Картирование участок связывания аптамер на АТФ Использование Microscale Термофорез

Summary

MicroScale Thermophoresis (MST) — это чувствительная технология для характеристики взаимодействий аптамера и мишени. В данной рукописи описан протокол MST для описания взаимодействий аптамера и малых молекул.

Abstract

Характеристика молекулярных взаимодействий с точки зрения основных параметров связывания, таких как аффинность связывания, стехиометрия и термодинамика, является важным шагом в фундаментальной и прикладной науке. Микромасштабный термофорез (МСТ) является чувствительным биофизическим методом для получения этой важной информации. Опираясь на физический эффект, называемый термофорезом, который описывает движение молекул через температурные градиенты, эта технология позволяет быстро и точно определять параметры связывания в растворе и позволяет свободно выбирать условия буфера (от буфера до лизатов/сывороток). MST использует тот факт, что несвязанная молекула проявляет иное термофоретическое движение, чем молекула, которая находится в комплексе со связующим партнером. Термофоретическое движение изменяется в момент молекулярного взаимодействия из-за изменения размера, заряда и гидратационной оболочки. Сравнивая профили движения различных молекулярных соотношений двух партнеров по связыванию, можно определить количественную информацию, такую как аффинность связывания (pM к mM). Даже сложные взаимодействия между молекулами малых размеров, такими как аптамеры и небольшие соединения, могут быть изучены с помощью MST. Используя хорошо изученное модельное взаимодействие между аптамером ДНК DH25.42 и АТФ, в данной рукописи представлен протокол для характеристики взаимодействий аптамера и малых молекул. Это исследование демонстрирует, что МСТ обладает высокой чувствительностью и позволяет картировать сайт связывания аптамера ДНК с молекулярной массой 7,9 кДа с аденином АТФ.

Introduction

Взаимодействие между молекулами является основой природы. Таким образом, ученые во многих областях фундаментальных и прикладных исследований пытаются понять основные принципы молекулярных взаимодействий различных видов. Microscale Термофорез (MST) позволяет ученым осуществлять быстрый, точный, экономичный, и контроль качества характеристику молекулярных взаимодействий в растворе, со свободным выбором буферов. Есть уже более 1000 публикаций с использованием MST, с 2016 года в одиночку, описывая различные виды анализов, в том числе библиотеки скринингов, связывание валидаций событий, анализы конкуренции, а также эксперименты с несколькими партнерами связывания ^1-8. В общем, МСТ позволяет исследовать классических параметров связывания, такие как аффинность связывания (стр.м.в мМ), стехиометрии и термодинамики, любого вида молекулярного взаимодействия. Большим преимуществом MST является возможность изучения связывания событий независимо от размера партнеров взаимодействия. Даже чалlenging взаимодействия между малыми аптамеров нуклеиновых кислот (15-30 нт) и задачи, такие как небольшие молекулы, лекарственные средства, антибиотики или метаболиты могут быть определены количественно.

Текущее состояние-оф-современные технологии для характеристики аптамеров-мишени взаимодействия либо лабораторного интенсивной и очень сложной или не в состоянии количественно аптамеров-малая молекула взаимодействиях ^9,10. Поверхностного плазмонного резонанса (SPR) основе анализов ^11,12 и действительно этикетки свободные калориметрических подходы, такие как изотермической калориметрии (титрования ITC), ^13-15 изократическим элюирования ^16, равновесному инфильтрации ^17,18, рядный зондирования ^19, гелеобразные анализах сдвига, stopped- потока флуоресценции спектроскопии ^20,21, анизотропии флуоресценции (FA) ^22,23, одной молекулы флуоресценции изображений ^24,25 и Био-слой интерферометрии (BLI) ²⁶ также являются либо неточными или несовместим с аптамеров-небольшой молекулы взаимодействия. Другое principaл вопросы этих методов низкая чувствительность, высокое потребление пробы, иммобилизация, ограничение массовых перевозок на поверхностях, и / или ограничения буфера. Лишь немногие из этих технологий обеспечивают интегрированные средства управления для агрегации и адсорбции эффектов.

