных антиген - представляющих клеток (АРС) 1 .Manipulation ДК могут быть использованы в самых различных областях исследований и в клинических условиях для лечения различных воспалительных заболеваний , таких как ВИЧ , 6,7, рак 8, аутоиммунные заболевания 9, а также аллергические реакции 10.....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

В целом исследования крови человека были рассмотрены и одобрены Советом по институциональному (IRB) ПФР, IRB протокол утверждения # IRB-13-0440. Человеческие leukopaks были приобретены у банковского сообщества крови в Майами, штат Флорида.

1. Выделение МКПК с помощью стандартной плотности Gradient Technique

  1. Выполните 1: 1 разбавление крови с 1х-фосфатно-буферном солевом растворе в колбе Т75.
  2. Пипетка 15 мл раствора градиента плотности в 50 мл центрифужные пробирки и тщательно слой (25 - 30 мл / трубка) разведенной крови над этим градиентом.
  3. Центрифуга в течение 20 мин при 1200 х г с ускорением 1 и замедления ....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Моноцитов Выход магнитной сепарацией выше по сравнению с моноцитов Выход по методу ПРИСОЕДИНЕНИЯ

Данные , представленные на рисунке 1 отображения РВМС и подсчета клеток моноцитов с помощью трипанового синего методом исключения в день изоляции МНПК и разделения моноцитов. В среднем, моноциты, выделенные методом прилипания составляли примерно 6,2 процента от общего объема .......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

На основании известных трудностей выделения и генерации MDDCs из человеческой крови, настоящее исследование с целью обеспечить всестороннее сравнение двух хорошо известных методов для генерации MDDCs. Первый способ по сравнению является хорошо установленный традиционный способ генерации MDDCs за счет использования способности моноцитов прилипать к стеклу или пластмассы (метод спаек) 21,22,27. Метод прилипание является быстрым и экономически эффективным, и не требует использования сложного оборудования. Тем не.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Все авторы не раскрывают конкурирующих финансовых интересов.

Благодарности

Это исследование поддержано Национальным институтом злоупотребления алкоголем и алкоголизма, премия K99/R00 AA021264. Дополнительная лабораторная поддержка в рамках стартового пакета была получена от Департамента иммунологии, Института нейроиммунной фармакологии, Медицинского колледжа Герберта Вертхайма и FIU - Управления исследований и экономического развития. Джанна Кастелейро выступила при поддержке NIH/NIGMS R25 GM061347. Ответственность за содержание лежит исключительно на авторах и не обязательно отражает официальную точку зрения Национальных институтов здравоохранения.

....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Ficoll-PaqueGE Healthcare17-5442-03Необходимо использовать в RT
Фосфатно-солевой буфер (PBS)Life Technologies10010-023
ACK Лизирующий буферQuality Biological118-156-101
RPMI 1640 mediumLife Technologies22400-089
Антибиотик-антимикотик (100x)Life Technologies15240-062
Фетальная бычья сыворотка (FBS)Life Technologies16000-044
RoboSep буферStemCell20104
EasySep Набор для обогащения моноцитов человекаStemCell19059
TC20 Автоматизированный счетчик клетокBio-Rad145-0101
FITC-DextanSigma AldrichFD4-100MG
Трипановая синяя морилка (0.4%)Life Technologies15250-061
Synergy 2 многорежимный считывательBiotek7131000
XTT Биореагент на основе натриевой соли (XTT)Sigma AldrichX4626-100MG
Биореагент диметилсульфоксид (DMS)Sigma AldrichD8418-500ML
Тиазолил синий тетразолия бромид (MTT)Sigma Aldrichm5655-500MG
Додецилсульфат натрия (SDS)Bio-Rad161-0302
Феназина метосульфат (ДМСО)Sigma AldrichP9626-1G
Инактивированный (HI) Сыворотка крови человекаChemicon S1-100ML
Accuri C6 Проточный цитометрBD Accuri653119
FlowSight Amnis Проточный цитометрEMDMillipore 100300

Ссылки

  1. Cella, M., Sallusto, F., Lanzavecchia, A. Origin maturation and antigen presenting function of dendritic cells. Curr Opin Imunol. 9, 10-16 (1997).
  2. Banchereau, J., et al. Immunobiology of Dendritic Cells. Ann Rev Immunol. 18, 767-811 (2000).
  3. Banchereau, J., Stein....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Генерация дендритных клетокмагнитная сепарацияметод адгезиианализ CD11c и CD14мононуклеарные клетки периферической кровидифференцировка человеческих моноцитовоценка жизнеспособности и пролиферациианализ единичных клеток