Method Article

Одновременная оценка церебральной гемодинамики и свойств рассеяния света В Vivo Мозга крысы с помощью мультиспектральных диффузной отражательной визуализации

DOI:

10.3791/55399

May 7th, 2017

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Одновременная оценка церебральной гемодинамики и легких рассеивающих свойств в естественных условиях ткани головного мозга крыс продемонстрировано с использованием обычной многоспектральных диффузного отражения системы формирования изображения.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Одновременная оценка церебральной гемодинамики и светорассеивающих свойств мозговой ткани крысы in vivo демонстрируется с использованием обычной мультиспектральной системы визуализации диффузного отражения. Эта система состоит из широкополосного источника белого света, моторизованного фильтрующего колеса с набором узкополосных интерференционных фильтров, световода, собирающей линзы, видеозум-объектива и монохроматической камеры с заряженной связью (ПЗС). В кости черепа крысы под анестезией изофлурана создается эллипсоидальное черепное окно для получения in vivo мультиспектральных изображений диффузного отражения поверхности коры головного мозга. Регулирование фракции вдыхаемого кислорода с помощью устройства с газовой смесью позволяет вызывать различные респираторные состояния, такие как нормоксия, гипероксия и аноксия. Затем проводится множественный регрессионный анализ на основе моделирования методом Монте-Карло для измеренных мультиспектральных изображений диффузного отражения на девяти длинах волн (500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730 и 760 нм) для визуализации двумерных карт гемодинамики и светорассеивающих свойств мозга крысы in vivo.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Многоспектральное диффузное отражение изображение является наиболее распространенным методом получения пространственной карты собственных оптических сигналов (IOSs) в кортикальной ткани. IOSs наблюдается в головном мозге в естественных условиях в основном относится к трем явлениям: вариации в поглощении света и рассеивающие свойства из - за корковую гемодинамику, вариации в поглощении в зависимости от уменьшения или окисления цитохромов в митохондриях, и вариация в легких рассеивающих свойствах , индуцированных морфологическими изменения 1.

Свет в видимой области спектра (VIS), чтобы в ближней инфракрасной области (NIR) области спектра эффективно поглощается и рассеивается биологической ткани. Диффузное отражение спектр в естественных условиях мозга характеризуются спектрами поглощения и рассеяния. Уменьшенные коэффициенты рассеяния ц S 'мозговой ткани в результате диапазона длин волн VIS-к-НКА в однообразном рассеянии экспоната спектраМеньших величин при более длинных волнах. Спектр приведенных спектров рассеяния μ s '(λ) можно аппроксимировать в виде функции степенного закона 2 , 3 при μ s ' (λ) = a × λ -b . Сила рассеяния b связана с размером биологических рассеивателей в живой ткани 2 , 3 . Морфологические изменения ткани и снижение жизнеспособности живой ткани коры могут влиять на размер биологических рассеивателей 4 , 5 , 6 , 7 , 8 , 9 .

Оптическая система для мультиспектральной диффузно-отражательной визуализации может быть легко построена на лампе накаливания liGht, простые оптические компоненты и монохроматическое устройство с зарядовой связью (CCD). Поэтому для оценки корковой гемодинамики и / или тканевой морфологии 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 использовались различные алгоритмы и оптические системы для мультиспектрального диффузного отражения.

Метод, описанный в этой статье, используется для визуализации как гемодинамики, так и светорассеяния тканей головного мозга крысы in vivo с использованием традиционной мультиспектральной диффузно-отражательной системы формирования изображения. Преимущества этого метода над альтернативными методиками - это способность оценивать пространственно-временные изменения как в мозговой гемодинамике, так и в кортикальной тканиморфологии, а также его применимость к различным моделям дисфункции мозга животных. Таким образом, этот метод будет целесообразен для исследований травматического повреждения головного мозга, эпилептического припадка, инсульта и ишемии.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Уход за животными, подготовка и экспериментальные протоколы были одобрены Исследовательским комитетом животных Токийского университета сельского хозяйства и технологий путем. По этой методике, крыса находится в контролируемой среде (24 ° С, 12 ч свет / темнота цикла), с пищей и водой , доступными по желанию.

1. Построение системы Обычного Multispectral диффузного отражение изображений

  1. Крепление девять узкополосные интерференционные оптические фильтры с центром длинах волн 500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730 и 760 нм до фильтрующих отверстий моторизованного фильтра колеса.
  2. Построить мультиспектральную систему формирования изображения с использованием широкополосного источника белого света, моторизованный фильтра колесо с указанного выше набора узкополосных интерференционных фильтров, световод, собирающей линзы, видео-зум-объектив, а также монохроматического ПЗС-камеры. Расположение оптических компонентов, показанных на фиг.2, может быть использована для гоявляется процедура строительства.
    Примечание: Угол освещения приблизительно 45 ° по отношению к поверхности образца.
  3. Включите источник света лампы галогена, чтобы осветить поверхность образца с помощью интерференционного фильтра, световода, и собирающей линзы.
  4. Откройте управляющее программное обеспечение камеры CCD.

2. Подготовка животных

Примечание: В этом протоколе, крыса не использовалась для будущих экспериментов и была принесена в жертву сразу после измерений мультиспектральных изображений.

  1. Подключение входного отверстия индукционной камеры к выходному порту анестезии машины с трубкой. Подключение выходного порта индукционной камеры к впускному отверстию машины анастезии со второй трубкой.
  2. Поместите крысу в индукционной камеру и индуцировать анестезию с 5,0% изофлураном. Поддержание анестезии на глубине, так что крыса не реагирует на носок щепотку. LДо 2,0% изофлурана, используя вращающуюся ручку на анестезиологической машине.
  3. Закрепите голову крысы в ​​стереотаксической рамке. Прикрепите мундштук для анестезии к стереотаксической рамке.
  4. Соедините впускной канал мундштука с выходным отверстием анестезиологического аппарата с помощью трубки. Соедините выходное отверстие мундштука со впускным отверстием машины для анестезии с помощью трубки.
  5. Бритье головы области за перспективный разрез сайта с помощью машинки для стрижки волос, пока поверхность кожи появляется.
  6. Сделайте продольный разрез длиной около 20 мм вдоль средней линии головы с помощью хирургического скальпеля ( рис . 1 (а) ) и обнажите подкожные соединительные ткани ( рис. 1 (б) ).
  7. Удалите подкожные соединительные ткани, используя острую кюретку или клешню, и потяните ее к обеим сторонам головы, чтобы обнажить кость черепа ( рис. 1 (c) ).
  8. Выкопайте эллипсоидальный ров на кости черепа внутри черепного сутура(ы венечный шов, сагиттальный шов и ламбдовидные шовное) с помощью дрели высокоскоростной (Рисунок 1 (d)).
  9. Медленно и гомогенно выкопать кости черепа внутри кювет с помощью дрели высокой скорости.
  10. Слегка нажмите на поверхности утонченного черепа с кончиком пинцета, чтобы оценить толщину и прочность костной ткани после того, как появляются церебральные кровеносные сосуды. Если Утонченная область черепа угнетает легко, прекратить снижение кости черепа с бура с высокой скоростью.
  11. Вырезать эллипсоидальную границу линию утонченного черепа по частям, используя кончик пинцета или небольших хирургических ножниц.
  12. Снимите утонченный череп с поверхности мозга медленно и осторожно, используя клешню.
  13. Аккуратно омывать черепной окно с физиологическим раствором и покрыть ее с прозрачной стеклянной пластиной толщиной около 0,1 мм.

3. Регулирование фракции вдыхаемого кислорода

Примечание: Дыхательная Кондиции может быть изменен путем регулирования фракции вдыхаемого кислорода (FiO 2).

  1. Используя трубку, соединить первый порт разъема с Y-образной трубки (разъем 1) к первому порту другого соединителя Y-образной трубки (разъем 2).
  2. Подключение входного отверстия мундштука ко второму порту соединителя трубки 1.
  3. Использование трубки, подключить третий порт соединителя трубы 1 к устройству концентрации кислорода монитора.
  4. С трубкой, подключить второй порт соединителя трубы 2 к выпускному отверстию анестезии машины.
  5. Использование трубки, подключить третий порт соединителя трубы 2 к выпускному отверстию устройства газовой смеси.
  6. Подключите один впускной порт устройства газовой смеси до высокого давления 95% O 2 - 5% CO 2 , газовый баллон с использованием трубки.
  7. Подключите другой впускной порт устройства газовой смеси с высоким давлением 95% N 2 - 5% CO 2 газового баллона с использованием трубки.
  8. Изменение скорости потока газа уплотнительнойе О 2 и N 2 с помощью поворотных регуляторов на устройстве газовой смеси.
  9. Проверить и отрегулировать FiO 2 с помощью устройства концентрации кислорода монитора.

4. Приобретение отражательных изображений Multispectral рассредоточенного

  1. Приобретение эталонных изображений
    Примечание: Оптические компоненты, используемые в данном эксперименте, такие как источник света, оптическое волокно, и детекторы имеют свои собственные спектральные характеристики. Таким образом, интенсивность света проходит через эти компоненты должны быть записаны в качестве опорного изображения. Эталонное изображение является изображением, полученным с помощью стандартного белого диффузора освещенного света от источника света.
    1. Поместите стандартный белый диффузор на сцене в горизонтальном направлении.
    2. Фокус объектив камеры на поверхности белого диффузора, вращая кольцо масштабирования на баррель.
    3. Отрегулируйте время интегрирования камеры, выбрав нужное значение изВыпадающий список времен интеграции в рабочем программном обеспечении камеры, так что наибольшее количество света вырабатывает сигнал, который составляет приблизительно 75% от максимального числа отсчетов. Наблюдая гистограмму значений пикселей, отрегулируйте время интегрирования, пока уровень интенсивности сигнала не составит приблизительно 75% максимального значения.
    4. Выберите команду «сохранить» в меню «Файл», чтобы сохранить изображение в файл.
    5. Измените расположение фильтра, вращая колесо фильтра.
    6. Сохраните изображение на других длинах волн в соответствии с процессом, описанным выше. Имя файла должно идентифицировать образец и используемую длину волны ( например, W500, W520, W540 ... W760).
  2. Приобретение образцов изображений
    Примечание. Изображения интенсивности диффузно отраженного света облученного мозга крыс на девяти длинах волн фиксируются и сохраняются на жестком диске персонального компьютера, используя те же условия приема.
    1. Осторожно поместите rна на сцене и медленно отрегулировать уровень ступени, так что камера может фокусироваться на поверхности мозга крысы.
    2. Выберите команду «Сохранить» из меню файла, чтобы сохранить изображение в файл.
    3. Изменение расположения фильтра путем поворота фильтра колеса.
    4. Сохранение изображения на других длинах волн, в соответствии со способом, описанным выше. Имя файла должно определить образец и длину волны (например, R500, R520, R540 ... R760).
  3. Приобретение темных изображений
    Примечание: ПЗС-камера может генерировать интенсивность света в ответ на электрический сигнал. Тем не менее, есть некоторые незначительные выход из-за шума в электрических цепях и детекторов, даже если свет не попадает на детектор; это называется темновой ток шума. Для того, чтобы точно измерить спектральную интенсивность света, темная составляющая тока должна быть записана в виде темного изображения, а затем вычитается из измеренного сигнала. Темное изображение является взятие изображенияп с путем света блокируется.
    1. Выключить источник света галогенной лампы.
    2. Блокировать световой путь к системе ПЗС-камеры с помощью экранирующей пластины.
    3. Выберите команду «Сохранить» из меню файла, чтобы сохранить изображение в файл. Имя файла должно идентифицировать образец (например, темный).

5. Визуализируя Гемоглобин Содержание и светорассеяние параметра

Примечание: Набор мультиспектральных изображений диффузного отражения сохраняется на жесткий диск персонального компьютера и проанализировано в автономном режиме. Множественный регрессионный анализ автоматизированного с помощью моделирования методом Монте - Карло 19 мультиспектральных диффузных изображений отражения в девяти длин волн (500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730 и 760 нм) Затем выполняется для визуализации двумерной карты окисленной концентрации гемоглобина, дезоксигенированная концентрация гемоглобина, общая концентрация гемоглобина, регионального мозгового насыщение кислорода и экскрементыдящая власть. Подробный алгоритм был опубликован в литературе 17, 18.

  1. Вычесть темное изображение как от эталонного изображения и изображения образца на каждую длину волны.
  2. Нормализация изображение образца по эталонному изображению на каждой длине волны. Treat нормализованного изображения в качестве диффузного отражательных изображений R.
  3. Вычислить оптическую плотность (или оптической плотности) изображения А, беря логарифм обратной величины диффузного отражения изображения R на каждой длине волны:
    figure-protocol-1 (1)
  4. Генерировать трехмерную матрицу путем укладки оптической плотности изображения в порядке их длин волн, где х - у самолета показывает структурную информацию , полученную на поверхности мозга , а г ось показывает спектральную информацию.
  5. Пеrform множественный регрессионный анализ для поглощения спектра А (X) в каждой координатные.
  6. Используйте абсорбцию спектр А (Х) в качестве зависимого переменного и молярного коэффициента экстинкции спектров оксигемоглобина е ГБО (X) и венозной гемоглобина х H (X) в качестве независимой переменных для шага 5.5 (опубликованные значений ε ГБО (λ) и ε HBr (λ), приведены в таблице 1).
  7. Проверьте двумерные карты (изображения) из трех коэффициентов множественной регрессии с ГБО с HBr, и 0.
  8. Сформировать трехмерную матрицу путем наложения изображения нескольких коэффициентов регрессии в порядке с ГБО в HBR, и 0, где y показывает структурную информацию, полученную для поверхности мозга, а ось z показывает коэффициенты множественной регрессии.
  9. Рассчитайте концентрацию оксигенированного гемоглобина C HbO , концентрацию дезоксигенированного гемоглобина C HbR и мощность рассеяния b из набора коэффициентов множественной регрессии a HbO , a HbR и a 0 при каждой координате xy, используя следующие эмпирические формулы (значения β HbO , i , β HbR , i и β 0, i ( i = 0,1,2,3) представлены в таблице 2 ):
    figure-protocol-2 (2)
    figure-protocol-3 (3)
    figure-protocol-4 (4)
  10. Проверьте двумерные карты (образов) окисленного концентрации гемоглобина С ГБО, в деоксигенированной концентрации гемоглобина С HBr, а мощность рассеяния б.
  11. Рассчитать двумерную карту общей концентрации гемоглобина C HBT путем суммирования C ГБО и C HBr при каждом х - координаты у.
  12. Рассчитать двумерную карту регионального мозгового насыщения кислородом RSO 2 путем деления концентрации гемоглобина кислородом С ГБО от общей концентрации гемоглобина C HBT в каждой точке х - координаты у.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Характерные спектральные изображения диффузного отражения , полученной из в естественных мозга крыс показаны на фигуре 3. Изображения на 500, 520, 540, 560, 570, и 580 нм четко визуализировать плотную сеть кровеносных сосудов в коре головного мозга. Ухудшение контраста между кровеносными сосудами и окружающими тканями, наблюдаемыми в изображениях при 600, 730 и 760 нме отражает более низкое поглощение света гемоглобина на дольше и NIR длины волн.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Наиболее важным шагом в этом протоколе является удаление из разреженной области черепа, чтобы сделать черепной окно; это должно быть выполнено тщательно, чтобы избежать неожиданного кровотечения. Этот шаг важен для получения высококачественного Multispectral диффузного отражения изображения с высокой точностью. Использование стереомикроскопа рекомендуется для хирургической процедуры, если это возможно. Небольшие кусочки желатиновой губки полезны для гемостаза.

Оптическая система описаны в эт...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Часть этой работы была поддержана грантом на научные исследования (C) от Японского общества содействия науке (25350520, 22500401, 15K06105) и проектом исследований и разработок ITC-PAC армии США (FA5209-15-P-0175).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Источник света галогенной лампы мощностью 150 ВтHayashi Watch Works Co., Ltd, Токио, ЯпонияLA-150SAE
СветоводHayashi Watch Works Co., Ltd, Токио,Япония LGC1-5L1000
Собирающий объективHayashi Watch Works Co., Ltd, Токио, ЯпонияSH-F16
Интерференционные фильтры l@ 500 нмEdmund Optics Japan Ltd, Токио, Япония#65088
Интерференционные фильтры l@ 520 нмEdmund Optics Japan Ltd, Токио, Япония#65093
Интерференционные фильтры l@ 540 нмEdmund Optics Japan Ltd, Токио, Япония#65096
Интерференционные фильтры l@ 560 нмEdmund Optics Japan Ltd, Токио, Япония#67766
Интерференционные фильтры l@ 570 нмEdmund Optics Japan Ltd, Токио, Япония#67767
Интерференционные фильтры l@ 580 нмEdmund Optics Japan Ltd, Токио, Япония#65646
Интерференционные фильтры l@ 600 нмEdmund Optics Japan Ltd, Токио, Япония#65102
Интерференционные фильтры l@ 730 нмEdmund Optics Japan Ltd, Токио, Япония#65115
Интерференционные фильтры l@ 760 нмEdmund Optics Japan Ltd, Токио, Япония#67777
Моторизованное фильтрующее колесо Andover Corporation, NH, СШАFW-MOT-12.5
8-битная монохроматическая ПЗС-камераTHE IMAGINGSOURCE, ГерманияDMK21BU618. H
Видеозум-объективEdmund Optics Japan Ltd, Токио, ЯпонияVZMTM300i
Спектралон белый стандарт с 99% диффузным отражениемLabsphere Incorporated, North Sutton, NH, СШАSRS-99-020

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bonhoeffer, T., Grinvald, A. Optical Imaging based on intrinsic signals: the methodology. Brain mapping; the methods. Toga, A. W., Mazziotta, J. C. , Academic Press. San Diego. 55-97 (1996).
  2. Mourant, J. R., et al. Mechanisms of light scattering from biological cells relevant to noninvasive optical-tissue diagnostics. Appl. Opt. 37 (16), 3586-3593 (1998).
  3. Abookasis, D., et al. Imaging cortical absorption, scattering, and hemodynamic response during ischemic stroke using spatially modulated near-infrared illumination. J. Biomed. Opt. 14 (2), 024033(2009).
  4. Lipton, P. Ischemic cell death in brain neuron. Physiol. Rev. 79 (4), 1432-1568 (1999).
  5. Jarvis, C. R., Anderson, T. R., Andrew, R. D. Anoxic depolarization mediates acute damage independent of glutamate in neocortical brain slices. Cereb. Cortex. 11 (3), 249-259 (2001).
  6. Joshi, I., Andrew, R. D. Imaging anoxic depolarization during ischemia-like conditions in the mouse hemi-brain slice. J. Neurophysiol. 85 (1), 414-424 (2001).
  7. Polischuk, T. M., Jarvis, C. R., Andrew, R. D. Intrinsic optical signaling denoting neuronal damage in response to acute excitotoxic insult in the hippocampal slice. Neurobiol. Dis. 4 (6), 423-437 (1998).
  8. Jarvis, C. R., Lilge, L., Vipond, G. J., Andrew, R. D. Interpretation of intrinsic optical signals and calcein fluorescence during acute excitotoxic insult in the hippocampal slice. NeuroImage. 10 (4), 357-372 (1999).
  9. Obeidat, A. S., Jarvis, C. R., Andrew, R. D. Glutamate does not mediate acute neuronal damage after spreading depression induced by O2/glucose deprivation in the hippocampal slice. J. Cereb. Blood Flow Metab. 20 (2), 412-422 (2000).
  10. Dunn, A. K., Devor, A., Dale, A. M., Boas, D. A. Spatial extent of oxygen metabolism and hemodynamic changes during functional activation of the rat somatosensory cortex. Neuroimage. 27 (2), 279-290 (2005).
  11. Jones, M., Berwick, J., Johnston, D., Mayhew, J. Concurrent optical imaging spectroscopy and laser-Doppler flowmetry: the relationship between blood flow, oxygenation, and volume in rodent barrel cortex. Neuroimage. 13 (6), 1002-1015 (2001).
  12. Jones, M., Berwick, J., Mayhew, J. Changes in blood flow, oxygenation, and volume following extended stimulation of rodent barrel cortex. Neuroimage. 15 (3), 474-487 (2002).
  13. Zhou, C., et al. Diffuse optical correlation tomography of cerebral blood flow during cortical spreading depression in rat brain. Opt. Express. 14 (3), 1125-1144 (2006).
  14. Bouchard, M. B., Chen, B. R., Burgess, S. A., Hillman, E. M. C. Ultra-fast multispectral optical imaging of cortical oxygenation, blood flow, and intracellular calcium dynamics. Opt. Express. 17 (18), 15670-15678 (2009).
  15. Jones, P. B., et al. Simultaneous multispectral reflectance imaging and laser speckle flowmetry of cerebral blood flow and oxygen metabolism in focal cerebral ischemia. J. Biomed. Opt. 13 (4), 044007(2008).
  16. Kawauchi, S., et al. Diffuse light reflectance signals as potential indicators of loss of viability in brain tissue due to hypoxia: charge-coupled-device-based imaging and fiber-based measurement. J. Biomed. Opt. 18 (1), 015003(2013).
  17. Yoshida, K., et al. Multispectral imaging of absorption and scattering properties of in vivo exposed rat brain using a digital red-green-blue camera. J. Biomed. Opt. 20 (5), 051026(2015).
  18. Nishidate, I., et al. Evaluation of Cerebral Hemodynamics and Tissue Morphology of In Vivo Rat Brain Using Spectral Diffuse Reflectance Imaging. Appl. Spectrosc. , (2016).
  19. Wang, L. -H., Jacques, S. L., Zheng, L. -Q. MCML-Monte Carlo modeling of photon transport in multi-layered tissues. Comput. Methods Programs Biomed. 47 (2), 131-146 (1995).
  20. Tsytsarev, V., Premachandra, K., Takeshita, D., Bahar, S. Imaging cortical electrical stimulation in vivo: Fast intrinsic optical signal versus voltage-sensitive dyes. Opt. Lett. 33 (9), 1032-1034 (2008).
  21. Arnold, T., Biasio, M. D., Leitner, R. Hyper-spectral video endoscope for intra-surgery tissue classification using auto-fluorescence and reflectance spectroscopy. Proc. SPIE. 8087, 808711(2011).
  22. Basiri, A., et al. Use of a multi-spectral camera in the characterization of skin wounds. Opt. Express. 18 (4), 3244-3257 (2010).
  23. Nishidate, I., Maeda, T., Niizeki, K., Aizu, Y. Estimation of melanin and hemoglobin using spectral reflectance images reconstructed from a digital RGB image by the Wiener estimation method. Sensors. 13 (6), 7902-7915 (2013).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Multispectral Diffuse Reflectance ImagingCerebral HemodynamicsLight Scattering PropertiesIn Vivo Rat BrainCranial Window PreparationGas Mixture DeviceMonte Carlo SimulationMultiple Regression AnalysisHemoglobin ConcentrationOxygenation State

Related Articles