Методическая статья

Масс-спектрометрия и люминогенные подходы, основанные на Охарактеризуйте Фазу I метаболических компетентности в

12.8K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/55502

⸱

28 марта 2017 г.

 , 
1Research and Development, British American Tobacco

В этой статье

Краткое содержание

Метаболическая правомочность систем в пробирке является ключевым требованием для биотрансформации и утилизации наркотиков и токсикантов. В этом протоколе мы опишем применение эталонных метаболических зондов для оценки фазы I метаболизма в клеточных культурах.

Аннотация

Ксенобиотические метаболизируя ферменты играют ключевую роль в биотрансформации лекарственных средств и токсиканты путем добавления функциональных групп, которые увеличивают растворимость и облегчают выведение. В некоторых случаях эти структурные модификации приводят к образованию новых токсичных продуктов. Для того, чтобы уменьшить испытания на животное, химические риски могут быть оценены с помощью метаболический компетентных клеток. Экспрессия метаболических ферментов, однако, не является стабильной в течение долгого времени во многих системах в пробирке первичной культуры и часто частичный или отсутствуют в клеточных линиях. Таким образом, изучение лекарственных средств, добавок и загрязнители окружающей среды метаболизма в пробирке в идеале должно быть проведено в клеточных системах , где метаболическая активность была охарактеризована. Пояснит здесь подход для измерения активности класса ферментов метаболизма (Human Phase I) в клеточных линиях 2D и 3D первичных культурах с использованием химических зондов и их продуктов метаболизма количественных с помощью масс-спектрометрии UPLC иluminometry. Способ может быть реализован, чтобы проверить метаболическую активность в клеточных линий и первичных клеток, полученных из различных тканей.

Введение

Ксенобиотиков метаболизм является процессом , посредством которого химические вещества , чуждые тела изменены путем добавления гидрофильных групп и конъюгатов для облегчения их экскреции 1. Как правило , метаболизм ксенобиотиков является двухстадийный процесс с этапа I , состоящей в основном из окисления с добавлением одного или нескольких гидроксильных групп 1, 2. В фазе II, гидроксильные группы, используются в качестве акцепторов для гидрофильного конъюгата , таких как глюкурониды или сульфат фрагмент 1, 2. Если акцептор группа уже присутствует на молекулах, стадия конъюгации может происходить независимо от стадии I метаболизма. Каждая реакция осуществляют с помощью определенной группы ферментов, например, CYPs (цитохром Р450), которые катализируют гидроксилирование (рисунок 1) и деалкилирования химических субстратов 3. Conjugatioп катализируется sulfotransferases, UDP-glucuronosyltransferases (Фигура 1), глутатион-S-трансферазы и N-ацетилтрансферазы 4. Каждые ткани и органы будут иметь специфический метаболический профиль экспрессии фермента, с печенью, выражающим большинством из этих белков.

figure-introduction-1
Рисунок 1: Пример фаза I и фаза II метаболизма для кумарина. CYP2A6 / CYP2A13 катализировать 7-гидроксилирование кумарина. 7-гидроксикумарин конъюгирован с фрагментом глюкуронид с помощью фазы II ферментов ЕСГА с UGT1A6 и UGT1A9 показывают самую высокую активность.

Понимание метаболизма ксенобиотиков имеет решающее значение в оценке безопасности лекарственных средств и для оценки химического риска по двум причинам: кинетика реакции будет определять, как долго препарат или химическое вещество остается в организме в активной или неактивной форме бEfore экскреции; и исходное соединение может быть модифицировано для более реактивных, нестабильных и токсичных видов метаболических ферментов. Такие реакции , также известные как «биоактивация» в основном обусловлены фазой I CYP ферменты , но и на более редких случаях с помощью фазы II конъюгации 5.

Исходя из этого, способность модели ин витро точно предсказать риск , связанный с лекарственным средством или химическим веществом , сильно зависит от метаболической компетенции клеточной системы. Клеточные линии , полученные из пораженных тканей или из трансформации нормальных клеток часто теряют часть , если не все из метаболического профиля фермента представителя их ткани происхождения 6. Поддержание нормального метаболического профиля фермента появляется лучше в первичных клеточных культурах (по крайней мере в краткосрочных культурах) и дополнительно улучшается , если ткань культивирует в матрице , что позволяет ему сохранить свою 3D структуру 1. Таким образом, символтеристика метаболической компетентности системы клеток в пробирке является важным предварительным шагом в руководстве решения о том, каких моделях клеток целесообразны проводить химические оценки безопасности.

В данной работе мы приводим протокол к профилю активности и экспрессии Фаза I CYP ферментов в пробирке с примерами их применения с печеночной клеточной линии 7 и 3D культур клеток первичной легочной 8. CYP специфические субстраты, их продукты метаболизма и ингибитор управление описано наряду с массовым spectrometry- и методами количественной оценки люминогенной основой. Поскольку некоторые CYPs индуцируется и другие конститутивные, примеры также будут приведены для этих двух сценариев.

