Методическая статья

Полевые эксперименты опыления экологии: Дело

11.5K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/54728

⸱

25 ноября 2016 г.

 , 
1Department of Biology, Chiba University

В этой статье

Краткое содержание

Для выявления эффективности опылителей данного вида растений, были разработаны несколько методов полевых экспериментов. Это исследование демонстрирует основные методы полевых экспериментов для опыления экологии , используя социологическое исследование Lycoris SANGUINEA вар. SANGUINEA и новый механизм опыления, разбивая-Буд опыления.

Аннотация

Взаимодействие растений и опылителей изучается уже около ста лет. За это время было разработано множество полевых методов для уточнения эффективности опыления каждого опылителя для посещаемых цветов. Наблюдения за опылителями были одним из наиболее распространенных методов идентификации опылителей, а эксперименты в мешках и садках проводились для демонстрации эффективности конкретных опылителей. В предыдущем исследовании Lycoris sanguinea var. sanguinea его эффективные опылители, частота посещений каждого цветочного посетителя и его репродуктивные стратегии не были идентифицированы. В этом исследовании сообщается о наблюдении, что маленькие пчелы посещали цветы, которые были частично раскрыты (ломающиеся бутоны). Насколько нам известно, ранее об этом явлении не сообщалось. Кроме того, в этом исследовании исследуется гипотеза о том, что маленькие пчелы могут опыляться на этой стадии цветения. В данной работе продемонстрированы основные методы натурных экспериментов по экологии опыления с использованием L. sanguinea var. sanguinea. Наблюдения за опылителями и цифровое видео показали частоту посещения каждого цветочного посетителя. Эксперименты в мешках и садках показали, что эти цветы могут быть полностью опылены и что опыление ломающимися бутонами может быть важным для опыления этого вида растений. Обсуждаются преимущества и недостатки каждого метода, а также описываются последние разработки, в том числе лабораторные эксперименты.

Введение

Завод-опылителей взаимодействия являются главными примерами для изучения эволюционной биологии и экологии. В мутуалистических отношения между цветами и опылителей , как полагают, способствует диверсификации покрытосеменных 1,2 в результате естественного отбора, хотя и другие биотические и абиотические факторы также оказали влияние 3,4,5. Также считается , что цветочные черты изменились , чтобы приспособиться к наиболее эффективных опылителей и производить больше плодов и семян 6. Эти убеждения были построены , хотя крупных исследований , основанных на различных показателей, таких как эффективность опыления, которые включают различные интерпретации 7.

Цветущие растения , которые обобщили системы опыления посещаются различными типами опылителей 8. Здесь цветок посетитель был определен как видов животных, которые посетили, чтобы получить цветочные награду, и опылители были определены как цветочные посетителей, которые опыляют.Некоторые из этих посетителей несут конспецифические зерна пыльцы стигматами цветов посещаемых и могут быть классифицированы как опылители. Другие посетители могут также иметь некоторые внутривидовую пыльцы; они могли бы проводить меньше опыление из-за поведенческих или морфологических несоответствия между опылителей и цветами. Эти различия в сравнимых вклад в воспроизводство растений может производить различную степень селективного давления на цветочные черты 9 и может привести к адаптивную дивергенцию цветущих растений. Поэтому, хотя состав опылителей сообщества и относительное обилие видов имеют важное значение 10, точная оценка эффективности каждого посетителя также имеет важное значение для определения адаптивных и / или эволюционные процессы растений.

В данном исследовании количественные оценки эффективности опылителей, которые определяются как фруктов и производства семян на частоте посещения, были определены 11. спецификациянаблюдались х годов и частота каждого цветочного посетителя, и репродуктивные эффекты на посещенных цветы были оценены. Запись цветочных посещений через человека наблюдений является классическим методом в опыления экологии. Тем не менее, этот метод налагает большую нагрузку на наблюдателей, которые должны оставаться в передней части растений и принять осторожные, долгосрочные измерения. В последнее время технологии съемок и записи быстро развивались, и недорогие цифровые видеокамеры позволили введение видеозаписи для опылителей наблюдений 12,13. Эти методы могут облегчить сбор базовой информации о цветочных посетителей и может способствовать развитию понимания опыления экологии одного вида целевого растения.

