Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Оптические соединения дополнительной моторной зоны: методология волоконного рассечения, DTI и трехмерной документации

11.2K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/55681

⸱

23 мая 2017 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurosurgery, University of Minnesota, 2Department of Neurosurgery, Barrow Neurological Institute, St. Josephs Hospital and Medical Center, 3Department of Radiology, University of Alabama at Birmingham, 4Department of Radiology, University of Minnesota, 5Department of Neurosurgery, Tepecik Training and Research Hospital, 6Department of Neurosurgery, Cerrahpasa Medical School, University of Istanbul

В этой статье

Краткое содержание

Цель этого исследования - показать каждый шаг техники рассечения волокон на человеческом трупе мозга, трехмерную документацию этих вскрытий и визуализацию тензора диффузии анатомически расчлененных путей волокон.

Аннотация

Цель этого исследования - показать методологию исследования соединений белого вещества комплекса дополнительной моторной области (SMA) (собственно до SMA и SMA) с использованием комбинации методов рассечения волокон на трупных образцах и магнитного резонанса (MR ) Трактография. Протокол также будет описывать процедуру рассечения белого вещества головного мозга человека, визуализацию тензорной картины диффузии и трехмерную документацию. Разделение волокон на человеческий мозг и 3D-документацию проводились в Университете Миннесоты, лаборатории микрохирургии и нейроанатомии отделения нейрохирургии. Пять посмертных образцов головного мозга человека и две целых головы были приготовлены в соответствии с методом Клинглера. Полушария головного мозга были разделены шаг за шагом от латерального до медиального и медиального к латеральному под операционным микроскопом, и трехмерные изображения были захвачены на каждом этапе. Все результаты вскрытия подтверждались тензором диффузииизображения. Исследования на соединениях в соответствии с классификацией волоконного тракта Мейнерта, включая соединительные волокна (короткие, верхние продольные фасцикулы I и фронтальные асцены), проекционные волокна (кортикоспинальные, клаустрокортикальные, цингулы и фронтостриальные трассы) и комиссуральные волокна (каллозальные волокна) Также проводится.

Введение

Среди 14 лобных областей, определенных Бродманном, премоторная и префронтальная области, расположенные перед прецентральной моторной корой, долгое время считались молчащим модулем, несмотря на то, что лобная доля играет важную роль в познании, поведении, обучении, И обработки речи. В дополнение к дополнительному району двигательной области (SMA), состоящему из пред-SMA и собственно SMA (область Brodmann, BA 6), который простирается медиально, предмоторный / фронтальный модуль включает дорсолатеральный префронтальный (BA 46, 8, И 9), фронтополярной (ВА 10) и вентролатеральной префронтальной (ВА 47) коры, а также части орбитофронтальной коры (ВА 11) на боковой поверхности мозга 1 , 2 .

Комплекс SMA представляет собой значительную анатомическую область, которая определяется его функциями и соединениями. Резекция и повреждение этого региона вызывают значительные клинические дефициты, известные как SMAсиндром. Синдром SMA является важным клиническим состоянием, которое особенно наблюдается при лобно-глиомных случаях, которые содержат SMA комплекс 3 . Комплекс SMA имеет связи с лимбической системой, базальными ганглиями, мозжечком, таламусом, контралатеральной SMA, верхней париетальной лопастью и частями лобных долей по волокнистым трактам. Клинический эффект повреждения этих соединений белого вещества может быть более серьезным, чем для коры головного мозга. Это объясняется тем, что последствия повреждения коры могут быть улучшены с течением времени из-за высокой кортикальной пластичности 4 , 5 , 6 , 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12 ,. Таким образом, региональная анатомия SMA и пути белого вещества должны быть deeplY понял, в частности, для хирургии глиомы.

Всестороннее понимание анатомии путей белого вещества важно для широкого спектра лечения нейрохирургических поражений. Недавние исследования трехмерной документации анатомических результатов, полученных в микрохирургии, были использованы для лучшего понимания топографической анатомии и взаимосвязи между путями белого вещества мозга 13 , 14 . Поэтому целью этого исследования было изучение соединений белого вещества комплекса SMA (собственно до SMA и SMA) с использованием комбинации методов рассечения волокон на трупных образцах и магниторезонансной томографии (MRI) и объяснения всех методов И принципов обоих методов и их подробной документации.

Планирование и стратегия обучения

Перед проведением экспериментов литрПроводили поиск по основным принципам вскрытия волокна, проводили процедуры, которые должны быть применены к образцам до и во время вскрытия, и проводились все связи между регионами SMA, которые были выявлены с помощью вскрытия и DTI. Были рассмотрены предыдущие исследования по анатомической локализации и отделению областей, предназуемых SMA и SMA, и топографической анатомии их соединений.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Покойный включен здесь как население, хотя умершие люди не являются технически людьми; Человеческие субъекты определяются 45 CF 46 как «живые люди 15 , 16» .

1. Подготовка образцов

  1. Исследуйте 5 фиксированных формалином мозгов (10 полушарий) и 2 целых головы человека.
  2. Закрепляют образцы в 10% -ном растворе формалина в течение по меньшей мере 2 месяцев в соответствии с методом Клинглера 17 .
  3. Заморозить все образцы при -16 ˚C в течение 2 недель в соответствии с методом Клингера 17 .
  4. Оттепель образцов под водопроводной водой.
  5. Выполните расширенную черепно-мозговую краниотомию на трупной голове, чтобы обнажить мозг.
    1. Поместите трупную голову в трехшарнирный зажим черепа ( Material Table ).
    2. Сделайте лобно-височный разрез кожи с помощью скальпеля.
    3. Удалите кожу и мышцы с помощью скальпеля, пинцета и ножниц.
    4. Сделайте одно или несколько отверстий в черепе, пока не достигнет твердой мозговой оболочки; Используйте сверло с компактным редуктором скорости и 14 мм краниальным перфоратором на 79 000 об / мин ( Таблица материалов).
    5. Отрежьте костный лоскут и откройте череп, используя 2 мм х 15,6 мм рифленый ротатор с 2,1 мм штифтовидным заусенцем при скорости сверления 80 000 об / мин ( Таблица материалов).
  6. Удалите твердую мозговую оболочку, арахноид и пиа-матер и рассекайте с помощью микродиссектора под микроскопом при увеличении от 6X до 40X 5 , 18 ( Material Table ).

2. Техника вскрытия волокон

ПРИМЕЧАНИЕ. Выполняйте все операции при увеличении от 6X до 40X на хирургическом микроскопе.

  1. Выполните расслоения волокна поэтапно на каждом полушарииRe, от латерального до медиального и медиального к боковому.
    1. Разделите кору головного мозга с помощью диспансера панорамы ( Таблица материалов) и удалите все лобные ткани коры, чтобы выявить короткие волокна связи, которые представляют собой U-волокна или интергидратные волокна, которые соединяют соседние жировые отложения 5 , 13 .
    2. Удалите короткие волокна ассоциации с диспансером поля и хирургическим микро-крюком, осторожно подрезая под микроскопом ( Таблица материалов), чтобы достичь и обнажить длинные волокна ассоциации, которые соединяют отдаленные области в том же полушарии.
    3. Пройдите глубоко в длинные волокна ассоциации, чтобы удалить поверхностные волокна ассоциации, используя хирургический микро-крючок и диспансер панорамирования; Удалите каждый пучок волокон под микроскопом ( Таблица материалов), чтобы обнажить проекционные комиссуральные волокна.
    4. Просмотр каждого соединения SMA комплексаВ соответствии с топографической анатомией, которая ранее была определена в литературе 2 , 8 , 18 , 19 , 20 , 21 .
  2. Хранить все образцы (целые головы и мозги), которые использовались при вскрытии в 10% -ном растворе формальдегида ( Таблица материалов) между периодами диссекции.

3. Техника 3D-фотографии

  1. Во время фотографирования образцов используйте платформу черного цвета.
  2. Следуйте методу 3D-фотографии 22 .
    1. Поместите каждый образец на платформу черного цвета.
    2. Выберите сцену с полным фронтальным видом образца и сделайте один снимок, сфокусировав камеру в любой точке образца близко к центральной точке на экране камеры (вкладка инструментале). Используйте 18- или 55-мм объектив f / 3.5-5.6 SLR или макрообъектив 100 мм f / 2.8L и установите диафрагму на F29, ISO 100.
    3. Поверните камеру немного влево до тех пор, пока самая правая точка на экране камеры не будет такой же, как точка фокусировки выше. Сдвиньте камеру вправо до тех пор, пока средняя точка на экране не пересечет исходную точку фокусировки на образце. Сфокусируйте камеру на этом пункте и сделайте еще один снимок.
    4. Сохраняйте расстояние и ось камеры на сфотографированном образце при постоянных значениях.
  3. Создайте трехмерное изображение с помощью программы-генератора 3D-изображений (Таблица материалов).
    1. Откройте программу 3D.
    2. Выберите «Открыть стереоизображения из файла».
    3. Выберите два изображения (влево и вправо) и убедитесь, что левое изображение находится в левом слоте, а правое изображение находится в правом слоте.
    4. Выберите опцию «Half color anaglyph RL / 2» и создайте анаглиф в формате jpeg.

    4. Техника DTI

    1. Приобретите предварительно обработанные данные диффузии с использованием данных диффузии проекта «Подсоединение человека» 23 , загрузив их с веб-сайта, на который делается ссылка.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Данные загружаются предварительно обработанными и состоят из следующих процедур: диффузионные данные были получены у нормальных добровольцев с использованием модифицированного 3-T-MRI-устройства (таблица инструментов) с использованием эхо-плана эхо-планарного изображения (EPI) Ускорение 24 , 25 , 26 , 27 , 28 . Соответствующие параметры последовательности включают в себя: TR = 5520 мс; TE = 89,5 мс; FOV = 210 x 180 мм; Матрица = 168 х 144; Толщина среза = 1,25 мм (воксельный размер 1,25 х 1,25 х 1,25 мм); Многополосный фактор = 3; И b = 1000 с / мм 2 (95 направлений), 2000 с / мм 2 (96 направлений) и 3000 с / мм2 (97 направлений). Затем данные обрабатывались с использованием FreeSurfer 29 и FSL 30 ; Процесс включал коррекцию вихревых токов, коррекцию движения, нормализацию интенсивности b0, коррекцию искажений восприимчивости и коррекцию градиентной нелинейности 28 , 31 , 32 , 33 . Соответствующие T1-взвешенные изображения MP-RAGE также включены в пакет загрузки. Процедуры описаны в руководстве по процедурам проекта «Человеческое соединение» 23 .
    2. Постобработка диффузионных данных с использованием Diffusion Spectrum Imaging (DSI) Studio 34 для генерирования оценочной функции распределения по воксельной диффузии (ODF), использующей обобщенный алгоритм g-выборки изображений (GQI) 35 .
      1. Загрузите загруженный набор данных в программное обеспечение selEcting «ШАГ 1: изображения с открытым исходным кодом» и выберите файл data.nii.gz.
      2. Выберите кнопку «STEP2: Реконструкция». После проверки маски мозга перейдите к «Этапу 2» и выберите «GQI» в качестве метода реконструкции. Выберите «r ^ 2 weighting» с «отношением длины» к «1.0». Оставшиеся варианты выбора по умолчанию.
      3. Выберите «Выполнить реконструкцию».
    3. Поместите соответствующие семена для областей интересов, чтобы оптимизировать отслеживание волокна.
      1. В «Окно региона» нажмите кнопку «Atlas», чтобы поместить семена для верхнего продольного пучка (SLF). I. Выберите «Brodmann» и добавьте «Region 6» и «Region 7.». В окне региона установите для типа «Регион 6» значение «seed», а для типа «Регион 7» - «область включений» (ROI).
        1. Выберите «Новый регион» в окне региона и вручную нанесите ROIВ самом заднем аспекте верхней лобной извилины в корональной плоскости. Выполните отслеживание волокна, как описано в шаге 4.4.
      2. Поместите семена для SLF II подобным образом, используя «Новый регион» в окне области и рисуя «семенную» область в заднем аспекте среднего лобного извилины белого вещества в корональной плоскости. Выберите ROI, используя «Атлас» (как на шаге 4.3.1) и области Бродмана 9, 10, 46, 39 и 19. Выполните отслеживание волокна, как описано в шаге 4.4.
      3. Поместите семена для SLF III с «семенной» областью, используя «Атлас» (как в шаге 4.3.1) в окне региона и выбрав «Регион 40» атласа Бродманна и ROI из «Атласа ...» в «Регион 40» "И" Регион 44 ". Выполните отслеживание волокна, как описано в шаге 4.4.
      4. Поместите семена для каллозальных волокон, используя «Новый регион» в окне региона, и нарисуйте «семя» в сагиттальной плоскости, охватывающей thE corpus callosum. Выполните отслеживание волокна, как описано в шаге 4.4.
      5. Поместите семена для волокон из колючей проволоки, используя «Новый регион» в окне области, и нарисуйте «посевной» участок в средней извилистой извилине на корональном изображении. Используйте «Новый регион», чтобы нарисовать две области интереса, одну в более переднем пояске и одну в задней извилистой извилине под короной. Выполните отслеживание волокна, как описано в шаге 4.4.
      6. Поместите семена для клаукорокортикальных волокон, используя «Новый регион» в окне региона, и нарисуйте «семя» в клауруме с ROI в корональных лучах с помощью функции «Атлас ...». Выберите атлас как «JHU-WhiteMatter-labels-1mm».
        1. Выберите и добавьте «Anterior_corona_radiata», «Posterior_corona_radiata» и «Superior_corona_radiata». Нарисуйте область избежания для всех волокон, проходящих через плоскость, уступающую уровню клаурума в осевой плоскости, используя «Новый регион»"В окне региона. Выполните отслеживание волокна, как описано в шаге 4.4.
      7. Поместите семена в кортикоспинальный тракт с помощью «семени» из функции «Атлас ...» в окне региона; Выберите «JHU-WhiteMatter-labels-1mm» и добавьте область «Corticospinal_tract». Выполните отслеживание волокна, как описано в шаге 4.4.
      8. Поместите семена для фронтального асфальтового тракта (FAT), используя «посевной» регион из функции «Атлас ...» в окне региона и выбрав атлас Brodmann и «Region 6» ROI в «Регион 44» и «Область 45». " Выполните отслеживание волокна, как описано в шаге 4.4.
      9. Поместите семена для передне-патологического тракта (FST) с «семенами» в «Регион 6», используя функцию «Атлас ...». Вставьте новые регионы в «caudate», «putamen» и «globus pallidus» из атласа «HarvardOxfordSub» и установите тип в окне региона «до конца»."
        ПРИМЕЧАНИЕ. Отслеживание волокна для FST будет выполняться путем выбора семян региона 6 и только одного из подкорковых семян на сеанс отслеживания ( то есть область 6 и хвостатое, а затем область 6 и порог, и, наконец, область 6 и глобус бледный шар).
        1. Выполните отслеживание волокна, как описано в шаге 4.4 для каждой комбинации.
    4. Выполните отслеживание волокна для каждой из вышеперечисленных комбинаций.
      1. В окне «Параметры» задайте параметры отслеживания как: индекс окончания qa 0,08, угловой порог 75, размер шага 0,675, сглаживание 0,2, минимальная длина 20 мм и максимальная длина 200 мм. Выберите ориентацию высева как «Все», положение семени как «Субволок» и рандомизируйте посев как «Вкл». Используйте интерполяцию трилинейного направления с алгоритмом отслеживания потока (Euler). Для каждой комбинации регионов выше выберите «Прогон отслеживания» в & #34; Fiber Tracts ".
        ПРИМЕЧАНИЕ. Из-за рандомизированного характера отслеживания, четкие «ложные волокна» идентифицируются и выборочно удаляются, а районы избежания отрисовываются вручную как «Новый регион».
    5. Аффинный регистр, извлеченный мозгом T1-взвешенный 3D MP-RAGE-сканер, предоставленный в проекте Project Connect, предназначен для диффузионных данных, используя функцию «Slices -> Insert T1 / T2 Images» DSI-Studio. Создайте поверхностный рендеринг мозга, выбрав «Срезы -> Добавить изоповерхность». Используйте «порог» 665.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Комплекс SMA расположен в задней части верхней лобной извилины. Границы SMA комплекса представляют собой прецентральную бороздку назад, верхнюю лобную борозду - нижнюю - боковую, а поясную борозду - нижнюю медиально 18 . Комплекс SMA состоит из двух частей: пред-SMA спереди и собственно SMA сзади 18 . Существуют различия в отношении соединений белого вещества и функции между этими двумя частями 18 ( фигуры 1А...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Важность и методы исследования для путей белого вещества

Кора головного мозга воспринимается как главная нервная структура, связанная с 2,5 миллионами лет жизни человека. Приблизительно 20 миллиардов нейронов разделились на различные части, основанные на морфологической и клеточной спецификации 40 . Архитектура каждой из этих кортикальных частей функционально подразделяется на группы, такие как сенсомоторный смысл и движение, эмоциональный опыт и сложные рассуждения. Был...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не заявляют каких-либо конкурирующих финансовых интересов и источников финансирования и поддержки, в том числе для оборудования и медикаментов.

Благодарности

Данные были частично предоставлены проектом «Коннекшен человека», консорциумом WU-Minn (главные исследователи: Дэвид Ван Эссен и Камил Угурбил, 1U54MH091657), финансируемый 16 институтами и центрами NIH, которые поддерживают NIH Blueprint для исследования нейронов; И Центром McDonnell по неврологии в Вашингтоне. Рисунки 2A и 2D были воспроизведены с разрешения коллекции Rhoton 57 (http://rhoton.ineurodb.org/?page=21899).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
%4 Раствор параформальдегидаAFFYMETRIX, Inc.2046C208использован для фиксации
морозильной камерыINSIGNANS-CZ70WH6использован для заморозки
диссектора ПанфилдаAESCULAPFD305использован для препарирования
Хирургические микроножницыW. Lorenz04-4238использован для мискродивки
Хирургический микрокрючокV. MuellerNL3785-009использован для мискродивки
МИКРО СОСУД РАСТЯЖИТЕЛЬ/ РАСШИРИТЕЛЬW. Lorenz04-4324использован для макродиссекции
Emax2 SC 2000 Электрическая консольAnspach CompaniesSC2102использован для краниотомии
Сверлильный наборAnspach CompaniesNS-CZ70WH6использован для краниотомии
20-1000 операционный микроскопMoeller-Wedel,ГерманияFS 4-20использован для макродиссекции
Canon EOS 550D 18 MP CMOS APS-C Цифровая зеркальная камера ФотоаппаратCanon Inc.DS126271использован для фотосъемки
объективом EF 100 mm f/2.8L IS USM Macro LensCanon Inc.4657A006использовался для фотосъемки
MR-14EX II Macro Ring Lite (Flash)Canon Inc.9389B002использован для фотосъемки
ШтативLino Manfrotto322RC2использован для фотосъемки
MAYFIELD Infinity Skull ClampIntegra Inc.А0077используется для фиксации головки
модифицированного сканера Скря 3Т "Коннектом"компании Siemens, Inc.A911IM-MR-15773-P1-4A00использовался для сканирования DTI
XstereO PlayerYury GolubinskyVersion 3.6(22)использовалсядля создания анаглифов
EF-S 18-55mm f/3.5-5.6 IS II SLR LensCanon Inc.2042B002использован для фотосъемки
Скальпель6B INVENT7-104-Lиспользован для разреза
Компактный редуктор скоростиAnspach компанииCSR60использован для проделывания отверстия для заусенцев
14 мм Краниальный перфораторAnspach компанииCPERF-14-11-3Fиспользуется для проделывания отверстия для заусенцев
2 мм x 15,6 мм Рифленый фрезерный станокAnspach КомпанииA-CRN-Mиспользуется для выполнения трепанации черепа
2,1 мм Борфы игольчатыеAnspachфирмы 03.000.130Sиспользуются для выполнения трепанации черепа

Ссылки

  1. Nieuwenhuys, R., Voogd, J., Huijzen, C. V. The Human Central Nervous System. , 4th edi, 620-649 (2008).
  2. Catani, M., Acqua, F., Vergani, F., Malik, F., Hodge, H. Short frontal lobe connections of the human brain. Cortex. 48, 273-291 (2012).
  3. Duffau, H., Capelle, L. Preferential brain locations of low-grade gliomas. Cancer. 100 (12), 2622-2626 (2004).
  4. Yasargil, M. G., Türe, U., Yasargil, D. C. Impact of temporal lobe surgery. J Neurosurg. 101 (05), 725-738 (2004).
  5. Türe, U., Yasargil, M. G., Friedman, A. H., Al-Mefty, O. Fiber dissection technique: lateral aspect of the brain. Neurosurgery. 47 (2), 417-427 (2000).
  6. Burger, P. C., Heinz, E. R., Shibata, T., Kleihues, P. Topographic anatomy and CT correlations in the untreated glioblastoma multiforme. J Neurosurg. 68 (5), 698-704 (1998).
  7. New concepts in surgery of WHO grade II gliomas: Functional brain mapping, connectionism and plasticity-a review. J Neurooncol. 79 (1), 77-79 (2006).
  8. White matter connections of the supplementary motor area in humans. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 85 (12), 1377-1385 (2014).
  9. Luppino, G., Matelli, M., Camarda, R., Rizzolatti, G. Corticocortical connections of area F3(SMA-proper) and area F6(pre-SMA)in the macaque monkey. J. Comp.Neurol. 338, 114-140 (1993).
  10. Akkal, D., Dum, R. P., Strick, P. L. Supplementary motor area and presupplementary motor area: targets of basal ganglia and cerebellar output. J. Neurosci. 27, 10659-10673 (2007).
  11. Behrens, T. E. Non-invasive mapping of connections between human thalamus and cortex using diffusion imaging. Nat. Neurosci. 6, 750-757 (2003).
  12. Potgieser, A. R. E., de Jong, B. M., Wagemakers, M., Hoving, E. W., Groen, R. J. M. Insights from the supplementary motor area syndrome in balancing movement initiation and inhibition. Frontiers in Human Neuroscience. 28 (8), 960(2014).
  13. Yagmurlu, K., Vlasak, A. L., Rhoton Jr, A. L. Three-Dimensional Topographic Fiber Tract Anatomy of the Cerebrum. Neurosurgery. 2, epub 274-305 (2015).
  14. Fernández-Miranda, J. C., Rhoton Jr,, L, A., Álvarez-Linera, J., Kakizawa, Y., Choi, C., de Oliveira, E. P. Three-dimensional microsurgical and tractographic anatomy of the white matter of the human brain. Neurosurgery. 62 (6 Suppl 3), 989-1026 (2008).
  15. Couzin, J. Crossing a frontier: Research on the dead. Science. 299 (5603), 29-30 (2003).
  16. University of Minnesota. Research Ethics. , Available from: https://www.ahc.umn.edu/img/assets/26104/Research Ethics/pdf (2016).
  17. Ludwig, E., Klingler, J. Der innere Bau des Gehirns dargestellt auf Grund makroskopischer Präparate. The inner structure of the brain demonstrated on the basis of macroscopical preparations. Atlas cerebri humani. , 1-36 (1956).
  18. Bozkurt, B. The Microsurgical and Tractographic Anatomy of the Supplementary Motor Area Complex in Human. J World Neurosurg. 95, 99-107 (1956).
  19. Lehericy, S. 3-D diffusion tensor axonal tracking shows distinct SMA and pre-SMA projections to the human striatum. Cereb Cortex. 14, 1302-1309 (2004).
  20. Duffau, H. Intraoperative mapping of the cortical areas involved in multiplication and subtraction: an electrostimulation study in a patient with a left parietal glioma. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 73 (6), 733-738 (2002).
  21. Kinoshita, M. Role of fronto-striatal tract and frontal aslant tract in movement and speech: an axonal mapping study. Brain Struct Funct. 220 (6), 3399-3412 (2015).
  22. Shimizu, S. Anatomic dissection and classic three-dimensional documentation: a unit of education for neurosurgical anatomy revisited. Neurosurgery. 58 (5), E1000(2006).
  23. Connectome Database. , Available from: https://db.humanconnectome.org (2016).
  24. Moeller, S. Multiband multislice GE-EPI at 7 tesla, with 16-fold acceleration using partial parallel imaging with application to high spatial and temporal whole-brain fMRI. Magn Reson Med. 63 (5), 1144-1153 (2010).
  25. Feinberg, D. A. Multiplexed Echo Planar Imaging for sub-second whole brain fMRI and fast diffusion imaging. PLoS One. 5, e15710(2010).
  26. Setsompop, K. Blipped-controlled aliasing in parallel imaging for simultaneous multislice echo planar imaging with reduced g-factor penalty. Magn Reson Med. 67 (5), 1210-1224 (2012).
  27. Xu, J. Highly accelerated whole brain imaging using aligned-blipped-controlled-aliasing multiband EPI. In Proceedings of the 20th Annual Meeting of ISMRM. 20, 2306(2012).
  28. Glasser, M. F. The minimal preprocessing pipelines for the Human Connectome Project. Neuroimage. 80, 105-124 (2013).
  29. Free Surfer Software Suite. Harvard University. , Available from: http://surfer.nmr.mgh.harvard.edu (2016).
  30. FSL. Software Library. , Available from: http://fsl.fmrib.ox.ac.uk (2016).
  31. Jenkinson, M., Bannister, P. R., Brady, J. M., Smith, S. M. Improved optimization for the robust and accurate linear registration and motion correction of brain images. NeuroImage. 17 (2), 825-841 (2002).
  32. Andersson, J. L., Skare, S., Ashburner, J. How to correct susceptibility distortions in spin-echo echo-planar images: application to diffusion tensor imaging. NeuroImage. 20 (2), 870-888 (2003).
  33. Andersson, J., Xu, J., Yacoub, E., Auerbach, E., Moeller, S., Ugurbil, K. A comprehensive Gaussian process framework for correcting distortions and movements in diffusion images. In Proceedings of the 20th Annual Meeting of ISMRM. 20, 2426(2012).
  34. DSI Sudio. , Available from: http://dsi-studio.labsolver.org (2016).
  35. Yeh, F. C., Wedeen, V. J., Tseng, W. Y. Generalized q-sampling imaging. IEEE Trans Med Imaging. 29 (9), 1626-1635 (2010).
  36. Makris, N. Segmentation of subcomponents within the superior longitudinal fascicle in humans: a quantitative, in vivo DT-MRI study. Cereb Cortex. 15 (6), 854-869 (2005).
  37. Fernández-Miranda, J. C., Rhoton, A. L. Jr, Kakizawa, Y., Choi, C., Alvarez-Linera, J. The claustrum and its projection system in the human brain: a microsurgical and tractographic anatomical study. J Neurosurg. 108 (4), 764-774 (2008).
  38. Maier, M. A., Armand, J., Kirkwood, P. A., Yang, H. W., Davis, J. N., Lemon, R. N. Differences in the corticospinal projection from primary motor cortex and supplementary motor area to macaque upper limb motoneurons:an anatomical and electrophysiological study. Cereb. Cortex. 12, 281-296 (2002).
  39. Picard, N., Strick, P. L. Imaging the premotor areas. Curr. Opin. Neurobiol. 11, 663-672 (2001).
  40. Pakkenberg, B., Gundersen, H. J. G. Neocortical neuron number in humans: effect of sex and age. Journal of Comparative Neurology. 384 (2), 312-320 (1997).
  41. Geschwind, N. Disconnexion syndromes in animals and man. Brain. 88 (3), 237-294 (1965).
  42. Geschwind, N. Disconnexion syndromes in animals and man. Brain. 88 (3), 585-644 (1965).
  43. Goldman-Rakic, P. S. Topography of cognition: parallel distributed networks in primate association cortex. Annu Rev Neurosci. 11 (1), 137-156 (1988).
  44. Mesulam, M. M. From sensation to cognition. Brain. 121 (6), 1013-1052 (1998).
  45. Mesulam, M. Large-scale neurocognitive networks and distributed processing for attention, language, and memory. Ann Neurol. 28 (5), 597-613 (1990).
  46. Schmahmann, J. D., Pandya, D. N. Fiber pathways of the brain. 8, Oxford University Press. Oxford. 393-409 (2006).
  47. Bammer, R., Acar, B., Moseley, M. E. In vivo MR tractography using diffusion imaging. Eur J Radiol. 45 (3), 223-234 (2003).
  48. Catani, M., Howard, R. J., Pajevic, S., Jones, D. K. Virtual in vivo interactive dissection of white matter fasciculi in the human brain. Neuroimage. 17 (1), 77-94 (2002).
  49. Lin, C. P., Wedeen, V. J., Chen, J. H., Yao, C., Tseng, W. Y. I. Validation of diffusion spectrum magnetic resonance imaging with manganese-enhanced rat optic tracts and ex vivo phantoms. Neuroimage. 19 (3), 482-495 (2003).
  50. Bello, L., Acerbi, F., Giussani, C., Baratta, P., Taccone, P., Songa, V. Intraoperative language localization in multilingual patients with gliomas. Neurosurgery. 59 (1), 115-125 (2006).
  51. Bernstein, M. Subcortical stimulation mapping. J Neurosurg. 100 (3), 365(2004).
  52. Ackermann, H., Riecker, A. The contribution(s) of the insula to speech production: a review of the clinical and functional imaging literature. Brain Struct Funct. 214, 419-433 (2010).
  53. Krainik, A. Role of the healthy hemisphere in recovery after resection of the supplementary motor area. Neurology. 62, 1323-1332 (2004).
  54. Ford, A., McGregor, K. M., Case, K., Crosson, B., White, K. D. Structural connectivity of Broca's area and medial frontal cortex. Neuroimage. 52, 1230-1237 (2010).
  55. Catani, M., Mesulam, M. M., Jakobsen, E., Malik, F., Martersteck, A., Wieneke, C., Thompson, C. K., Thiebaut de Schotten, M., Dell'Acqua, F., Weintraub, S., Rogalski, E. A novel frontal pathway underlies verbal fluency in primary progressive aphasia. Brain. 136, 2619-2628 (2013).
  56. Rech, F., Herbet, G., Moritz-Gasser, S., Duffau, H. Disruption of bimanual movement by unilateral subcortical electrostimulation. Human Brain Mapping Annual Meeting. 35 (7), 3439-3445 (2014).
  57. The Rhoton Collection. Login page. , Available from: http://rhoton.ineurodb.org/?page=21899 (2016).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Оптические соединения дополнительной моторной зоны: методология волоконного рассечения, DTI и трехмерной документации
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.