Протокол

Примечание: Общий рабочий процесс для анализа метаболической активности изложен на рисунке 2. Каждый шаг этого процесса впоследствии подробно описан в следующих параграфах. Подробные таблицы реагентов и оборудования приведены в таблице материалов.

figure-protocol-1
Рисунок 2: Последовательность действий при метаболическом Probe Assay. Клетки высевают и выращивают до адекватной плотности. Индукционный шаг CYP может потребоваться в зависимости от активности фермента анализировали. Субстрат и ингибитор зонда добавляют к клеточной культуре. После периода инкубации среду собирали для анализа, и клетки лизируют для количественного определения белка. Среда обрабатывается для анализа метаболического продукта субстрата зонда с помощью масс-спектрометрии или luminometry.объявления / 55502 / 55502fig2large.jpg»целевых =„_blank“> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

1. Культура клеток

figure-protocol-2
Рисунок 3: Светопропускание Микрография из печени клеточной линии культуры. Линия клеток описаны в данном протоколе-обычно дифференцируется с 50% расколом между холангиоцит и гепатоцит в культуре (100й). Шкала бар = 100 мкм. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

  1. Печеночная культуры клеток линии
    Примечание: коммерчески доступные линии печеночной клетки использовали в качестве примера метаболический компетентных клеток. Клеточная линия была получена из гепатокарциномы , вызванной вирусной инфекцией 7, При конфлюэнтности, эта клеточная линия дифференцируется в cholangiocyte- и гепатоцитов-подобных клеток (фиг.3) , и дальнейшие детали могут быть найдены в Guillouzo 7. Включение 2% ДМСО в культуральной среде поддерживает дифференциацию этой клеточной линии и экспрессии различных CYPs.
    1. Удалите криогенные флаконы с клетками из жидкого азота и помещают на сухой лед для транспортировки. Перенести криопробирку на водяной бане, предварительно подогретой до 37 ° С в течение 1-2 мин, и стерилизовать снаружи флакона с 70% -ным этанолом до размещения в вытяжном шкафу с ламинарным потоком.
    2. Во время работы в стерильных условиях, осторожно откройте криогенный флакон, чтобы освободить любое избыточное давление и пипетку содержимого флакона криогенного в 10 мл пробирку, заполненную 9 мл среды Е подогретого Уильямса при 37 ° C.
    3. Центрифуга раствор в течение 10 мин при 400 мкг при комнатной температуре, отбросить супернатант и ресуспендирования клеток в 5 млзапатентованная оттепели среда предварительно нагревают при температуре 37 ° С, с добавлением глутамина или глутамина добавки (конечная концентрация 2 мМ) (Williams' Е + глутамин + дополнение оттаивание добавки).
    4. Количество жизнеспособных клеток с использованием 500 мкл аликвоты с помощью счетчика клеток или любым другим подходящим способом подсчета клеток.
    5. Семенной клетки в тарелке коллагена покрытием 24-луночного при плотности 0,6 × 10 6 жизнеспособных клеток / лунку в конечном объеме 0,5 мл среды оттепели.
    6. Поместите пластину (ы) в термостате при 37 ° С с 5% / 95% СО 2 / воздух и 100% относительной влажности.
    7. Через 24 ч после посева клеток, заменить среду с 0,5 мл предварительно нагретого обслуживания / метаболизма рабочей среды (Williams' E + глутамин + дополнение метаболизма добавки (эта среда уже содержит ДМСО)). Изменение среды каждые два дня.
    8. Через несколько дней в культуре клетки образуют подкласс-вырожденная структуру трабекулярной (рисунок 3). Оптимальная метаболическийАктивность, как правило, наблюдается между 7-й день и 10, и является самым низким в 4-й день.

figure-protocol-3
Рисунок 4: Поперечное сечение Альциановой Голубой Окраска клетки дыхательных путей , выращенной в воздушно-жидкостном интерфейсе 8.
Ресничные, продуцирующих слизь и базальные клетки хорошо видны. Шкала бар = 250 мкм.

  1. Дифференцированные культуры эпителия дыхательных путей
    Примечание: Протокол показан с коммерчески доступного полностью дифференцированного первичного эпителия дыхательных путей , выращенных на границе раздела воздух-жидкость на вкладыш 8 (фиг.4). Культура ткани сохраняет мукоцилиарный фенотип и полярность клеток 8. Клетки могут быть назального или бронхиальной происхождения. Здесь используют носовые клетки человека. Клетки доставляются по формату культурального планшета с 24вставляет на границе раздела воздух-жидкость. Для того, чтобы облегчить транспортировку и избежать утечек среды вставки поставляется с базальной секцией встроенной в агарозной матрице, смешанной с культуральной средой.
    1. При доставке клеток, стерилизовать пластины, содержащие 24 вставки с 70% -ным раствором этанола до размещения в чистом ламинарном потоке.
    2. Подготовьте стерильный 24-луночный планшет, добавив предварительно нагретом 700 мкл культуральной среды патентованный.
    3. Использование стерильных пинцетов перенос вставки клеток на новую пластину предварительно нагруженной среды, осторожно выбивание вставки из агарозной матрицы.
    4. Поместите пластину (ы) в термостате при 37 ° С с 5% / 95% СО 2 / воздух и 100% относительной влажности.
    5. Каждые 2 дня передача вставок на новом стерильный 24-луночный планшет предварительно загруженный с 700 мкла теплой собственной дыхательными путями клеточных культуральной средой.
    6. Оценка целостности ткани дыхательных путей, используя методы, такие как транс-эпителиального сопротивления (TEER), илиреснички бьют частоту (CBF) с помощью микроскопа , снабженного системой 9 формирования изображения живого видео. Измерение TEER и CBF описан в Kuehn 10.