Тем не менее, при воздаянии частоты опылителей не обязательно коррелирует с их эффективность опыления 7,14, и важно , чтобы оценить качественные эффекты каждого опылительна цветок пригодности. Эффективность Опыление была оценена через количество пыльцевых зерен на Stigmata 15,16, 17,18 роста пыльцевой трубки и фруктов и / или производства семян 19,20. Bagging эксперименты, проводимые с использованием посетителей эксклюзивные сумки, типичные методы тестирования самосовме-, автогамии 21,22, а также наличие apomixes 23. Кроме того, оценка эффективности опыления для определенного опылителей в сборке посетителей было часто проводится в условиях , когда другие цветочные посетители были ограничены (т.е. проводная клетка, сетка, или мешок с сеткой достаточно мал , чтобы исключить большие опылителей , что является набор на цветущих растений). Например, были проведены эксперименты с расфасовки небольших мешков сетки , чтобы выявить опыления способность муравьев или трипсов 24,25. Кроме того, птица исключения эксперименты с использованием проводную клетку или сеть показали эффективные опылители таксонов алоэ26-28.

Цели данного исследования были: 1) ввести методы , используемые в предыдущей работе и 2) , чтобы улучшить эти методы для общего использования в других исследованиях на цветочных посетителей, их посещения частот, а также их влияние на растения пригодности Lycoris SANGUINEA вар.. SANGUINEA является одним из видов , включенных в род Lycoris, который распространяется по всей Японии широко и узко в Корее 29 и имеет форму воронки красновато-оранжевые цветы (рисунок 1а). Предыдущее исследование показало , что Л. SANGUINEA вар. SANGUINEA посетили нескольких видов насекомых, в том числе неопознанных мелких видов пчел и крупных видов Amegilla Флоря 29. Тем не менее, частоты посещения и опыление эффективность этих посетителей не было выявлено. Опылителей с наблюдения для идентификации цветочных посетителей были проведены в первую очередь. Visitation маленькими пчелами был OBSErved на цветы , которые еще не полностью открыты (разрывное почки; Фигуры 1b, с). Маленькие пчелы перемещены поспешно вокруг undehisced пыльников в преломлении бутонов и собирали пыльцу с использованием их челюстями. Гипотеза заключалась в том, что маленькие пчелы могут быть опылителей на стадии обкатки бутонами, поскольку разрыв между пыльников и стигматы в цветы были меньше, чем длина тела пчел. Поэтому Bagging были проведены эксперименты для проверки опыления способность маленьких пчел на стадии обкатки бутон, и дополнительно изучить репродуктивные стратегии L. SANGUINEA вар. SANGUINEA. Эти почки были после того, как в мешках маленьких пчел посещаемых, что позволило оценку опылении способности пчел. Лица были иммобилизованного с нераскрытых бутонов. Клетка малого сетка была использована, через который только маленькие пчелы могли пройти, позволяют оценить эффективность опыления в маленьких пчел на протяжении всего цветочков, цвкольцевой этап.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Примечание: Эта статья основана на нашей предыдущей работе 30. Некоторые части перепечатано с разрешения ботанического общества Японии и Японии Springer.