MST представляет собой мощный инструмент для ученых , чтобы преодолеть это ограничение для изучения взаимодействия между аптамеров и малыми молекулами ^27-29, а также другие цели , такие как белки ^30-33. Технология опирается на движение молекул через температурных градиентов. Это направленное движение, называемое "термофорезу," зависит от размера, заряда и гидратной оболочки молекулы ^34,35. Связывание лиганда с молекулой будет непосредственно изменять, по меньшей мере один из этих параметров, в результате чего в измененном термофоретического мобильности. Лиганды с малыми размерами не могут иметь значительное влияние с точки зрения изменения размера от несвязанного в связанном состоянии, но они могут иметь Др amatic воздействие на оболочку гидратации и / или заряда. Изменения в термофоретического движение молекул после взаимодействия с партнером по связыванию позволяет количественно оценить основные параметров связывания ^{2,7,34,36,37.}

Как показано на рисунке 1А, устройство МСТ состоит из инфракрасного лазера фокусировалось на образец в стеклянных капиллярах с использованием тех же оптических систем для флуоресцентной детекции. Термофоретическая движение белков с помощью собственной флуоресценции триптофанов ⁶ или флуоресцентно меченого партнерского взаимодействия ^3,8 можно отслеживать в то время как лазер создает температурный градиент (& Delta ; t 2-6 ° С). Полученная разность температур в пространстве, & Delta ; t, приводит к истощению или накопление молекул в области повышенной температуры, которая может быть определена количественно с помощью Соре коэффици- циент (С _Т):

г "/>

С _{горячей} представляет собой концентрацию в нагретой области, и с _{холодом} концентрация в начальной холодной области.

Как показано на фигуре 1В, типичный результаты эксперимента MST в профиле движения MST (время трассировки), состоящий из различных этапов, которые могут быть разделены с помощью их соответствующих временных рамок. Первоначальная измеряют флуоресценцию в первые 5 секунд в отсутствие градиента температуры, чтобы определить точную начальную флуоресценцию и для проверки наличия фотообесцвечиванию или photoenhancement. Скачок температуры (T-Jump) представляет собой фазу, в которой изменения флуоресценции до термофоретического движения. Это начальное снижение флуоресценции зависит от тепловых зависящих от изменений фл uorophore квантового выхода. Фаза термофорезу следует, в которых флуоресценция уменьшается (или увеличивается) в связи с термофоретического движения молекул вплоть до стационарного распределения достигается.Обратное TJump и сопутствующее назад диффузия фл uorescent молекул можно наблюдать , как показано на рисунке 1В после того, как лазер выключен. Для того, чтобы получить доступ к основным параметрам связывания, различные молярные отношения партнеров взаимодействия анализируются и сравниваются. Как правило, 16 различных соотношений изучаются в одном эксперименте MST, в то время как оптический видимый молекулы поддерживается постоянным и поставляется с увеличением количества немеченого лиганда. Взаимодействие между этими двумя связывающими партнерами вызывает изменения в ТФ, и , таким образом , в нормированной флуоресценции, F _норма, которая рассчитывается следующим образом :

F _{горячей} и _{холодной} F представляют собой усредненные интенсивности uorescence Fl на де определены моменты времени следов MST. Аффинности связывания (K _D или ₅₀ значений EC) можно рассчитать по CURVе фитинга (рис 1C).

В целом, MST является мощным инструментом для изучения молекулярных взаимодействий любого рода. Эта рукопись предлагает протокол характеризовать сложные взаимодействия между молекулой небольшой аденозинтрифосфата (АТФ, 0,5 кДа) и 25-нт короткий оцДНК аптамеров DH25.42 (7,9 кДа). В течение рукописи, сайт связывания аптамеров на молекулы АТФ отображается вплоть до аденин группы АТФ.

Protocol

1. Подготовка аптамеров рабочей запаса

1. Следуйте инструкциям производителя и растворить олигонуклеотида (5-Cy5-ЦГКК GGGGAGTATTGCGGAGGAAGG-3, последовательность из ссылки ¹⁸⁾ в воде, достигая конечной концентрации 100 мкМ.
2. Подготовка аптамера рабочего раствора путем разбавления олигонуклеотидного запаса до 200 нм с буфером для связывания (20 мМ Трис, рН 7,6; 300 мМ NaCl, 5 мМ MgCl _2, 0,01% Tween 20).
3. Выдержите смесь в течение 2 мин при 90 ° С, дайте образец сразу остыть на льду, а также использовать образец при комнатной температуре.

2. Подготовка лигандной серии разведений

1. Для каждого лиганда (аденозинтрифосфата (АТФ), аденозин дифосфат (АДФ), аденозинмонофосфата (АМФ), аденин, гуанозинтрифосфат (GTP), цитидинтрифосфат (CTP), дезоксиаденозин трифосфата (дАТФ), и S-Аденозил метионин (SAM) ; 10 мМ каждый запас), готовят 16-ступенчатый последовательный dilutiна в 200 мкл микро реакционных труб.
   Примечание: Центрифугирование запасов лиганда в течение 5 мин при 14000 х г, может помочь удалить агрегаты. Низкий уровень громкости, низкие трубки реакции связывания рекомендуется, чтобы избежать адсорбции молекул на стенках труб.
2. Начать с максимальной концентрацией по меньшей мере в 50 раз выше, чем расчетная сродства и снижают концентрацию лиганда на 50% в каждой стадии разбавления.
   Примечание: Концентрация искатель инструмент реализован в программном обеспечении управления имитирует связывание данных и помогает при поиске нужного диапазона концентраций для серии разбавления.
3. Fill 20 мкл лигандного запаса (10 мМ) в пробирку 1. Добавьте 10 мкл буфера для связывания аптамеров в микротрубок реакции от 2 до 16.
4. Передача 10 мкл трубы 1 к трубе 2 и правильно перемешать с помощью пипетки вверх и вниз несколько раз. Перенесите 10 мкл на следующую пробирку и повторить это разведение для остальных трубок.
5. Откажитесь от 10 мкл избытка из последней трубки. Избегайте любого бuffer разведение эффекты. Буфер в трубе 1 и в трубах 2-16 должны быть идентичными.

3. Получение конечных реакционной смеси

1. Подготовка индивидуальных реакций связывания с объемом 20 мкл (10 мкл рабочего раствора аптамеров + 10 мкл соответствующего лиганда разбавлении), чтобы свести к минимуму ошибки пипетирования. Объем всего 4 мкл является достаточной для фи LL капилляра.
2. Добавьте 10 мкл рабочего раствора 200 нМ аптамеров к 10 мкл каждого лиганда разведения и должным образом перемешать с помощью пипетки вверх и вниз несколько раз.
3. Инкубируйте образцы в течение 5 мин при комнатной температуре и наполняются во образцов в стандартные капилляры путем погружения капилляров в образец. Более длительное время инкубации может быть необходимо для некоторых взаимодействий; Тем не менее, 5 мин достаточно для большинства. Прикоснитесь капилляры только по бокам, а не на средней части, где будет принято оптическое измерение.
4. Поместите капилляры на ее капиллярная лоток и запустить устройство MST.

4. Запуск устройства MST

ПРИМЕЧАНИЕ: Устройство содержит два предварительно установленные программные пакеты, на "контроль" программное обеспечение для установки технических условий эксперимента и анализа '' " 'программного обеспечения для интерпретации полученных данных.

1. Перед установкой капиллярного лоток в устройство MST, запустите программу управления и регулировать общую желаемую температуру, выбрав '' включить ручное управление температуры "в '' контроля температуры" в раскрывающемся меню. Доведите температуру до 25 ° С таким образом.
   Примечание: Инструменты MST может быть с регулируемой температурой от 22 до 45 ° C.
2. Подождите, пока температура достигнет ожидаемого уровня, а затем поместить капиллярную лоток в устройство MST.
3. Установите светодиодный канал в '' красной "для Cy5 красителей и регулировать питание светодиодов, чтобы получить фл uorescencе сигнала от 300 до 1000 единиц флуоресценции в устройстве MST со стандартным датчиком. 25% Сила СИД используется в данном исследовании.
   Примечание: от 6000 до 18 000 единицы флуоресценции рекомендуются для MST с датчиком высокой чувствительности.

5. Капиллярная сканирования

1. Выполняют капиллярную сканирование, чтобы проверить различные аспекты качества образца путем выбора позиции капиллярную на программное обеспечение "управления" и нажав на кнопку "старт крышки сканирование" Перед началом измерения MST.
2. Проверьте капиллярную сканирование флуоресценции повышения / закалкой и торчащие эффектов (U-образные или уплощенные пики) в программном обеспечении.
   Примечание: Более подробная информация о выявлении и обработке флуоресценции и торчащие эффектов можно найти в обсуждении.

6. Измерение MST

ПРИМЕЧАНИЕ: Перед началом измерения MST, убедитесь, чтобы исключить прилипание эффекты, повышение / тушение эффектов, илиОшибки пипетирующие, и убедитесь, что капиллярная сканирования указывает на то, что сигнал флуоресценции является достаточным. Для получения более подробной информации, смотрите обсуждение.

1. Назначают концентрации лиганда, из серии разведений в соответствующее положение капилляра в программном обеспечении '' управления "Рассмотрим стадию разбавления смешивания аптамера и лиганда. (1: 1).
2. Введите самую высокую концентрацию лиганда (5 мм) для капиллярного # 1, выберите правильный тип для разведения (здесь, 1: 1), нажмите на максимальной концентрации, а также использовать функцию перетаскивания для автоматического назначения оставшиеся концентрации в капиллярах # 2- 16. Самая низкая концентрация составляет 152,6 нМ.
3. Введите концентрацию фл uorescent аптамеров (здесь, 100 нМ) в соответствующем разделе программного обеспечения управления.
4. Используйте настройки по умолчанию, которые обнаруживают флуоресценции в течение 5 сек, запись MST в течение 30 сек, и регистрации флуоресценции в течение еще 5 секунд после инактивации лазера т O монитор поворотную диффузию молекул.
5. Регулировка мощности лазера до 20% в соответствующем разделе программы управления.
   Примечание: Для того, чтобы получить наилучшее соотношение сигнал-шум и избежать неспецифических эффектов, лазер мощностью 20-40% рекомендуется. В отдельных случаях, более высокая мощность лазера может потребоваться, чтобы получить хорошее разделение несвязанных и связанных молекул.
6. Сохранить эксперимент после выбора папки назначения и начать измерение MST, нажав на кнопку '' измерения Start MST ".
   Примечание: Файл .ntp будет создан в папке назначения. С помощью этой установки, одно измерение длится 10-15 мин.
7. Повторите экспериментальную процедуру , по крайней мере в два раза для более точного определения величины _ЕС50.
   Примечание: Для того, чтобы проверить техническую воспроизводимости, одни и те же капилляры могут быть отсканированы несколько раз (технических повторов).

7. MST Анализ данных

нт "> Примечание: Программное обеспечение для анализа позволяет анализировать данные о мошка во время измерения Программное обеспечение для анализа временных участков следов и изменений в нормированной флуоресценции (F _норма) MST в зависимости от концентрации лиганда ^37..

1. Запустите программное обеспечение для анализа MST (MO.Affinity Analysis) и загрузите файл .ntp из папки назначения. Выберите "MST" в качестве типа анализа в меню выбора данных.
   Примечание: В случае лиганд-зависимых эффектов флуоресценции, начальная флуоресценция может быть выбран для анализа.
2. Добавьте соответствующую техническую или биологическую прогон (ов) к новому анализу путем перетаскивания и падение или нажав на кнопку "+" ниже соответствующего экспериментального пробега.
3. Нажмите кнопку информация ниже соответствующего экспериментального прогона для получения информации о свойствах эксперимента, MST следов, капиллярный сканирования, форма капилляра, начальной флуоресценции и скорости отбеливания.
   Примечание: Эти исходные данные могут альтак быть осмотрены на последующих этапах анализа.
4. Осмотреть следы MST для агрегации и осаждения эффектов, видимые как шишки и шипы.
   Примечание: Для получения дополнительной информации о выявлении и обработке агрегирования эффектов, читать обсуждение.
5. Визуально проверьте капиллярную сканирование и форма наложения капилляров для адсорбции эффектов, видимый, как сплющенные или U-образных пиков. Осмотреть капиллярную сканирования и начальный флуоресценции для эффектов флуоресценции. Осмотреть скорость отбеливания для фотообесцвечиванию эффектов.
6. Переключение в режим доза-реакция и изменения настроек анализа в режим "Эксперт", нажав на соответствующую кнопку. Выберите "T-Jump" в качестве стратегии оценки MST.
7. Выберите модель "Hill" на кривой подгонки. Связующие параметры будут автоматически рассчитываться. Нормализовать данные, выбрав соответствующий тип нормализации в меню "Сравнить результаты". Экспортироватьданные либо как .xls или .pdf.
   Примечание: В таблице ниже привязки графика приведены расчетные параметры связывания.

Results

В данном исследовании МСТ был применен для характеристики участок связывания аптамеров DH25.42 ДНК ¹⁸ на АТФ. В отличие от других исследований , характеризующих взаимодействие АТФ или АТФ-имитируя малых молекул с белками случайным образом помеченного одной или более флуорофоров ^38-40, это исследование включает меченый вариант аптамеров 7,9 кД оцДНК с одной молекулой Cy5 на конце 5' , Различные производные АТФ и родственные молекулы, все отличающиеся от АТФ в различн...

Discussion

Контроль качества:

Неспецифические прилипание / адсорбции материала образца на поверхности, а также агрегации эффектов, оказывают серьезное влияние на качество данных сродством. Тем не менее, лишь немногие внедренный технологии обеспечивают точные и быстрые варианты контроля и устранения этих последствий. MST предлагает интегрированные контроля качества, которые обнаруживают и помогают преодолеть эти проблемы, позволяя для оптимизации ступенчатого технической установки. Важная информация о прик...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
Аптамерсвязывающий буфер			20 мМ Tris pH 7,6; 300 мМ NaCl; 5 мМ MgCl2; 0,01% Tween-20
Флуоресцентно меченный АТФ аптамер	IDT, Лёвен, Бельгия		последовательность: DH25.42 50-Cy5-CCTGGGGGAGT- ATTGCGGAGGAAGG-3
ATP	Sigma Aldrich, Германия	A2383	10 мМ стоковые растворы хранятся при температуре - 20 °°; C
	ADP Sigma Aldrich, Германия	A2754	10 мМ исходные растворы хранятся при температуре - 20 °°; C
AMP	Sigma Aldrich, Германия	A2252	10 мМ стоковые растворы хранятся при температуре - 20 ° C
Adenine	Sigma Aldrich, Германия	A8626	10 мМ стоковые растворы хранятся при температуре - 20 ° C
SAM	Sigma Aldrich, Германия	Складские растворы A7007	10 мМ хранятся при температуре - 20 °°; C
dATP	Sigma Aldrich, Германия	11934511001	10 мМ стоковых растворов, хранящихся при температуре - 20 °°; C
CTP	Sigma Aldrich, Германия	C1506	10 мМ стоковые растворы хранятся при - 20 °°; C
GTP	Sigma Aldrich, Германия	G8877	10 мМ стоковые растворы хранятся при температуре - 20 °°; C
Монолит NT.115	NanoTemper Technologies, Мюнхен, Германия	MO-G008	Blue/Red Channel MST устройство со стандартным детектором, Monolith NT115 pico - это MST устройство с высокочувствительным детектором
Monolith NT.115 Стандартные капилляры	NanoTemper Technologies, Мюнхен, Германия	MO-K002
Eppendorf PCR tubes	Eppendorf, Германия	30124537
Программное обеспечение для управления Monolith. 2.1.33, предустановлено на прибор	NanoTemper Technologies, Мюнхен, Германия
MO.affinity analysis v2.1.1	NanoTemper Technologies, Мюнхен, Германия
Kaleidagraph 4.5.2	Synergy Software