2. CYP активность Количественная в культурах клеток

Примечание: В качестве общего правила, растворители , такие как ДМСО и метанола могут быть использованы для получения исходных растворов для различных метаболических зондов и ингибиторов , представленных в настоящем документе. Тем не менее, рекомендуется, чтобы сохранить конечную концентрацию ДМСО в культуральной среде до минимума (1% или ниже), так как высокие концентрации могут ингибировать метаболические ферменты. Когда это возможно, он также рекомендуется использовать фенол красный свободный и безсывороточную среду во время инкубации с метаболическими зондами, так как фенол красного цвет может помешать CYPs и активности ферментов II фазы и компоненте сыворотки, таким как альбумин может снизить доступность зонда. Это не всегда возможно строго придерживаться этих методические рекомендации. Так, например, в дыхательных путях клеточная культуральная среда является частной собственностью и содержит фенол красный. Собственная печеночная клеточная линия метаболизм среда 7 уже содержит ДМСО выше 1% , как это требуется для клетки принять гепатоцит-подобный фенотип.

Примечание: И, наконец, здесь, термин специфического зонда / ингибитор используется , но эта терминология должна рассматриваться с осторожностью. В самом деле, это очень редко метаболический зонд представлять собой фермент эксклюзивный субстрат. Зонды, описанные здесь, однако, имеют высокое сродство к мишени их фермента и, следовательно, считаются надежными маркерами активности.

  1. Метаболические зонды, индукторы и ингибиторы
    1. Зонды с использованием методов, основанных масс-спектрометрии
      Примечание: Зонды и ингибиторы , описанные в этом разделе , являются подходящими для проверки активности CYP2As 11, CYP1A2 12,исе "> 13, CYP2B6 7, 14, CYP2F1 15, 16 и CYP2E1 17 с помощью UPLC-масса - спектрометрии. Зонды, ингибиторы и соответствующие CYP описаны в таблице 1 , с соответствующими ссылками. В таблице 1 также приведена метаболический продукт CYP деятельность, которая количественно с помощью масс-спектрометрии. Все работы, связанные культуры и решения тканей для использования в культуре ткани должна быть проведена в стерильной капот культуры ткани. Исходный раствор может быть получен в ДМСО для всех пробных субстратов.
      1. До начала эксперимента подготовить две серии клеточных вставок или скважин, использует одну серию для эксперимента ингибирования, а другая только для метаболического зонда. Подготовьте третью серию клеток в качестве среды пустого контроля. Они могут быть на отдельных пластинах или в одних и тех же пластинах с минимумом трех повторов. Пример пластины лежалииз представлен на рисунке 5.
      2. В день эксперимента, заменить клеточную культуральную среду с 450 мкл свежей среды.
      3. Подготовьте в стерильном капоте 10x концентрации из следующих растворов с использованием клеточных культуральной среды. Смешайте 10x CYP зонд, ингибитор CYP, 10x и 10x ингибитор CYP плюс 10x зонд.
        Примечание: Мастер исходные растворы ингибитора и зонда могут быть получены в 100% ДМСО (например, 1,000x запасы) и дополнительно разбавленные в средствах массовой информации , чтобы получить 10 - кратный раствор для того , чтобы избежать конечной концентрации ДМСО свыше 1% с культурой клеток , Конечные концентрации 1x, которые направлены для инкубации с клетками, показаны в таблице 1.
      4. Фильтр другого решения 10x зонда с шприцевым фильтром 0,2 мкм.
      5. Добавьте 50 мкл среды, содержащей ингибитор CYP 10x к серии клеток, полученных для ингибирования эксперимента и предварительно инкубируют в течение 30 мин.
      6. рeplace среду клеток в серии ингибирования с 450 мкл свежей среды и добавляют 50 мкл среды, содержащей как ингибитор CYP 10х и 10х подложку зонда.
      7. Добавить в другие ячейки 50 мкл среды с зондом подложки 10 - кратным и добавить эквивалентное количество транспортного средства , разбавленный в среде (например, ДМСО) в черновые контрольных клеток , как показано на рисунке 5.
      8. Инкубируйте клетки при 0 - 5 мин (время 0, контроль фона) и 16 ч в инкубаторе клеток.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Это время инкубации было успешно использовано с клетками дыхательных путей и линией клеток печени; Однако свежие первичные гепатоциты имеют высокую метаболическую компетентность, до качества клеточного препарата и генетический состав донора, следовательно , более короткое время (например, 2-4 ч) может быть приемлемым. Всегда рекомендуются проводить эксперимент курсового времени при тестировании различных клеточных линий или типов клеток.
      9. В конце инкубационного периода, CollECT среда в отдельных промаркированных пробирках для количественного определения метаболического продукта из зондов. Замораживание среды для дальнейшей обработки.
      10. Лизировать клетки для белка квантификации.
        Примечание: Любой стандартный набор белков Количественного и протокол является подходящим для этого шага. ВСА один подходящий вариант. Этот шаг является необязательным, если клетки должны быть использованы в другом анализе.
    2. Средняя лечение
      Примечание: Среда собрана из инкубационной стадии содержит родительский химические зонда, а также его метаболические продукты. Для измерения удельной активности CYP только продукт реакции, катализируемой CYP интереса должны быть определены количественно. Фаза I продукты метаболизма часто обрабатываются в тандеме с вторым этапом метаболизма (конъюгацией) и, следовательно, не могут быть обнаружены как таковые. Таким образом, для того, чтобы получить наиболее точную количественную оценку активности в CYP, шаг деконьюгации требуется, чтобы удалить какой-либоФаза II метаболизма модификации. Так как конъюгация фазы I метаболитов часто включает глюкуронидацию или сульфатирование, деконьюгации достигается путем обработки образцов глюкуронидаз и сульфатазы 18. Глюкуронидаза и сульфатазы активность зависит от рН с самой высокой глюкуронидазы активности достигается при рН 4,5-5,0 и активность сульфатазы быть высоким при рН 6,0-6,5. Таким образом, этот шаг требует корректировки рН. В способе, описанном здесь, мы измеряем рН с помощью рН полоски по практическим соображениям, так как метр зонды наиболее рН не помещаются в 1,5 мл микроцентрифужных трубки. Коммерчески доступные полосы рН могут быть найдены с разрешением как низко как 0,3 до 0,2 единиц рН.
      1. Передача 250 мкл инкубационной среды в 1,5 мл микропробирки и добавляют 4-метилумбеллиферона внутренний стандарт исходного раствора, чтобы достичь конечной концентрации 100 нМ.
      2. Доводят рН среды до 4,5-5,0 добавлением 1 М HCl. Добавить 1 мкл HCl в то время и проверить рНс помощью пипетки 2 мкл среды на рН полосы. Достижение рН 5,0, как правило, не требуется не более 5-10 мкл 1 М HCl.
      3. Добавьте 150 единиц (1,8 мклы на 85000 единиц / мл) от запаса β-глюкуронидаза / арилсульфатаза от виноградной улитки и инкубируют в течение 1 ч при 37 ° С. Остановить реакцию добавлением 250 мкл холодного метанола (-20 ° С). Хранить образцы при -20 ° C или процессе дальнейшего.
      4. Растворитель выпаривают с использованием вакуумной центрифуги при 45 ° C. Развести образцы с 500 мкл 30% ацетонитрила в: водный раствор. Образцы готовы для масс-спектрометрического анализа, и можно хранить при температуре -20 ° С в Амбер Гласс флаконов.
    3. Масс - спектрометрия на основе количественного определения
      Примечание: Все UP и масс - спектрометр настройка подробно описана в специальной Дополнительной таблице 1. Для количественного анализа, создание калибровочной кривой требуется. CaliКривое расслоение получаются путем выполнения известного диапазона разбавления соединения должны быть определены количественно. В этом случае калибровочные кривые были получены более 10 различных концентраций (Таблица 2), по меньшей мере , 6 из которых должно быть в пределах 20% от линейного диапазона 19. Самый низкий уровень обнаружения определяется как самая низкая концентрация, которая дает сигнал больше или равна 3x среднего сигнала фона. Самый низкий уровень количественной оценки определяются как образец самого низкой концентрации, которая дает сигнал больше или равен 10й среднее фонового сигнала оба из которых определяется по меньшей мере, 3 независимых опыты с образцами в трех повторах.
      1. Приготовьте серийное разведение синтетического метаболита в тканевой культуральной среде в соответствии с таблицей 2, в том числе внутреннего стандарта. Окончательный объем 250 мкл на стандартном разведении является адекватным.
      2. Упаривают серийные разведения стандарта, как описано в стер 2.1.2.4 и ресуспендируют в объеме 30% ацетонитрил: вода эквивалентен объему носителя предварительного испарения (например, 250 мкл 30% ацетонитрил: вода , если исходный стандартный раствор 250 мкл среда).
      3. Добавьте 250 мкл каждого последовательного разбавления стандарта до нтарного UPLC стеклянный флакон для инъекций в автосамплером UPLC-MS.
      4. Добавить тестовые образцы (250 мкл) до янтарного UPLC ампул и поместить их в автосамплера UPLC.
      5. Перемешать все ампулы.
        Примечание: Конфигурация масс - спектрометра мы использовали представляет собой гибрид тройного квадрупольные / линейной ионной ловушки масс - спектрометр , соединенный с UPLC подробным в Дополнительной таблице 1. Другие платформы будут иметь различное программное обеспечение и конфигурацию, но будут следовать аналогичным шагам, чтобы выполнить количественную оценку.
      6. Запуск UPLC-MS , используя параметры , описанные в таблице 1 Дополнительной в зависимости от конкретного зонда для количественной оценки.
      7. использование«количественного - Построить Количественный способ» инструмент в массовых инструментов спектрометр количественного определения (таблица материалов) для генерирования калибровочной кривой из полученного синтетического стандарта и внутреннего стандарта.
      8. Используйте «Количественное определение мастера», чтобы выбрать партию образцов и образцов для количественной оценки и выполнить команду «Количественное определение метода». Программное обеспечение масс-спектрометр Количественное отображает таблицу со значениями количественного целевого соединения в каждом тестируемом образце.
    4. Зонды , использующие люминесценция на основе методов
      Примечание: люминогенные зонды для измерения ряда мероприятий CYP является коммерчески доступным; Однако, не все они подходят для анализов на основе клеток. Здесь протокол представлен для измерения активности CYP1A1 / CYP1B1. CYP1A1 / 1B1 был выбран, чтобы проиллюстрировать, как для анализа активности индуцируемой CY и дать пример того, как люминогенные зонды может быть использована в качестве альтерародной для массовых методов спектрометрии на основе. В таблице 3 приведена концентрациями и инкубационное время мы использовали для клеток дыхательных путей и линии клеток печени; Однако, те, возможно, должны быть адаптированы для других типов клеток. Другие люминогенных зонды являются коммерчески доступными и могут быть использованы в качестве подложек для различных CYPs.
      1. Подготовьте достаточное количество клеток, чтобы включать в себя неиндуцируемую контроль, индуцированный тест, и индуцированный + ингибитор тест. Пример компоновки пластины показан на фигуре 5В.
      2. Для того, чтобы побудить CYP1A1 / 1B1, инкубировать клетки с конечной концентрацией 10 нМ ТХДД в среде в течение периода 72 ч (более короткие периоды от 24 до 48 ч также могут быть пригодны).
        ВНИМАНИЕ: ТХДД является канцерогеном и тератогенным. Используйте соответствующие средства защиты, ознакомьтесь с поставщиком MSDS лист и выполнить оценку риска перед использованием.
      3. После этого периода, удалить среды, промыть лунки с PBS, 3 раза, и добавить свежую среду.
      4. PrIOR для инкубации клеток с люминогенных репортерным зондом, предварительно инкубировать назначенное подмножество индуцированных клеток в течение 30 мин при конечной концентрации 10 мкМ CYP1A1 / 1B1 ингибитор альфа-naphthoflavone, в среде.
      5. Добавьте люминогенный зонд LUC-CEE (Люциферин 6'-хлорэтил эфир) при конечной концентрации 50 мкМ до неиндуцируемых, индуцированных и индуцированных + ингибитора клеток.
      6. Выдержите в течение 4 ч в инкубаторе для клеточных культур. В конце периода инкубации собирает среду для количественного определения люминогенного зонда.
      7. Передача 25 мкл культуральной среды в виде белого непрозрачного 96-луночного планшета и добавляют 25 мкл реагента для детекции люциферин от изготовителя. Инкубирую в течение 20 мин при комнатной температуре. Прочитайте пластину немедленно с помощью фотометра.
      8. Промыть клетки с PBS и лизируют для общего белка квантификации.
        Примечание: Этот шаг не является обязательным , если живые клетки сохраняются для будущих экспериментов. ят Однако важно отметить, что индукторы, такие как ТХДД токсичны и могут повредить клетки.

figure-protocol-4
Таблица 1: Список Метаболических Зондов, продукты, и ингибиторов с их соответствующим ферментом. Молекулярная масса и рекомендуемые концентрации, используемые при дыхательных путях и клетке печени также показаны. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

figure-protocol-5
Рисунок 5: Предлагаемые 24-луночного Layout Тарелка Выполнить CYP анализа. (А) Рекомендуемый макет для CYPs конститутивна экспрессируемой включает в себя ряд скважин для заготовки среды, Метаболический зонд, и ингибитор метаболического зонда плюса. Такая компоновка может быть умножена на количество временных точек, которые проходят испытания. (В) Примере компоновка для индуцируемых CYPs включает в себя ряд хорошо для средней заготовки, метаболический зонд только контроль, индуцированные клетки (например, с ТХДДОМ) инкубируют с зондами и инкубируют с зондами и ингибитором.

figure-protocol-6
Таблица 2: Разбавление синтетических стандартов , используемых для калибровочных кривых и соответствующей LODs и LOQs. Диапазон разбавления для использования может изменяться в зависимости от массовой платформы спектрометрии и чувствительности. Здесь мы использовали гибридный тройной квадрупольные / линейную ионной ловушки масс-спектрометр, связанный с UPLC. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этогоцифра.

figure-protocol-7
Таблица 3: люминогенный зонд, индуктор и Ингибитор для CYP1A1 / 1B1 анализ. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Результаты

Примеры метаболической активности , измеренные для двух пар CYPs (CYP1A1 / 1B1 и CYP2A6 / 2A13) в культурах дыхательных путей клеток от трех различных доноров (дыхательные пути M360, M370, M417) и печеночной клеточной линии (Нер линии) показаны на рисунке- 20.

CYP активность , измеренная с помощью luminometry
На фиг.6О показано относительное свечение производимого CYP1A1 / 1B1 О-деалкилирование активности Luc-CEE (Люциферин 6'-хлорэтил) эфир в клетках дыхательных путей (3) и доноров клетки печени с и без ТХДДА индукции. CYP1A1 / 1B1 являются весьма индуцируемые ферменты, и, как правило, не выражены на конститутивной уровне в большинстве тканей. Как можно видеть на фиг.6Ы, не люминогенный сигнал не обнаружен , когда клетка не индуцируется. Когда оба типа клеток предварительно инкубируют с ТХДД, сильным CYP1A1 / 1B1 индуктора, знакСигнал Ed люминогенных обнаруживается по сравнению с контролем (фиг 6А). Это указывает на то, что зонд-Люк СЕЕ был усвоен ведущий к освобождению от люциферин остатка, который затем количественно. В целом деятельность от ТХДДА обработанной линии клеток печени ниже, чем для клеток дыхательных путей, даже после полной нормализации белка. Это не является необычным, так как клеточные линии, как правило, менее метаболически активны, чем первичные клетки. Добавление альфа-naphthoflavone имеет четкий ингибирующий эффект на CYP1A1 / 1B1 активности во всех типах клеток, которые еще раз подтверждают CYP-зависимость метаболизма Люк-CEE.

Количественное CYP450 метаболитов с использованием UPLC-MS
На фиг.6В показано количественное определение CYP2A6 / 2A13 активности в клетках дыхательных путей от 3 доноров ( в дыхательных путях M343, M345, M347) и печеночных клеток (Нер линия) после инкубации с кумарина в присутствии и в отсутствие inhibitor 8-метоксипсорален. Данные нормализованы на общие белка. В контроле кумарин инкубационного 0 мин, нет 7-гидроксикумарина не обнаружено (фиг.). CYP2A6 / 2A13 выражены конститутивен в некоторых тканях и, следовательно, после 16 ч инкубации с образованием кумарина 7-гидроксикумарина обнаруживается в различных типах клеток, испытанных, даже без индукции. Когда 8-метоксипсорально, ингибитор CYP2A добавляется (фиг.), образование 7-гидроксикумарина значительно снижаются.

Следует отметить, что в присутствии ингибитора CYP, это нормально, все еще обнаруживают некоторую остаточную активность, как ингибирование является полным и редко, так как другие CYPs могут также быть в состоянии распознавать субстрат, но обрабатывать его гораздо менее эффективно. Кроме того, можно наблюдать, что записанная метаболическая активность может отличаться от доноров при использовании первичных клеток, как это видно на CYP2A6 в клетках дыхательных путей(Фиг.6В). Ожидается, что это, как активность CYP подлежит генотипа и полиморфизмов каждого донора.

figure-results-1
Рисунок 6: Анализ активности Результат для CYP1A1 / 1B1 активность (А) и CYP2A6 / 2A13 активности (В) в линии клеток печени , и в трех дыхательных путях клеток доноров (M360, M370, M417). (А) Люк-CEE деалкилирования активность проявляется и без индукции CYP1A1 / 1B1 ТГЖД. α-naphthoflavone был использован в качестве ингибитора CYP1A1 / 1B1. Активность выражают в виде относительных единицах люминесценции (RLU), нормированных по времени инкубации в течение нескольких минут (мин) и общего белка (мг). (B) CYP2A6 / 2A13 не требуют индукции , как они выражаются конститутивно. Кумарин 7-гидроксилирование активность в пмоль / мин / мг белка показана в различные моменты времени с и без ингибитора 8-methoxypsorAlen. Все результаты представлены в виде среднего значения трех независимых измерений с использованием стандартных отклонений от среднего. Эта цифра была изменена от Baxter 20.

Справочная таблица 1: UPLC и массовые параметры спектрометров. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.

Обсуждение

В настоящее время многие стандартные токсикологические испытания системы используют Engineered бактерии, клеточные линии, или эмбриональные клетки, которые не представляют нормального метаболизма человека 1. Это может привести к неточным прогнозам потенциальной токсической активности химических или медицины. Новаторский в моделях пробирки, такие как клеточные культуры и 3D орган на чипе, в настоящее время разрабатываются в попытке лучше повторить нормальную морфологию и метаболическую активность тканей человека 21, 22, 23. Метаболический компетенция один критерий, который может быть использован, чтобы расшифровать, какие модели лучше всего подходит для оценки и биотрансформации наркотиков исследований токсикологических.

Протокол мы изложили в этой статье, предназначен для измерения активности ферментов CYP с использованием живых клеток. Он гибок и может быть использован для различных клеточных систем в 2D или 3D КУЛЬТУРЕх года, и предлагает возможность использовать либо люминогенный зондовый или массовый подход спектрометрии на основе. Оба метода достаточно чувствительны, чтобы обнаружить нанограммовые количества материалов и требуют лишь небольшого числа клеток, выращенных в многоямного формате. Они также могут быть применены к сфероида или клетки, выращенные в комплексных матриц. Выбор подложки зонда, очевидно, является важным элементом протокола. Специфичность анализа опирается на зонде избирательности от CYP фермента и другого слоя обеспечения может быть получен путем использования селективного ингибитора CYP. Субстраты и ингибиторы, перечисленные в настоящем документе, являются всего лишь несколько примеров, но другие могут быть найдены в литературе.

Это важно учитывать несколько раз инкубации при работе с новым типом клеток в результате отрицательного CYP активности может быть связано с ферментом выражается на низком уровне. Добавление типа клеток, которые могут быть использованы в качестве положительного контроля желательно, чтобы гарантировать, чтоОтрицательный результат не связан с технической проблемой и помочь с любым устранением неполадок. Первичные клетки печени метаболически компетентным и могут быть использованы в качестве контроля, например, первичные гепатоциты в суспензии очень просты в использовании, но их жизнеспособность ограничена во времени. Печеночные клеточные линии являются возможными альтернативами , которые относительно просты в использовании , как описаны в данном протоколе, но некоторые из них лучше , чем другие с точкой зрения метаболической активности 6, 21.

Поскольку анализ является неразрушающим, если общий белок не количественно, то можно следить за CYP активности с течением времени в продольных исследованиях 20. Это очень важный момент, потому что некоторые клетки имеют различную активность CYP с течением времени в культуре. Отрицательный результат может быть связан с отсутствием сплошности, прогресс с дифференциацией или дифференцировке в пробирке. В этом случае подход является полу-quantitatiве, поскольку данные не нормированы на общее количество белка в каждой культуре клеток. Это не всегда возможно или рекомендуется повторно использовать ткань после измерения CYP активности в качестве зондов воздействия, ингибиторы или индукторов может оказывать токсическое воздействие на ткани, как это имеет место для ТХДДА.

Клеточные фракции, такие как микросомы могут также использоваться, чтобы характеризовать CYP активность данного типа клеток. Микросом препараты, однако, требуют много клеточного материала, добавление адекватных кофакторов и буфера, чтобы гарантировать, что ферменты остаются активными. Использование живых клеток устраняет хитрый шаг подготовки микроса и разработка которых буфера и кофакторы работают лучше всего.

В качестве общей рекомендации, это лучшая практика для дальнейшей характеристики профиля экспрессии CYPs в клеточных культурах, чтобы убедиться, что она соответствует ферментативной активности. Этот дополнительный уровень верификации рекомендуется, учитывая, что метаболические зонды не энтитеполагается специфичным для одного CYP, и это дает повышенную уверенность в том, что измеренная метаболической активность подобрано соответствующее выражение фермента. Так как CYPs являются мембранные белки , они относительно трудно приготовить для вестерн - блотов, поэтому количественный ОТ-ПЦР была предпочтительным подходом к профилю этих ферментов 20.

Важно отметить, что этот протокол описан способ для анализа активности фермента CYP, который представляет только одно семейство ферментов метаболизма, хотя и важная. Гибкость спектрометрического подхода масс позволяет разработку методов приобретения для других метаболических превращений зондовых субстратов. Тем не менее, те, которые должны быть разработаны по одному за раз, и в настоящее время имеется меньше известные специфические зонды и селективные ингибиторы для других метаболических ферментов семей. Этот пробел следует решать , чтобы обеспечить комплексную оценку метаболической компетентности в пробирке клетки противовирусныхМиз.

Раскрытие информации

AB и EM были сотрудники British American Tobacco в то время эта рукопись была написана. Работа, описанная в этой рукописи финансировался British American Tobacco и публикации плата за это видео-статьи были оплачены British American Tobacco.

Благодарности

Авторы благодарят Epithelix Sarl и Biopredic International за предоставление микрографий клеток дыхательных путей и печеночных клеток, а также Нила Смита за рисунок, иллюстрирующий экспериментальную процедуру.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
<сильный>реагент и Ячейки
2 μ m шприц фильтрWhatmanUN203NPEORG
24 лунки пластинаCorning3524
4-метилумбеллиферонSigma AldrichM1381
5-фенилпентинSigma AldrichCD5001437
6-гидроксибупропионSigma AldrichH3167
6-гидроксихлорзоксазонSigma AldrichUC148
7-этоксикумаринSigma Aldrich195642
7-гидроксикумаринSigma AldrichH24003
8-метоксипсораленSigma AldrichM3501
уксусная кислотаSigma Aldrich695092
ацетонитрилFisherA/0626/17
α-нафтофлавонSigma AldrichN5757
BCA kit ThermoScientific23227
b-глюкуронидаза/арилсульфатазаSigma AldrichG0876
бупропионSigma AldrichB102
карбамазепинSigma AldrichC4024
хлорзоксазонSigma AldrichC4397
коллагенКлеточные системы5005-B
кумаринSigma AldrichC4261
дисульфирамSigma Aldrich86720
флувоксаминSigma AldrichF2802
Глутамакс (добавка с глютамином)Fisher35050061
добавка для метаболизма HepaRG MerckMMAD621
размораживание HepaRG медиа добавкаMerckMMADD671
HepaRGMerckMMHPR116
Luciferin-CEEPromegaV8751
метанолFisherM/4056/17
MucilAir клетки дыхательных путейEpithelixEP01
MucilAir клетки дыхательных путей поддерживающие средыEpithelixEP04MM
Phenomenex Kinetex 2.6 μ m, PFP 100APhenomenex00B-4477-AN
TCDDSigma Aldrich48599
тиоTEPASigma AldrichT6069
Waters Acquity UPLC HSS T3 1.8 µ м 2,1 x 50 ммУотерс86003538
Уильямса E mediaFisher17704-024
Name<strong>CompanyНомер в каталоге>Комментарии
Equipment
UPLCWatersAcquity
QTRAP MSSciex Программное обеспечение ABI Sciex 4000
QTRAP MSSciex Аналитик 1.4.2
люминометрМолекулярные приборыSpectraMax M3
спектрофотометрМолекулярные приборыSpectraMax M3
счетчик ячеекBeckman CoulterVi-Cell XR
ротационный испарительEppendorfEppendorf-5301

Ссылки

  1. Garcia-Canton, C., Minet, E. Metabolic Characterization of Cell Systems Used in In Vitro Toxicology Testing. Encyclopedia of Drug Metabolism and Interactions. , 1-31 (2016).
  2. Croom, E. Metabolism of xenobiotics of human environments. Prog. Mol. Biol. Transl. Sci. 112, 31-88 (2012).
  3. Lewis, D. F. 57 varieties: the human cytochromes P450. Pharmacogenomics. 5, 305-318 (2004).
  4. Jancova, P., Anzenbacher, P., Anzenbacherova, E. Phase II drug metabolizing enzymes. Biomed. Pap. Med. Fac. Univ Palacky. 154, Olomouc. Czech. Repub. 103-116 (2010).
  5. Dekant, W. The role of biotransformation and bioactivation in toxicity. EXS. 99, 57-86 (2009).
  6. Donato, M. T., Lahoz, A., Castell, J. V., Gomez-Lechon, M. J. Cell lines: a tool for in vitro drug metabolism studies. Curr. Drug Metab. 9, 1-11 (2008).
  7. Guillouzo, A., et al. The human hepatoma HepaRG cells: a highly differentiated model for studies of liver metabolism and toxicity of xenobiotics. Chem. Biol. Interact. 168, 66-73 (2007).
  8. Huang, S., Wiszniewski, L., Constant, S., Roggen, E. Potential of in vitro reconstituted 3D human airway epithelia (MucilAir) to assess respiratory sensitizers. Toxicol. In Vitro. 27, 1151-1156 (2013).
  9. Sisson, J. H., Stoner, J. A., Ammons, B. A., Wyatt, T. A. All-digital image capture and whole-field analysis of ciliary beat frequency. J. Microsc. 211, 103-111 (2003).
  10. Kuehn, D., et al. Impact assessment of repeated exposure of organotypic 3D bronchial and nasal tissue culture models to whole cigarette smoke. J. Vis. Exp. , (2015).
  11. Draper, A. J., Madan, A., Parkinson, A. Inhibition of coumarin 7-hydroxylase activity in human liver microsomes. Arch. Biochem. Biophys. 341, 47-61 (1997).
  12. Jensen, K. G., Poulsen, H. E., Doehmer, J., Loft, S. Kinetics and inhibition by fluvoxamine of phenacetin O-deethylation in V79 cells expressing human CYP1A2. Pharmacol. Toxicol. 76, 286-288 (1995).
  13. Yamazaki, H., Tanaka, M., Shimada, T. Highly sensitive high-performance liquid chromatographic assay for coumarin 7-hydroxylation and 7-ethoxycoumarin O-deethylation by human liver cytochrome P450 enzymes. J. Chromatogr. B. Biomed. Sci. Appl. 721, 13-19 (1999).
  14. Turpeinen, M., Raunio, H., Pelkonen, O. The functional role of CYP2B6 in human drug metabolism: substrates and inhibitors in vitro, in vivo and in silico. Curr. Drug Metab. 7, 705-714 (2006).
  15. Kartha, J. S., Yost, G. S. Mechanism-based inactivation of lung-selective cytochrome P450 CYP2F enzymes. Drug Metab. Dispos. 36, 155-162 (2008).
  16. Sheets, P. L., Yost, G. S., Carlson, G. P. Benzene metabolism in human lung cell lines BEAS-2B and A549 and cells overexpressing CYP2F1. J. Biochem. Mol. Toxicol. 18, 92-99 (2004).
  17. Kharasch, E. D., Thummel, K. E., Mhyre, J., Lillibridge, J. H. Single-dose disulfiram inhibition of chlorzoxazone metabolism: a clinical probe for P450 2E1. Clin. Pharmacol. Ther. 53, 643-650 (1993).
  18. Graef, V., Furuya, E., Nishikaze, O. Hydrolysis of steroid glucuronides with beta-glucuronidase preparations from bovine liver, Helix pomatia, and E. coli. Clin. Chem. 23, 532-535 (1977).
  19. Guide to achieving reliable quantitative LC-MS measurements. RSC Analytical Methods Committee. , Available from: http://www.lgcgroup.com/LGCGroup/media/PDFs/Our%20science/NMI%20landing%20page/Publications%20and%20resources/Guides/AMC_LCMS_Guide.pdf (2013).
  20. Baxter, A., et al. Targeted omics analyses, and metabolic enzyme activity assays demonstrate maintenance of key mucociliary characteristics in long term cultures of reconstituted human airway epithelia. Toxicol. In Vitro. 29, 864-875 (2015).
  21. Gomez-Lechon, M. J., Tolosa, L., Conde, I., Donato, M. T. Competency of different cell models to predict human hepatotoxic drugs. Expert. Opin. Drug Metab. Toxicol. 10, 1553-1568 (2014).
  22. Li, Z., et al. Assessment of metabolism-dependent drug efficacy and toxicity on a multilayer organs-on-a-chip. Integr. Biol. 8, Camb. 1022-1029 (2016).
  23. Takahashi, Y., et al. Three-dimensional (3D) spheroid cultures improve the metabolic gene expression profiles of HepaRG cells. Biosci. Rep. , (2015).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

ICYPUPLC3DP450

Похожие статьи