1. Наблюдение Цветочные посетителей

  1. Выбор полей наблюдений
    1. Поиск области , где распространяются растительные материалы, а также выбрать кандидата учебные сайты , используя надежные ресурсы, такие как книги с картинками, научных журналов и т.д. Регулировка количества учебных мест , чтобы соответствовать цели исследования (например, широкий диапазон мест для сравнение посетителей цветов по всей Японии).
    2. Проверьте расположение выбранных популяций кандидатов и расстояния от соответствующих исходных точек, таких как научно-исследовательские институты и жилые помещения, если долгосрочные исследования необходимы.
    3. Грубо оценить каждый размер популяции путем подсчета количества растительных особей в единице площади. Выберите большие группы населения для эксперимента манипуляцийS с использованием многих отдельных растений.
    4. Предварительное наблюдение цветочных посетителей
      1. Решите, какие целевые особи в каждой области будет наблюдаться в течение того же интервала времени, в зависимости от плотности населения. Выберите 5-10 свеже-открытые цветы или ломать почки в качестве целевых цветов, и отвергают деградированных те, которые уже открыли.
      2. Начните визуальное наблюдение за период всего дня, потому что цветы могли посетить различные опылителей в разных временных диапазонах 31,32.
      3. На записи листов, запишите название вида цветочных посетителей и время каждого посещения в час на цветок.
      4. Внимательно наблюдать ли трогать цветочные посетителей пыльники и / или стигматы; если они делают, запись посетителей, как опылителей. Если цветочные посетители посетить только цветы и не касаются половых органов, записывать их в качестве посетителей.
      5. Использование сетки от насекомых или ручной аспиратор, захватить цветочные посетителей для выявления исохранить их в качестве образцов (рис 1f). Убейте захваченных посетителей быстро этилацетатом или давлением пальца к грудной клетке, и сохранить их в мягкой сумке или в пластиковой трубке или случае с 100% -ным этанолом.
      6. После наблюдения, определить конкретные имена образцов с использованием морфологических признаков, или, в случае возникновения трудностей в идентификации, просить помощи экспертов для каждой таксономической группы.
  2. Наблюдение в области
    1. Выберите исследовательские сайты, основанные на их доступности, численности населения и количества цветочных посетителей. Выберите периоды времени , которые включают репрезентативную выборку цветочных посетителей в сезон цветения, и определить периоды наблюдения , основанные на научных целей (например, для исследования флуктуаций частоты посещения цветочными посетителей, длительные периоды времени должны быть установлены).
    2. Подготовьте соответствующее оборудование для записи, такие как цифровые видеокамеры (например, в ночное время записи, следует использовать видеокамеры с инфракрасной функцией).
    3. Выберите целевые цветы таким же образом, как и для 1.1.4.
    4. Закрепить видеокамеры на алюминиевые штативы. Установите камеры с штативы перед целевых лиц, примерно 50 см в сторону.
    5. Проверить и изменить количество света и направленности материалов на экране дисплеев камер перед началом съемок.
    6. Запустите визуальное наблюдение и видеосъемку в то же время для соответствующих часовых поясов, оцененных предварительных наблюдений (в данном случае, периоды наблюдений были в течение более шести часов в среднем, примерно с 5:00 утра до 13:00 вечера ).
    7. Определить названия видов посетителей и опылителей, а также записывать их имена и времена их визитов на записывающих листов.
    8. Захват и идентифицировать посетителей и опылителей таким же образом, как и в 1.1.4.5.
    9. Повторите шаги 1.2.1 1.2.7 для каждого observatioп период. Установить периоды наблюдения, основанные на научных целей и данных предварительного наблюдения.
  3. Анализ данных После того, как наблюдение
    1. Определить имена видов захваченных образцов после наблюдения опылителей таким же образом, как и в пункте 1.1.4.6.
    2. Проверьте видеоклипов и запишите названия видов и их время пребывания в том же, как и для визуального наблюдения.
    3. Расчет частоты навещать на цветок в час каждого цветочного гостя из визуальных данных наблюдения и видеозаписи. Сравните эти частоты статистически между сайтами и годами каждого посетителя с использованием соответствующих статистических методов на основе фундаментальной статистики и с помощью соответствующего программного обеспечения, таких как R, SPSS, и / или SAS 33-35 (например, двусторонний дисперсионного анализа (ANOVA ) честную существенная разница (HSD) тест Тьюки в R программного обеспечения).

2. Клетка для заполнения и эксперименты

  1. Подготовка к мешочной и Кейджа Эксперименты
    1. Для экспериментов по расфасовке, подготовить мешки , которые имеют небольшие размеры сетки (~ 0,5-1 мм) и использовать их , чтобы полностью предотвратить цветок просмотре недвижимости (например, нетканые мешки ткани были использованы для экспериментов по расфасовке в 2011 и 2012 годах ).
    2. Для экспериментов клетки, подготовка проволоки или пластиковой сетки доски с диаметром, который позволяет целевой меньшие посетителей проходить через, но не включаются более крупные, и соединить эти сетчатые доски, чтобы сформировать клетку. Убедитесь, что нет зазоров больше диаметра сетки. Откорректируйте размер и форму клеток, основанных на целевых видов растений и индивидуальными номерами.
  2. Эксперименты отбора в газосборные
    1. Выберите 30 особей на лечение, которые не имеют никакого повреждения от травоядных или от суровых условий окружающей среды. Для лечения, выбрать один цветок от каждого отдельного растения, или использовать отдельные цветы на одном заводе.
    2. сумка тон предназначаться цветы в поле после маркировки их с лентой (серийный номер и алфавит; Рисунок 1 г). Будьте осторожны, чтобы не прикасаться к пыльники или стигматы в мешки, чтобы избежать возможности самоопыления.
    3. Тщательно закрепить мешки цветы , используя мягкую проволоку или строку (рис 1d).
    4. Тщательно установить отдельные цветы в вертикальном положении с опорами с помощью мягкой веревки и провода для поддержки отдельных лиц от наклона или обрушения под тяжестью мешков или ветром, по мере необходимости. Twist или наматывать веревку или провод мягко вокруг стебле мишени индивида, таким образом, чтобы не создавать повреждения.
    5. Лечение в экспериментах по расфасовке
      1. Для "Control" лечения, прикрепить этикетки к целевым цветов и не проводить никакого лечения. Разрешить цветочные посетителям свободно посещать.
      2. Для "Скрещивание" лечение, не покрывают почки, пока они цветок, а затем удалить пыльники накрутия цветов. Положите несколько Polleп зерна от нескольких лиц на стигматы.
      3. Для лечения "самоопыления", покрывают почки, пока цветы открыты, и поставить пыльцы из тех же цветов на их стигматы. Закройте эти обработанные цветы снова.
      4. Для "Авто-я" лечения, покрывают почки с мешками до окончания цветения.
      5. Для "Ломать бутон" лечения, определить преломлении почки, которые были посещены и наблюдать за вход или выход мелких пчел (рис 1b, с). Удалите пыльники преломлении почек, чтобы предотвратить повторные осаждения пыльцы на тот же цветок после посещения мелкими пчелами, и мешок эти почки быстро, чтобы предотвратить дальнейшие просмотра.
      6. Для лечения "Цветение", мешок почки до стадии открытия, чтобы избежать просмотра на стадии обкатки бутонами. После этого, удалите мешки и позволяют посетителям собирать нектар и пыльцу.
      7. Для лечения "Bud",удалить пыльники из закрытых бутонов и ауткросс их искусственно. Сумка эти почки быстро, чтобы предотвратить цветок просмотра.
  3. Клетка Эксперименты
    1. Накройте цель отдельных растений с готовыми клетками. Отрегулируйте положение проарретированных цветов вручную , чтобы предотвратить контакт и пыльцы отложений между различными стигматы (рис 1е).
    2. Для "Клетка" лечения, выберите лиц с нераскрытых бутонов и ставить метки на них для идентификации выбранных цветов. Клетка особи с мечеными бутонов отказаться от влияния от до создания клеток (например, цветочные насекомые не могут посетить нераскрытые почки, и только эффекты насекомых , которые посещают после размещения клеток можно оценить).
    3. Прикрепите клетки плотно к земле, используя железные столбы, чтобы предотвратить попадание посетителей между клеткой основания и землей.
  4. Анализ данных Afтер мешочной и Кейджа Эксперименты
    1. Собрать все меченых цветов в конце цветения (рис 1 г) путем резки и отделяя их от материнских особей. Сохранять каждый помеченный образец отдельно, чтобы предотвратить их загрязнение.
    2. Проверка на наличие или отсутствие завязывания плодов на каждом меченый flower.Record число семян каждого плода в случае завязывания плодов.
    3. Рассчитывают соотношение количества фруктов чисел на цветок (соотношение фруктов набора, определяется как количество плодов, разделенное на количество цветов) и чисел семян в зрелых плодов (семян заданного соотношения, определяется как количество семян, разделенной на число семяпочек) с использованием всех записанных чисел.
    4. Статистически сравнить коэффициенты фруктовое и семеноводство установленные между процедурами с использованием соответствующих методов и программного обеспечения, такие как те , которые перечислены в разделе 1.3.3 (например, в одну сторону ANOVA с HSD Тьюки или точного критерия Фишера в R программного обеспечения 33).
    5. Исследования материалов с использованием результатов экспериментов по расфасовке
      1. Чтобы проверить необходимость опылителей животных, статистически сравнить результаты между "Контроль" и "Авто-самоотчеты" лечения.
      2. Для того, чтобы оценить степень ограничения пыльцы, сравнить "Контроль" и "скрещивание" процедуры.
      3. Для проверки самосовме-, сравнить "Скрещивание" и "лечения" самоопыления.
    6. Оценки влияния разбитие-Буд опыления
      1. Сравните "Контроль" и "Буд" лечения, чтобы определить, являются ли репродуктивно зрелой стигматы преломлении почек и может ли быть использовано значение "Control" лечения для контроля на стадии обкатки бутонами.
      2. Сравните "Auto-я" и "Breaking Буд" лечения, чтобы определить, является ли репродуктивный успех цветы опыляются с маленькими пчелами при преломлении-СТРОЙ стадия статистически выше , чем у растений , осуществляющих автогамии (то есть, чтобы проверить наличие приработки бутон опыления). После этого, сравнить эти два метода лечения с "Контроль", чтобы оценить эффективность опыления приработки бутон опыления.
      3. Сравните "Breaking почка", "Клетка" и "Цветущие" процедуры для оценки репродуктивного влияния приработки бутон опыления.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Пять популяций были отобраны для опылителей наблюдений. На этапе предварительного наблюдения были подтверждены посещениями различных видов насекомых на открытие цветов и маленьких пчел к ломке бутонов. Цветочные наблюдения посетителя показали , что большинство посетителей всех пяти исследовательских центрах были особи мелких видов пчел Lasioglossum japonicum. Общий рекорд посещения показали , что постигает отношения этого вида были более чем на 90% на трех участках (рису...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Цветочные наблюдения и эксперименты в мешки были использованы в данном исследовании для выявления частоты посещения и женского репродуктивного успеха растений, соответственно. В Дафни (1992) 38, метод видеокассету был эффективен , поскольку он может записывать время и продолжительность посетителей для анализа и предотвращения смещения наблюдателя. Тем не менее, в то время, этот метод требует дорогостоящего оборудования, а время наблюдения были ограничены временем автономной работы. В последнее время стоимость...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.

Благодарности

Авторы благодарят трех анонимных рецензентов за их полезные комментарии к рукописи. Эта работа была частично поддержана грантом для стипендиатов JSPS (26.11613).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
листзаписи любойNA
сетка от насекомыхлюбойNA
pooterлюбойNA
этилацетатлюбойNA
пластиковая трубкалюбаяNA
soft
сумкалюбой
любой штатив
АН
мешоклюбой
АН проволока или пластиковые сетчатые доскиАН любые
любая
любые
любыеNA
мягкие нити или проводалюбыеNA
пинсет(ы)любойNA
100% этанол любой NA пластиковая чехол любой NA цифровой видеокамеры АН АН любой железные провода АН маркировочная лента АН опоры для палок АН ,

Ссылки

  1. Dodd, M. E., Silvertown, J., Chase, M. W. Phylogenetic analysis of trait evolution and species diversity variation among angiosperm families. Evolution. 53 (3), 732-744 (1999).
  2. van der Niet, T., Johnson, S. D. Phylogenetic evidence for pollinator-driven diversification of angiosperms. Trends Ecol. Evol. 27, 353-361 (2012).
  3. Bascompte, J., Jordano, P. Plant-animal mutualistic networks: the architecture of biodiversity. Ann. Rev. Ecol. Evol Syst. 38, 567-593 (2007).
  4. Losos, J. B., Ricklefs, R. E. Adaptation and diversification on islands. Nature. 457, 830-836 (2009).
  5. Schnitzler, J., et al. Causes of plant diversification in the cape biodiversity hotspot of south africa. Syst. Biol. 60, 1-15 (2011).
  6. Stebbins, G. L. Adaptive radiation of reproductive characteristics in angiosperms I: pollination mechanisms. Ann. Rev. Ecol. Syst. 1, 307-326 (1970).
  7. Ne'eman, G., Jürgens, A., Newstrom-Lloyd, L., Potts, S. G., Dafni, A. A framework for comparing pollinator performance: effectiveness and efficiency. Biol. Rev. 85, 435-451 (2010).
  8. Waser, N. M., Chittka, L., Pirce, M. V., Williams, N. M., Ollerton, J. Generalization in pollination systems, and why it matters. Ecology. 77 (4), 1043-1060 (1996).
  9. Sahli, H. F., Conner, J. K. Visitation, effectiveness and efficiency of 15 genera of visitors to wild radish, Raphanus raphanistrum (Brassicaceae). Am. J. Bot. 94, 203-209 (2007).
  10. Moeller, D. A. Pollinator community structure and sources of spatial variation in plant-pollinator interactions in Clarkia xantiana. ssp. xantiana. Oecologia. 142 (1), 28-37 (2005).
  11. Keys, R. N., Buchmann, S. L., Smith, S. E. Pollination effectiveness and pollination efficiency of insects foraging Prosopis velutina.in south-eastern Arizona. J. Appl. Ecol. 32 (3), 519-527 (1995).
  12. Pedron, M., Buzatto, C. R., Singer, R. B., Batista, J. A. N., Moser, A. Pollination biology of four sympatric species of Habenaria (Orchidaceae: Orchidinae) from southern. J. Linn. Soc. 170, 141-156 (2012).
  13. Phillips, R. D., et al. Caught in the act: pollination of sexually deceptive trap-flowers by fungus gnats in Pterostylis (Orchidaceae). Ann. Bot. 113, 629-641 (2014).
  14. Mayfield, M. M., Waser, N. M., Price, M. V. Exploring the "most effective principle" with complex flowers: bumblebees and Ipomopsis aggregata. Ann. Bot. 88, 591-596 (2001).
  15. Herrera, C. M. Components of pollinator "quality": comparative analysis of a diverse insect assemblage. Oikos. 50, 79-90 (1987).
  16. Hargreaves, A. L., Weiner, J. L., Eckert, C. G. High-elevation range limit of an herb is neither caused nor reinforced by declining pollinator service. J. Ecol. 103, 572-584 (2015).
  17. Motten, A. F. Reproduction of Erythronium umbilicatum. (Liliaceae): pollination success and pollinator effectiveness. Oecologia. 59, 351-359 (1983).
  18. Betts, M. G., Hadley, A. S., Kress, W. J. Pollinator recognition by a keystone tropical plant. Proc. Natl. Acad. Sci. 112 (11), 3433-3438 (2015).
  19. Schemske, D. W., Horvitz, C. C. Variation among floral visitors in pollination ability: a precondition for mutualism specialization. Science. 225 (4661), 519-521 (1984).
  20. Spears, E. E. A direct measure of pollinator effectiveness. Oecologia. 57, 196-199 (1983).
  21. Sun, M., Ritland, K. Mating system of yellow starthistle (Centaurea solstitialis.), a successful colonizer in North America. Heredity. 80, 225-232 (1998).
  22. Suetsugu, K. Autogamous fruit set in a mycoheterotrophic orchid Cyrtosia septentrionalis. Plant Syst. Evol. 299, 481-486 (2013).
  23. Dupont, Y. L. Evolution of apomixis as a strategy of colonization in the dioecious species Lindera glauca. (Lauraceae). Popul. Ecol. 44, 293-297 (2002).
  24. Ramsey, M. Ant pollination of the perennial herb Blandfordia grandiflora (Liliaceae). Oikos. 74, 265-272 (1995).
  25. Moog, U., Fiala, B., Federle, W., Maschwitz, U. Thrips pollination of the dioecious ant plant Macaranga hullettii.(Euphorbiaceae) in Southeast Asia. Am. J. Bot. 89 (1), 50-59 (2002).
  26. Stokes, C. J., Yeaton, R. I. Population dynamics, pollination ecology and the significance of plant height in Aloe candelabrum. Afr. J. Ecol. 33, 101-113 (1995).
  27. Hargreaves, A. L., Harder, L. D., Johnson, S. D. Aloe inconspicua.: The first record of an exclusively insect-pollinated aloe. S. Afr. J. Bot. 74, 606-612 (2008).
  28. Botes, C. B., Johnson, S. D., Cowling, R. M. The birds and the bees: using selective exclusion to identify effective pollinators of African tree aloes. Int. J. Plant. Sci. 170 (2), 151-156 (2009).
  29. Kawano, S. Life-history monographs of Japanese plants. 13: Lycoris sanguinea.Maxim (Amaryllidaceae). Plant Spec. Biol. 24, 139-144 (2009).
  30. Yamaji, F., Ohsawa, A. T. Breaking-bud pollination: a new pollination process in partially opened flowers by small bees. J. Plant Res. 128 (5), 803-811 (2015).
  31. Sun, M., Gross, K., Schiestl, F. P. Floral adaptation to local pollinator guilds in a terrestrial orchid. Ann. Bot. 113, 289-300 (2014).
  32. Sletvold, N., Trunschke, J., Wimmergren, C., Ågren, J. Separating selection by diurnal and nocturnal pollinators on floral display and spur length in Gymnadenia conopsea. Ecology. 93, 1880-1891 (2012).
  33. R Core Team. A language and environment for statistical computing. , R Foundation for Statistical Computing. Vienna, Austria. (2014).
  34. IBM Statistics Version 21. , International Business Machines Corp. Boston, Mass. (2012).
  35. SAS Version 9.2. , SAS Institute. Cary, NC, USA. (2009).
  36. Ma, B., Tarumoto, I., Morikawa, T. Cytological studies on selfed plants and interspecific crosses produced in four species of genus Lycoris.(Amaryllidaceae). Sci Rep Coll Agric Osaka Pref Univ. 52, 13-18 (2000).
  37. Ma, B., Tarumoto, I., Nakamura, N., Kunitake, H. Production of interspecific hybrids between Lycoris incarnata.and four other Lycoris.species through embryo culture. J Japan Soc Hortic Sci. 70, 697-703 (2001).
  38. Dafni, A. Pollination ecology: a practical approach. , Oxford University Press. Oxford, UK. (1992).
  39. Abrahamczyk, S., Kluge, J., Gareca, Y., Reichle, S., Michael, K. The influence of climatic seasonality on the diversity of different tropical pollinator groups. PLoS One. 6 (11), e27115(2011).
  40. Suetsugu, K., Hayamizu, M. Moth floral visitors of the three rewarding Platanthera. orchids revealed by interval photography with a digital camera. J. Nat. Hist. 48, 1103-1109 (2014).
  41. Steen, R. Pollination of Platanthera chlorantha.(Orchidaceae): new video registration of a hawkmoth (Sphingidae). Nord. J. Bot. 30, 623-626 (2012).
  42. Sakamoto, R. L., Morinaga, S., Ito, M., Kawakubo, N. Fine-scale flower-visiting behavior revealed by using a high-speed camera. Behav. Ecol. Sociobiol. 66, 669-674 (2012).
  43. Johnson, S. D., Steiner, K. E. Generalization versus specialization in plant pollination systems. Trends Ecol. Evol. 15, 140-143 (2000).
  44. King, C., Ballantyne, G., Willmer, P. G. Why flower visitation is a poor proxy for pollination: measuring single-visit pollen deposition, with implications for pollination networks and conservation. Methods Ecol. Evol. 4, 811-818 (2013).
  45. Gathmann, A., Tscharntke, T. Foraging ranges of solitary bees. J. Anim. Ecol. 71, 757-764 (2002).
  46. Greenleaf, S. S., Williams, N. M., Winfree, R., Kremen, C. Bee foraging ranges and their relationship to body size. Oecologia. 153, 589-596 (2007).
  47. Rademaker, M. C. J., De Jong, T. J., Klinkhamer, P. G. L. Pollen dynamics of bumble-bee visitation on Echium vulgare. Func. Ecol. 11, 554-563 (1997).
  48. Adler, L. S., Irwin, R. E. Comparison of pollen transfer dynamics by multiple floral visitors: experiments with pollen and fluorescent. Ann. Bot. 97, 141-150 (2006).
  49. Krauss, S. Complete exclusion of nonsires in an analysis of paternity in a natural plant population using amplified fragment length polymorphism (AFLP). Mol. Ecol. 8, 217-226 (1999).
  50. Gerber, S., Mariette, S., Streiff, R., Bodenes, C., Kremer, A. Comparison of microsatellites and amplified fragment length polymorphism markers for parentage analysis. Mol. Ecol. 9, 1037-1048 (2000).
  51. Matsuki, Y., Isagi, Y., Suyama, Y. The determination of multiple microsatellite genotypes and DNA sequences from a single pollen grain. Mol. Ecol. 7, 194-198 (2007).
  52. Hirota, S. K., et al. Pollinator-mediated selection on flower color, flower scent and flower morphology of Hemerocallis.: Evidence from genotyping individual pollen grains on the stigma. PLoS One. 8 (12), e85601(2013).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи