Методическая статья

Непрерывный волновой тулиевый лазер для нагревательных клеток, предназначенных для исследования клеточных тепловых эффектов

7.4K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/54326

⸱

30 июня 2017 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Biomedical Optics, University of Luebeck, 2Medical Laser Center Luebeck GmbH, University of Leubeck, 3Department of Ophthalmology, University of Luebeck

В этой статье

Краткое содержание

Здесь вводится оригинальная экспериментальная установка для нагрева клеток в культуральной чаше с использованием лазерного излучения непрерывной волны 1,94 мкм. Используя этот метод, можно исследовать биологические реакции эпителиальных клеток эпителия сетчатки (РПЭ) после различных термических воздействий.

Аннотация

Здесь вводится оригинальный метод нагрева культивируемых клеток с использованием непрерывного волнового лазера с непрерывной волной 1,94 мкм для биологической оценки. Тулиевое лазерное излучение сильно поглощается водой, а клетки на дне культуральной чашки нагреваются посредством тепловой диффузии. Лазерное волокно диаметром 365 мкм устанавливается около 12 см над культуральной чашкой без какой-либо оптики, так что диаметр лазерного луча почти эквивалентен внутреннему диаметру культуральной тарелки (30 мм). Сохраняя постоянное количество культуральной среды в каждом эксперименте, можно облучать клетки с сильно воспроизводимым повышением температуры.

Для калибровки увеличения температуры и ее распределения в одной чашке для культивирования клеток для каждой установки мощности измеряли температуру в течение 10 с облучения в разных положениях и на клеточном уровне. Распределение температуры было представлено с использованием программного обеспечения для математической графикиПрограмма, и ее образец в блюде культуры был в гауссовой форме. После лазерного облучения можно было провести различные биологические эксперименты для оценки зависимых от температуры реакций клеток. В этой рукописи вводится окраска жизнеспособности ( т. Е. Различение живых, апоптотических и мертвых клеток), чтобы помочь определить пороговые температуры для апоптоза клеток и смерти после разных точек времени.

Достоинствами этого метода являются точность температуры и времени нагрева, а также ее высокая эффективность в нагревании ячеек в блюде культуры целых клеток. Кроме того, он позволяет проводить исследования с широким диапазоном температур и продолжительности времени, которые могут быть хорошо контролируемыми компьютеризированной операционной системой.

Введение

Понимание зависимых от температуры клеточных биологических реакций имеет большое значение для успешного лечения гипертермии. Лазерная фотокоагуляция сетчатки с термическим лазером, используемая в офтальмологии, является одним из наиболее известных методов лечения лазеров в медицине. Видимый свет, в основном от зеленой до желтой длины волны, используется при лазерной обработке сетчатки. Свет сильно поглощается меланином в эпителиальных клетках сетчатки сетчатки (РПЭ), которые образуют внешний клеточный монослой сетчатки. Недавно среди врачей и исследователей был интерес к очень мягкому термическому облучению (субвидимая фотокоагуляция) в качестве новой терапевтической стратегии для различных видов нарушений сетчатки 1 , 2 . Следуя этой тенденции, наш интерес заключается в подсолевом нагревании клеток RPE при точном контроле температуры, методе терморегулируемой фототермической терапии (TC-PTT).

Недавний оптАкустическая технология нашего института позволила измерять повышение температуры в реальном времени на облученных участках сетчатки. Это позволяет контролировать увеличение температуры при облучении 3 . Однако, поскольку сублетальная гипертермия на сетчатке, вызванная нагреванием клеток РПЭ подлето, ранее не рассматривалась из-за невозможности измерения и контроля температуры, зависящие от температуры реакции клеток клеток РПЭ после термического лазерного облучения Были очень мало изучены до настоящего времени. Кроме того, не только различие температур не обсуждалось подробно, но также и разница в поведении клеток выживших клеток после сублетального и летального облучения. Поэтому, чтобы собрать научные данные о методах, основанных на ТС-РТТ, мы стремимся выяснить связанные с температурой биологические реакции клеток РПЭ и их механизмы, используя экспериментальные установки in vitro .

Для tЕго цель, необходимо установить установку нагрева ячейки, которая удовлетворяет следующим условиям: 1) возможность быстрого повышения температуры, 2) точно контролируемое время и температура и 3) относительно большое количество исследованных клеток для биологических экспериментов , Что касается метода нагрева, то, к сожалению, для нагрева клеточной культуры клейкий лазер, такой как лазер Nd.YAG с частотным удлинением (532 нм), не подходит. Это связано с сильно уменьшенным числом меланосом в культивируемых клетках RPE. Поглощение лазерного света может быть неоднородным, и повышение температуры на клеточном уровне является переменным между экспериментами, даже при облучении той же мощностью излучения. В нескольких предыдущих исследованиях сообщалось об использовании черной бумаги под днищем тарелки во время облучения 4 или использовании дополнительных меланосом, фагоцитированных клетками культуры до экспериментов 5 , 6 . Многие изБиологические исследования in vitro для оценки гипертермических реакций клеток проводились с использованием горячей плиты, водяной бани или инкубатора CO 2 с установлением температуры 7 . Эти методы требуют длительного периода нагрева, так как для достижения желаемой температуры требуется некоторое время ( т. Е. Несколько минут). Кроме того, используя эти методы, трудно получить подробную температурную историю ( т. Е. Температуру, умноженную на время) на клеточном уровне. Более того, температура между клетками в разных положениях в одной блюде культуры может отличаться из-за переменной температурной диффузии. В большинстве случаев эта временная и пространственная информация о температуре во время гипертермии не была принята во внимание для биологических анализов, даже если реакция биологических клеток может быть критически затронута температурой и продолжительностью времени повышенной температуры.

Чтобы преодолеть эти проблемы,Для нагрева ячеек использовался тюль-лазер с непрерывной волной. Тулиевое лазерное излучение (λ = 1,94 мкм) сильно поглощается водой 8 , а клетки на дне культуральной чашки термически стимулируются исключительно за счет тепловой диффузии. Лазерное волокно диаметром 365 мкм установлено примерно на 12 см выше чашки для культивирования, без какой-либо оптики между ними. Диаметр лазерного луча расходится так, что он почти эквивалентен внутреннему диаметру культуральной чашки (30 мм) на поверхности культуральной среды. При постоянном количестве культуральной среды можно облучать клетки с повышением температуры Высокой повторяемости. Переменные параметры мощности позволяют облучать до 20 Вт, а температура среды на клеточном уровне может быть увеличена до ΔT ≈ 26 ° C за 10 секунд.

Модифицируя условия облучения, можно также изменить профиль лазерного луча, чтобы изменить распределение температурыНа блюде культуры. Например, можно исследовать гауссовское распределение температуры, как в текущем исследовании, или с однородным распределением температуры. Последнее может быть выгодным для исследования эффектов зависимых от температуры реакций на клетки более конкретно для повышения уровня смертности, а не для стресса со смертельным исходом или реакции заживления ран.

В целом облучение тулиевым лазером может позволить исследовать различные виды биологических факторов, таких как экспрессия гена / белка, кинетика смерти клеток, клеточная пролиферация и развитие функциональных свойств клеток после различных термических воздействий.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Культура клеток RPE

  1. Выделение клеток РПЭ из глаз свиней
    1. Получите свежевыраженные глаза с свиней с местной бойни. Держите их прохладно (4 ° C) и в темной среде.
    2. Удалите внеклеточные ткани с помощью ножниц и промойте глаза в антисептическом растворе в течение 5 мин.
    3. Поместите глаза в стерилизованный забуференный фосфатом физиологический раствор без кальция и магния (PBS (-)) до использования.
    4. Используя скальпель, пронизывайте склеру примерно на 5 мм позади лимбомы роговицы. Резекция всей передней части глаза, разрезая ножницами на всем пути, параллельно роговице лимба.
    5. Удалите переднюю часть глаза ( то есть роговицу и линзу) и стекловидное тело. Добавьте 1 мл PBS (-) и осторожно удалите нервную сетчатку.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Эта «глазная чаша», состоящая из склеры, хориоидов и RPE, теперь готова.
    6. Добавить предварительно нагретый (37 ° C) 0,25% трипсин в PBS (-) в глазную чашку. Отрегулируйте громкость таким образом, чтобы около 80% чашки для глаз заполняли этим раствором трипсина.
    7. Инкубируйте глазную чашку с раствором трипсина в 5% -ном инкубаторе СО 2 при 37 ° С в течение 10 мин.
    8. Удалите глазную чашку из инкубатора и замените 0,25% раствор трипсина раствором PBS (-) с 0,05% трипсином + 0,2% этиленаминометауксусной кислоты тетранатриевой соли (EDTA · 4N). Инкубируйте глазную чашку в инкубаторе в течение 45 мин.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Через 45 минут клетки RPE будут либо просто прикреплены к мембране Бруха, либо уже отсоединены и будут перемещаться в растворе трипсин-ЭДТА.
    9. Собирайте клетки RPE, осторожно пипетируя. Соберите клетки и раствор в конической трубке, заполненной 10 мл культуральной среды (DMEM с высокой глюкозой с L-глутамином), включая 10% сыворотки свиньи, антибиотик / антимикотик и пируват натрия (1 мМ).
      ПРИМЕЧАНИЕ. Сыворотка может нейтрализовать действие трипсина.
    10. ЦентрифугаКлеточной суспензии при 400 мкг в течение 5 мин при комнатной температуре.
    11. Удалите супернатант и добавьте 10 мл свежей среды. Центрифуга снова при тех же условиях в течение 5 мин.
    12. Удалите супернатант и добавьте новую среду, так что концентрация клеток приводит к 5 × 10 5 клеток / мл (определяется путем подсчета клеток с использованием гемоцитометра). Хорошо перемешать, осторожно пипетируя.
    13. Распределите клеточную суспензию в блюдах культуры клеток. Используйте 3 мл на культуральную чашку диаметром 60 мм.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Эта культура называется прохождением нуля (P0).
    14. Поддерживайте клетки в 5% -ном инкубаторе CO 2 при 37 ° C. Изменяйте половину кондиционированной среды на свежую среду каждый второй день.
    15. Субкультура (шаг 1.2), если она становится конфлюэнтной.
  2. Субкультура культуры клеток RPE
    1. Удалите культуральную среду и промойте клетки дважды PBS (-).
    2. Инкубируйте клетки с PBS (-) раствором с 0,05% трипсином + 0,2% ЭДТА iNa 5% CO 2 инкубатор при 37 ° C в течение 5 мин.
    3. Отделите клетки RPE осторожной пипетированием и соберите суспензию клеток в конической трубке, наполненной 10 мл культуральной среды, включая 10% сыворотки свиньи.
    4. Центрифугируют клеточную суспензию при 400 мкг в течение 5 мин при комнатной температуре.
    5. Удаляют супернатант и добавляют новую культуральную среду, делая концентрацию клеток 5 · 10 5 клеток / мл (определяется путем подсчета числа клеток с помощью гемоцитометра). Распределите ячейки в новых культуральных чашках диаметром 60 мм, как описано в шаге 1.1.13.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Культура клеток теперь проходит через 1 (P1).
    6. После достижения слияния субкультура культуры P1 до P2, используя ту же процедуру, что и на этапах 1.2.1-1.2.5. Из культуры P2 высевают клетки на более мелкие культуральные блюда (внутренний диаметр 30 мм) вместо культуральных блюд диаметром 60 мм.
    7. Для экспериментов используйте культуры P2 или P3.

2. ТулЛазерное облучение ium

  1. Строительство станции облучения
    1. Подключите устройство тулиевого лазера (1,94 мкм, диапазон мощности: 0-20 Вт) к волокну диаметром сердцевины 0,22-NA, 365 мкм.
    2. Механически зафиксируйте наконечник волокна металлическим кронштейном, который горизонтально закреплен на вертикальной металлической стойке станции облучения. Поместите вертикальную стойку таким образом, чтобы кончик лазерного волокна располагался над горячей плитой, на которой должна быть размещена чашка для культивирования клеток во время облучения.
    3. Положите белую бумагу на горячую плиту и включите луч направленного света (λ = 635 нм, макс = 1 мВт, диаметр на уровне бумаги ≈ 30 мм). Отметьте окружность направляющей балки на белой бумаге так, чтобы было известно положение, в которое должна быть размещено блюдо для культивирования во время облучения.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Z-плоскость наконечника волокна может быть изменчивой. Без какой-либо дополнительной оптической оптики диаметр лазерного пятна на плоскости культуры клеток, расположенный на 12 см ниже наконечника волокна, iПримерно 30 мм, что почти эквивалентно внутреннему диаметру чашки для культивирования клеток. Схематический чертеж установки показан на рисунке 1 .

figure-protocol-1
Рисунок 1: Схематическое изображение станции облучения тулиевым лазером. На нагревательную плиту помещают блюдо для культивирования. Ячейки размещены на 12 см ниже наконечника тонкого лазерного волокна, так что размер пучка почти идентичен внутреннему диаметру культуральной чашки (около 30 мм). Процедура лазерного облучения контролируется регулируемой по времени процедурой пользовательской системы проектирования системы. Настройка мощности должна определяться до запуска программы облучения. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

    Лазерное облучение клеточной культуры
    1. За 1 ч до облучения полностью замените культуральную среду 1,2 мл свежей среды.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Это КРИТИЧЕСКИЙ ШАГ, и его необходимо строго соблюдать.
    2. Поместите облучательную станцию ​​( то есть, горячую пластину и столбик для фиксации лазерного волокна) на чистую скамью.
    3. Удалите блюдо для культивирования клеток из инкубатора и поместите его в отмеченное положение на плите (шаг 2.1.3).
    4. Наденьте защитные очки. Включите тулиевый лазер. Установите мощность по желанию на лазерное устройство (с возможностью настройки от 0 до 20 Вт). Включите эмиссию.
    5. Запустите платформу системного проектирования, которая контролирует протокол лазерного облучения и синхронизации (дополнительный файл).
    6. Сразу же после помещения культуральной тарелки на горячую плиту нажмите «время предварительного нагрева», чтобы запустить таймер на 140 с («время предварительного нагрева 1»); Это будет поддерживать температуру питательной среды на уровне 37 ° C до облучения.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Через 140 секунд включается звуковой сигнал, и следующий таймер («время предварительного нагрева 2») автоматически начнет отсчет 8 секунд. В течение этого 8 секунд экзаменатор может открыть блюдо для культуры. После 148 секунд предварительного нагрева 10-длинное лазерное облучение на культуре клеток будет проводиться автоматически. В случае возникновения чрезвычайной ситуации оснастите лазерное устройство кнопкой принудительного закрытия, чтобы немедленно остановить лазер. Это КРИТИЧЕСКИЙ ШАГ, и его необходимо строго соблюдать. Особое внимание следует уделить открытию крышки блюда непосредственно перед облучением в начале 8-секундного времени предварительного нагрева. Открытие крышки может очень быстро охладить поверхность среды.
    7. После облучения немедленно положите крышку обратно на блюдо для культивирования, оставьте чашку для культивирования на горячей плите еще на 7 с и положите ее обратно в 5% -ный инкубатор CO 2 при 37 ° C.
  1. Измерение распределения температуры наКлеточный уровень (калибровка температуры)
    1. Сделайте небольшие отверстия (около 300 мкм в диаметре) близко к основанию с четырех сторон (каждые 90 °) культуральной чашки диаметром 30 мм (без ячеек); Используйте наконечник иглы (20G), нагретый горелкой Бунзена. Уплотните отверстия изоляционной изоляцией снаружи и сделайте небольшое отверстие тонкой иглой так, чтобы через это отверстие в водонепроницаемых условиях можно было вставить только тонкую термопару (диаметр 200 мкм).
    2. На внешней стороне дна культуры, нарисуйте 2 перпендикулярных диаметра и установите точку пересечения ( т. Е. Центр нижней стороны) в качестве нулевой координаты (0). Отметьте каждые 3 мм радиально наружу из блюда ( т. Е. 0, 3, 6, 9, 12 и 15 мм) в каждом направлении вдоль линий ( рис. 2 , синие точки); Количество очков должно составлять 21.
    3. Заполните блюдо для культивирования клеток 1,2 мл новой культуральной среды. Поместите культуру dИш на горячую плиту при 37 ° С, вставьте тонкую термопару (диаметр 200 мкм) в боковое отверстие и поместите ее чувствительный наконечник в измеренное положение.
    4. Наденьте защитные очки. Включите тулиевый лазер и вручную установите мощность (от 0 до 20 Вт с шагом 0,1 Вт) лазерного устройства.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Для калибровки температуры необходимо провести измерения с мощностью с шагом 3 Вт.
    5. Включите платформу проектирования системы и нажмите кнопку «Start Temp. Acquisition» (дополнительный файл), чтобы начать измерение температуры.
    6. Проделайте ту же процедуру, что и на шаге 2.2.6.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Программа управления измеряет температуру вставленной термопары каждые 100 мс и показывает прогрессирование температуры во время облучения в графическом интерфейсе.
    7. Проведите эти процедуры для всех 21 точки измерения и при разных параметрах питания. Повторите всю процедуру три раза для всех точек и для всех настроек мощностиGs для получения надежных данных.
    8. Экспортировать данные о температуре как данные csv, которые в конечном итоге могут быть преобразованы в электронную таблицу. Средняя максимальная температура в конце облучения для трех измерений в каждой точке. Средние значения из точек на одном круге (всего 4 балла, за исключением центральной точки).
    9. Постройте полученную усредненную максимальную температуру на графике, сделав расстояние от центра чашки (мм) в виде оси x и увеличения температуры (ΔT, ° C) в виде оси y. Используйте функцию соответствия математической программы для подгонки модели Гаусса к необработанным данным. Создайте распределение температуры по Гауссу.

figure-protocol-2
Рисунок 2: Точки для калибровки температуры в одной ячейке культуры. Температурные данные измеряли в центре и при 5Радиальные точки на 4 разных углах (синие точки). Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

3. Биологические оценки клеточных реакций после различных тепловых облучений

  1. Оценка жизнеспособности клеток ( т. Е. Живых, апоптотических и мертвых) после различных настроек мощности и определения порога смертности клеток
    1. В указанные моменты времени ( т. Е. Через 3, 24 и 48 ч после облучения) промывайте клетки PBS (-) и используйте коммерчески доступный комплект для оценки жизнеспособности клеток ( то есть жизненно важных, апоптозных, мертвых) в соответствии с протокол.
    2. Подготовьте окрашивающий раствор, добавив 5 мкл изотиоцианата флуоресцеина (FITC) -аннексина V, 5 мкл гомодимера III этидия и 5 мкл Hoechst 33342 до 100 мкл 1x связывающего буфера (все они являются наборамикомпоненты). Подготовьте достаточное количество окрашивающего раствора для покрытия клеток. Инкубируйте клетки в течение 15 мин.
    3. Вымойте культуру клеток с помощью связующего буфера дважды, замените связывающий буфер на PBS (-) и установите культуру на стадии флуоресцентного микроскопа.
    4. Переключите световой путь в окулярную линзу, выберите фильтр 4 ', 6-Diamidin-2-фенилиндол (DAPI), включите подсветку и найдите плоскость с прицелом 4x.
    5. Измените путь света к камере, найдите изображение на экране компьютера в программном обеспечении для обработки микроскопа и отрегулируйте фокус.
    6. Используйте функцию строчки ( т. Е. Функцию записи нескольких изображений по тарелке, а затем создайте одно крупное изображение) программного обеспечения, специфичного для микроскопа, для получения флуоресцентного изображения блюдо для всей клеточной культуры. Используйте 3 разных набора фильтров - DAPI, FITC и тетраметилборамин (TRITC) - к изображениям Hoechst 33342-положительных клеток (все клеточные ядра), FITC-аннексин V-positiVe (апоптоз) и III-позитивные клетки гомодимера этидия (мертвые), соответственно.
    7. Измерьте радиус (мм) мертвой (III-позитивной) гомодимера этидия и внешний / внутренний радиус области зонной формы (аннексин V-позитивный) в окрашенных клеточных культурах. Примените эти радиусы к установленной гауссовой функции распределения температуры для соответствующей настройки мощности. Вычислите точную температуру на краю мертвой или апоптотической области, чтобы уточнить пороговые температуры для гибели клеток и апоптоза.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Распределение температуры после различных настроек мощности

Все температурные изменения для каждого отдельного облучения контролировались при калибровке температуры. Из этих данных была получена максимальная температура в измеренной точке и определена как T max (° C). Как показано на фиг.3А , программа была выполнена в момент времени, когда блюдо для культуры было помещено на нагревательну...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

При обсуждении связанных с температурой биологических клеточных реакций важна не только температура, но также и продолжительность времени повышенной температуры, поскольку большинство биохимических процессов зависят от времени. В частности, в области лазерной гипертермии в офтальмологии из-за короткого промежутка времени - от миллисекунд до нескольких секунд - трудно исследовать клеточные тепловые эффекты с точным контролем температуры. Поэтому желательна установка лазерного облучения, подходящая для модели клеточной ку...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана грантом исследования Федерального министерства образования и исследований Германии (BMBF) (грант № 13GW0043C) и Европейского бюро аэрокосмических исследований и разработок (EOARD, грант # FA9550-15-1-0443)

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
<сильно>Реагенты
Дульбекко' s Модифицированный Eagle' s Средний - высокий уровень глюкозыSigma-AldrichD5796-500MLДобавить (2)-(4) перед использованием. Тепло в 37 градусов; C водяной баней перед использованием.
Антимикотический раствор антибиотика (100&раз;)Sigma-AldrichA5955-100MLСодержит 10 000 единиц пенициллина, 10 мг стрептомицина и 25 мкм; g Амфотерицин В в 1 мл. Добавьте 5,5 мл в средний флакон объемом 500 мл (1) перед использованием.
Пируват натрия (100 мМ)Sigma-AldrichS8636-100MLДобавьте 5,5 мл в средний флакон объемом 500 мл (1) перед использованием (конечная концентрация: 1 мМ)
Сыворотка для свинейSigma-Aldrich12736C-500MLДобавьте 50 мл в 500 мл среднего боттола (1) перед использованием (конечный: 10%)
Фосфатно-солевой буфер (PBS)Sigma-AldrichD8537-500ML
Трипсин из поджелудочной железы свиньиSigma-AldrichT4799-25G
Этилендиаминтетрауксусная кислота (ЭДТА)Sigma-AldrichED-100G
Человеческий VEGF Quantikine ELISA KitR& D SystemDVE00
Oxiselect Набор для анализа на общий глутатионCell Biolabs, IncSTA-312
Набор для обнаружения апоптотических/некротических/здоровых клетокPromoKinePK-CA707-30018
НазваниеCompanyНомер в каталогеКомментарии
Equipment
Thulium лазерStarmedtec GmbHПрототип0-20 Вт
365 мм диаметр сердечника волоконныеЛАЗЕРНЫЕ КОМПОНЕНТЫ ГерманияCF01493-52
ТермопараOmega Engineering IncHYP-0- 33-1-T-G-60-SMPW-M
Нагревательная пластинаMEDAX
Считыватель микропластин ( спектрофлуориметр)Молекулярное устройство: гомогенизатор клеток Spectramax M4
QIAGENTissueLyser LT
флуоресцентный микроскопNikonECLIPSE, Ti
математическая программаThe Mathworks. IncMATLAB Release 2015b
платформа для проектирования системNational InstrumentLabviewLaboratory Virtual Instrument Engineering Workbench
, , ,

Ссылки

  1. Inagaki, K., et al. Comparative efficacy of pure yellow (577-nm) and 810-nm subthreshold micropulse laser photocoagulation combined with yellow (561-577-nm) direct photocoagulation for diabetic macular edema. Jpn J Ophthalmol. 59 (1), 21-28 (2015).
  2. Roider, J., et al. Selective retina therapy (SRT) for clinically significant diabetic macular edema. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 248 (9), 1263-1272 (2010).
  3. Brinkmann, R., et al. Real-time temperature determination during retinal photocoagulation on patients. J Biomed Opt. 17 (6), 061219(2012).
  4. Yoshimura, N., et al. Photocoagulated human retinal pigment epithelial cells produce an inhibitor of vascular endothelial cell proliferation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 36 (8), 1686-1691 (1995).
  5. Denton, M. L., et al. Damage Thresholds for Exposure to NIR and Blue Lasers in an In Vitro RPE Cell System. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47 (7), 3065-3073 (2006).
  6. Shrestha, R., Choi, T. Y., Chang, W., Kim, D. A high-precision micropipette sensor for cellular-level real-time thermal characterization. Sensors (Basel). 11 (9), 8826-8835 (2011).
  7. Gao, F., Ye, Y., Zhang, Y., Yang, J. Water bath hyperthermia reduces stemness of colon cancer cells. Clin Biochem. 46 (16-17), 1747-1750 (2013).
  8. Jansen, E. D., van Leeuwen, T. G., Motamedi, M., Borst, C., Welch, A. J. Temperature dependence of the absorption coefficient of water for midinfrared laser radiation. Lasers Surg Med. 14 (3), 258-268 (1994).
  9. Iwami, H., Pruessner, J., Shiraki, K., Brinkmann, R., Miura, Y. Protective effect of a laser-induced sub-lethal temperature rise on RPE cells from oxidative stress. Exp Eye Res. 124, 37-47 (2014).
  10. Denton, M. L., et al. Spatially correlated microthermography maps threshold temperature in laser-induced damage. J Biomed Optics. 16 (3), (2011).
  11. Morgan, C. M., Schatz, H. Atrophic creep of the retinal pigment epithelium after focal macular photocoagulation. Ophthalmology. 96 (1), 96-103 (1989).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи