Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Протокол для оценки относительного воздействия окружающей среды и генетики на рога и рост тела для долгоживущих Cervid

7K просмотров

DOI:

10.3791/56059

8 августа 2017 г.

В этой статье

Краткое содержание

Фенотипические различия среди cervid населения может быть связано с уровня населения генетики или питания; различение, которое трудно в дикой природе. Этот протокол описывает, как мы разработали контролируемого исследования, где питания вариация была ликвидирована. Мы обнаружили, что фенотипические изменения мужской белохвостый олень был более ограниченным питания чем генетика.

Аннотация

Cervid фенотипом могут быть помещены в одну из двух категорий: эффективность, которая продвигает выживание более экстравагантные морфометрические роста и роскоши, которая способствует росту большого размера вооружения и тела. Население того же вида отображения каждого фенотипа, в зависимости от условий окружающей среды. Хотя рога и тела размер мужской белохвостый олень (рода виргинский) зависит от физико-географических региона в Миссисипи, США и сильно коррелирует с региональные различия в питательные качества, нельзя игнорировать влияние уровня населения генетики из собственных запасов и предыдущие усилия повторное хранение. Этот протокол описывает, как мы разработали контролируемого исследования, где другие факторы, которые влияют фенотип, таких как возраст и питания, находятся под контролем. Мы принесли поймали дикого беременные самки и молодые олени шести месячный из трех различных физико-географических регионов в Миссисипи, США Миссисипи государственного университета ржавые Докинз Мемориал оленей группе. Олень из того же региона были разведены для получения второго поколения потомства, что позволяет нам оценить поколений ответы и эффектов со стороны матери. Все оленей ели же высокое качество (20% сырого протеина оленей Пелле) диета ad libitum. Мы однозначно отмечен каждый новорожденный и записал тело массы, задние ноги и длине всего тела. Каждого последующего падения, мы седативные лица через дистанционного инъекций и отведать же морфометрии плюс пантов взрослых. Мы обнаружили, что все морфометрии увеличилась в размерах от первого до второго поколения, с полной компенсации рога размер (больше нет региональных вариаций) и частичной компенсации массы тела (некоторые данные о региональных вариаций) очевидно во втором поколении. Второе поколение мужчин, которые возникли из наших бедных качества почвы региона отображается о 40% увеличение размера рога и 25%, увеличение массы тела, когда по сравнению с их диких собранного. Наши результаты показывают, фенотипические изменения диких мужчин белохвостый олень в Миссисипи больше связаны с различиями в питании качества чем уровень населения генетики.

Введение

Экологические факторы, которые испытывает мать во время беременности и лактации может повлиять на ее потомство фенотип, независимо от генотипа1,2,3. Матери, которые населяют высокого качества окружающей среды скорее всего будет производить потомство, что выставка роскоши фенотип (большие рога и тела размер4), тогда как матерей, которые населяют среде низкого качества может производить потомство, которые демонстрируют эффективность фенотип (небольшие рога и тела размер4). Таким образом сохранение в условиях высокого качества может позволить мать производить мужского потомства с большими фенотипические характеристики, которые могут непосредственно влиять на потомство репродуктивные возможности5,6,,78 и косвенно влиять на матери приспособленность.

Хотя питания непосредственно влияет фенотипические характеристики различных таксонам (Ursus americanus, Ursus arctos9; Водяные питоны fuscusI 10; Larus michahellis 11), белохвостый олень фенотипы в Миссисипи, США могут влиять несколько факторов. Размер тела и рога являются примерно одну треть больше для некоторых групп населения по сравнению с другими12. Эта разновидность сильно коррелирует с кормом качества13,14; крупнейший мужчины находятся в районах с наивысшего качества кормов. Однако исторической реставрации усилия белохвостый олень в Миссисипи могут привели к генетическим узких мест и/или основатель эффекты15,16, которая может частично объяснить некоторые из наблюдаемых региональные различия в фенотипе белохвостый олень.

Мы предоставляем протокол, который мы использовали для контроля питания качества поймали дикого белохвостый олень, что позволило нам оценить ли мужчин фенотип ограничивается уровня населения генетики. Этот протокол также позволило нам оценить ли отставание материнской последствия были представлены в наших народов. Наш контролируемых дизайн является предпочтительным для исследования, проведенные на бесплатный диапазоне населения, которые ограничиваются использованием экологических переменных как прокси для питания ограничение3,17. Наши контролируемых дизайн также позволяет для других переменных, такие, как потенциал хронический стресс связанные с социальных взаимодействий для проводиться постоянно, как все люди подвергаются аналогичного жилья и практики животноводства. Кроме того потому что питание непосредственно влияет на другие аспекты жизни истории от воспроизводства до выживания18,19, контроль питания позволяет для следователей, чтобы оценить другие переменные, которые влияют на млекопитающих истории жизни аспекты. Были описаны аналогичные протоколы для оценки вопросов, связанных с аспектами истории жизни для других копытных в Северной Америке (например,, 20-21).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Заявление об этике: Институциональный комитет по уходу и использованию животных Университета штата Миссисипи одобрил все методы отлова, обращения и маркировки в соответствии с протоколами 04-068, 07-036, 10-03 и 13-034.

1. Создание мест отлова, иммобилизация и транспортировка дикого белохвостсяго оленя

  1. Определите государственные и частные земельные участки, участвующие в Программе содействия управлению популяциями оленей2, и установите ≥29 точек отлова в трех исходных регионах штата Миссисипи, США.
    1. Выберите несколько точек отлова в каждом исходном регионе, чтобы обеспечить охват всего диапазона генетической изменчивости, присутствующей в региональной популяции.
    2. Примечание: В данном случае исходные регионы включали Дельту, которая занимает почти 17% от общей площади земли в Миссисипи, США, и считается регионом с высококачественными почвами, где основным использованием земель является сельское хозяйство23,24. Все исследуемые животные были отловлены в этом регионе в пределах ареала распространения O. v. virginianus25. Другие регионы включали регион тонкого лёсса (объединенные верхний и нижний тонкий лёсс), который составляет почти 14% от общей площади земли в Миссисипи, США, и считается регионом со средним качеством почв. Сельское хозяйство также является основным видом землепользования в регионе тонкого лёсса, хотя и не столь распространенным, как в Дельте23,24. Все исследуемые животные были отловлены в этом регионе в пределах ареала распространения O. v. virginianus21. Наконец, почвенный регион Нижней прибрежной равнины (LCP) занимает почти 2% территории Миссисипи и классифицируется как регион с низким качеством почв. Основными видами землепользования в LCP являются производство соснового леса и выпас скота23,24. Регион LCP также перекрывается с географическим ареалом O. v. osceola; четыре из шести исходных популяций находились в пределах 21 km от этого ареала25. Данный подвид был описан как более мелкий, чем O. v. virginianus26.

Карта регионов происхождения почв; дельта, нижняя прибрежная равнина, тонкий лёсс; географическая схема.
Рисунок 1Исходные популяции. Физиографические регионы Миссисипи (США), в которых были отловлены беременные самки и детеныши. Рисунок модифицирован на основе источника31. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

  1. Выберите потенциальные места отлова, соответствующие следующим критериям: характеристики среды обитания, способствующие перемещению оленей, близость к дорогам для обеспечения доступа и равномерное распределение по всей исследуемой области.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Места отлова должны обеспечивать возможность скрытого размещения специалиста по отлову.
    1. Приманите оленей в данные места, используя около 10 kg очищенной кукурузы, и оцените эффективность точек на основе потребления приманки и фотографий оленей, сделанных камерами с датчиками движения. Если олени не посещают прикормочные площадки в течение 5-7 дней, перенесите отлов на альтернативные участки.
  2. Во время процесса отлова находитесь в скрытом «засидке-стенде».
    1. Разместите стенд примерно в 20 m с подветренной стороны от кучи приманки, учитывая преобладающее направление ветра, чтобы олени, приближающиеся к приманке, с меньшей вероятностью почувствовали запах специалиста по отлову.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Настоятельно рекомендуются приподнятые стенды, использование страховочных привязей обязательно. Существует несколько вариантов стендов от различных коммерческих поставщиков, и выбор зависит от личных предпочтений. Например, стационарный стенд может включать сиденье с лестницей для доступа, закрепленное на дереве ремнями. Переносные лестничные стенды могут доставляться специалистом по отлову, что обеспечивает большую мобильность, так как специалист может выбрать конкретное дерево уже по прибытии на место отлова. Использование переносных лестничных стендов ограничено прямыми деревьями без ветвей на выбранной высоте.
  3. Используйте дротикометатель в сочетании с радиометрическим дротиком объемом 3 cc для введения смеси телетамина HCl (4.4 mg/kg) и ксилазина HCl (2.2 mg/kg).
    1. Спланируйте мероприятия по отлову так, чтобы они совпадали с типичным сумеречным циклом активности оленей27. Начинайте каждую попытку отлова за 2-3 h до захода солнца.
    2. Если олени не были отловлены в светлое время суток, продолжайте мероприятия по отлову в течение 2-3 h после захода солнца, используя приборы ночного видения и лазерный целеуказатель для точного попадания.
    3. Производите выстрел, когда олень стоит неподвижно боком к вам.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Целью является задняя четверть оленя, так как там сосредоточена значительная мышечная ткань и эта область удалена от сердца и легких.
    4. Подождите около 15 min, пока животные-мишени (шестимесячные оленята любого пола или беременные взрослые самки), получившие укол дротиком, полностью не обездвижат, прежде чем обнаруживать их с помощью оборудования для направленной радиометрии.
    5. Подтвердите седацию особей, проверив наличие глазных рефлексов (мигание). Затем нанесите офтальмологическую мазь на глаза и завяжите глаза оленю, чтобы снизить уровень стресса.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Нарушение терморегуляции является следствием иммобилизации.
    6. Используйте ректальный термометр для оценки температуры тела после восстановления. Согрейте оленя подогреваемую одеялами, если температура животного ниже 37.7 °C. Охладите оленя пакетами со льдом, если температура животного выше 40.0 °C.
    7. Поместите оленя в положении лежа на животе (стернальное положение) на носилки военного типа и транспортируйте его из места отлова в закрытый прицеп.
    8. После помещения оленя в прицеп нейтрализуйте действие ксилазина HCl с помощью 0.125 mg/kg йохимбина HCl28.
    9. Транспортируйте всех отловленных оленей в соответствующее учреждение для содержания в неволе (например, в отдел оленей имени Расти Докинса Университета штата Миссисипи; MSU Deer Unit) и держите их разделенными по регионам происхождения.

2. Условия содержания и общие правила ухода за лабораторными животными

ПРИМЕЧАНИЕ: Оленья установка MSU разделена на пять загонов площадью от 0,4 до 0,8 ha.

  1. Закройте все стороны каждого загона затеняющей сеткой, чтобы создать визуальный и физический барьер между ними. Затеняющая сетка способствует снижению травматизма и обеспечивает тень в летние месяцы.
  2. Разместите по 1–2 приподнятых засика (боксов) в одном конце каждого загона, чтобы облегчить введение дротиков в процессе сбора данных.
  3. Разместите два кормушки желобчатого типа в противоположных концах каждого загона, чтобы снизить конкуренцию за корм между оленями. Также установите в каждом загоне поилку-желоб.
  4. Обеспечьте оленей высококачественным рационом (гранулами для оленей с содержанием сырого протеина 20%) ad libitum.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Здесь в качестве дополнительных доступных кормов в загонах использовались (Trifolium spp.) и овсяницы (Festuca spp.) вместе с самосеянными злаками и разнотравьем.
  5. При наличии поддерживайте доступные корма в загонах, используя смесь гербицидов для борьбы с широколистными сорняками и злаковыми травами в дозировках, указанных на соответствующих этикетках.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Вероятно, потребуется использование внешних площадок для содержания самцов в возрасте ≥5,5 месяцев. Данные площадки состояли из двух загонов площадью 0,7 га на каждом из трех участков с методами ухода, аналогичными тем, что применяются в подразделении по разведению оленей Университета штата Мичиган (MSU Deer Unit).

Карта штатов США с выделенными округами Миссисипи; диаграмма географического распределения.
Рисунок 2Расположение объектов содержания в неволе. Район исследования, где были расположены вспомогательные объекты и отдел изучения оленей Университета штата Миссисипи (MSU). Затененные области обозначают округ Октиббеха (A), Noxubee (B), Аттала (С), Скотт (D), и Copiah (Е), округа, штат Миссисипи, США. Данный рисунок был изменен на основании источника34. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

3. Борьба с паразитами и заболеваниями

  1. Контролируйте наличие круглых червей-паразитов (Strongyloides spp) у подопытных животных с помощью метода флотации фекалий, измеря количество паразитов в яйцах на грамм (EPG).
    1. При обнаружении высокой концентрации проведите противогельминтную обработку, используя гранулированный препарат (активный ингредиент фенбендазол) в дозе примерно 0.7 kg препарата на 2.7 kg корма в течение мая.
    2. Если после первичного лечения уровень паразитов остается высоким, используйте ивермектин в форме раствора для нанесения на кожу (5 mg/mL)29, смешанный в пропорции 2 mL/0.45 kg, и вводите животным из расчета 0.45 kg обработанного корма на 45.4 kg массы тела животного.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Эпизоотическая геморрагическая болезнь представляет собой иногда летальное вирусное заболевание, распространяемое кусающими мошками (Culicoides spp) в летние и осенние месяцы. В случае ее возникновения обработайте исследовательский комплекс инсектицидом (5% ультранизкий объем инсектицида) 2-3 раза в неделю с 1 июля по 1 октября для снижения распространенности переносчиков среди подопытных животных. Распыляйте инсектицид с помощью генератора тумана в каждом загоне и по периметру комплекса примерно за 90 min до официального захода солнца. Предпочтительные методы борьбы с паразитами и болезнями индивидуальны для каждого учреждения по содержанию животных. При проведении любых исследований диких животных в неволе необходимо консультироваться с ветеринарами для обеспечения здоровья и безопасности животных.

4. Сбор данных

Изучение анатомии оленей, измерение длины конечностей с помощью измерительной ленты, полевые исследования, биология дикой природы.
Рисунок 3Сбор данных о новорожденных оленятахИзмерение длины задней стопы новорожденного олененка в Мемориальном отделе по изучению оленей имени Расти Докинса при Университете штата Миссисипи в округе Октиббеха, штат Миссисипи, США. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

  1. Ежедневно осматривайте помещение для содержания животных в период отела на предмет появления оленят.
    1. Присвойте новорожденным оленятам уникальные идентификаторы, установив средние пластиковые ушные бирки с помощью аппликатора; на мужской конец бирки нанесите антибиотик для предотвращения возможной инфекции. Разместите бирку примерно по центру ушной раковины олененка.
    2. Измерьте массу тела (с точностью до 0.01 kg) с помощью цифровых подвесных весов, а также измерьте длину задней стопы и общую длину тела (с точностью до mm).
    3. Соберите образцы шерсти и отправьте их в удаленную лабораторию для определения родительства (см. таблицу материалов).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Определение родительства осуществлялось на основе ДНК с использованием проприетарной нестатистической специализированной базы данных на языке структурированных запросов. При попарном сравнении аллелей удаленная лаборатория подтверждала родительство, если исключались все, кроме одного самца и одной самки, на основании общего аллеля от каждого родителя по всем протестированным локусам (Б. Г. Кэссиди, личное сообщение). Этот метод определения родительства также использовался в предыдущих исследованиях белохвостых оленей в неволе30,31.
    4. Введите подкожно 2 cc токсоида Clostridium perfringens типов C и D и антитоксина Clostridium perfringens типов C и D, а также введите перорально каждому олененку 0.3 cc/kg ивермектина в пропиленгликоле (Veterinarian School Университета штата Миссисипи, Миссисипи, США).
  2. Проводите химическую иммобилизацию взрослых самцов (≥1.5 лет) в октябре и ноябре для сбора данных.
    1. Иммобилизуйте взрослых особей в загонах, используя ту же комбинацию телетамина HCl и ксилазина HCl, которая применялась для отлова диких животных (шаг 1.4).
    2. Во время седации сопроводите техника, который будет вводить дротики, в конец загона, где расположены приподнятые засилонки. В каждой из двух засилонок должен находиться один техник.
    3. Сотрудник, сопровождавший техника к засилонке, должен вернуться в противоположный конец загона.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Олени уходят от этих сотрудников и оказываются перед засилонками, где техники находятся в позиции для нанесения этичных выстрелов по каждому оленю.
    4. Произведите выстрел по оленю, когда он стоит боком и неподвижно (раздел 1.4).
    5. Подождите около 15 мин, пока животные, получившие дротик, полностью не иммобилизуются, прежде чем приближаться к ним.
    6. Подтвердите седацию особей, проверив глазные рефлексы (мигание). Нанесите на глаза офтальмологическую мазь и завяжите глаза оленю повязкой, чтобы снизить стресс.
    7. После успешной седации оленя контролируйте показатели его жизнедеятельности.
      1. Используйте ректальный термометр для оценки температуры тела после восстановления. Согрейте оленя подогреваемыми одеялами, если температура животного ниже 37.7 °C. Охладите оленя пакетами со льдом, если температура животного выше 40.0 °C.
    8. Поместите оленя на носилки армейского типа и транспортируйте его с помощью многофункционального транспортного средства (UTV) в заранее определенную зону сбора данных.
    9. После транспортировки зафиксируйте те же морфометрические показатели, что и при рождении (шаг 4.1).
      1. Измерьте массу тела (с точностью до 0.01 kg) с помощью цифровых подвесных весов, а также измерьте длину задней стопы и общую длину тела (с точностью до mm).
        ПРИМЕЧАНИЕ: Отдельные олени по-разному реагируют на комбинацию препаратов, используемых при седации, поэтому введите около 0.1-0.3 cc смеси телетамина HCl и ксилазина HCl (в зависимости от массы тела конкретного оленя), если особь выходит из состояния седации до завершения сбора данных.
    10. Введите всем оленям соответствующие их размеру дозы антибиотика, ивермектина, клостридиальной вакцины и вакцины против лептоспироза после их транспортировки в зону сбора данных (см. разделы 1 и 3).
  3. Произведите три измерения рогов взрослых самцов с помощью измерительной ленты для рогов, пока животное находится под седацией.
    1. До удаления рогов измерьте внутренний размах (наибольшее расстояние между главными балками), базальный обхват (наименьший диаметр, расположенный между венчиком и первым отростком G1) и длину главной балки (расстояние от основания рога до кончика главной балки).
    2. Удалите рога примерно на 3 cm выше венчика, используя сабельную пилу. Не удаляйте рога на расстоянии менее 3 cm.

Ветеринарная процедура для диких животных с использованием электроинструмента для удаления рогов, метод сохранения вида.
Рисунок 4Сбор данных по взрослым самцам. Удаление рогов у взрослого самца белохвостого оленя, содержащегося в неволе, с помощью сабельной пилы. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

  1. После сбора всех данных от седированного животного поместите оленя в соответствующий загон и введите либо 0,125 мг/кг йохимбина HCl28 или 4,0 мг/кг толазолина гидрохлорида32 для купирования действия ксилазина HCl. Наблюдайте за особями, чтобы они оставались в положении лежа на груди до полного прекращения седации и восстановления полной осознанности.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В случае возникновения осложнений, при которых потребуется эвтаназия животных, этичными способами усыпления являются деслокация головного мозга с помощью деструктора (болт-станера) и перерезание яремной вены.
  2. Перенесите рога в специально отведенную зону для завершения измерения их размера.
    1. Измерьте каждый отдельный зубец, выступающий из основного луча (G1, G2, G3, и т. д.) и дополнительные аномальные точки с помощью проволоки.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Точки, не имеющие соответствующего аналога на противоположной основной балке или не соответствующие определению типичного набора рогов, определяются Boone and Crockett Club33.
    2. Обмотайте проволоку в месте пересечения зубца с основной балкой и отметьте эту точку для справки.
    3. Измерьте расстояние от этой контрольной точки до кончика зубца и повторите процедуру для каждого зубца.
    4. Соберите остальные измерения окружности, определив самую узкую точку между зубцами G1 и G2 (окружность H2), между зубцами G2 и G3 (окружность H3) и, если имеется, между зубцами G3 и G4 (окружность H4).
    5. Если зубец G4 отсутствует, измерьте расстояние от середины зубца G3 до конца основной балки и измерьте окружность H4 в средней точке.
    6. Измеряйте менее четырех обхватов, если рога имеют менее трех отростков.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Например, при наличии двух типичных точек на основном луче измеряется только три окружности. Для расчета размера рогов могут использоваться другие руководства (Safari Club International), однако для обеспечения достоверности сравнения в отношении каждого животного должны применяться единообразные методы.
    7. После проведения всех измерений рассчитайте баллы за рога по системе, аналогичной общему баллу для нетипичных трофеев по системе Boone and Crockett.33.
    8. Взвесьте рога с точностью до 0,1 г на цифровых научных весах и установите минимальную критическую массу рогов в 1 г для животных первого года жизни с длиной рогов менее 3 см.
  3. Проведите химическую иммобилизацию молодых особей в садках в возрасте примерно 5,5 месяцев, используя те же методы, что и для взрослых особей (раздел 4.2), и пометьте молодых особей крупной пластиковой биркой в ушную раковину (шаг 4.1.1).
    1. Используйте те же дозировки смеси препаратов для иммобилизации взрослых особей в неволе, что и при иммобилизации диких оленей (раздел 1).
    2. Проведите те же измерения, что и при рождении (шаг 4.1.2), и введите те же профилактические препараты, что и взрослым (раздел 4.2).
      ПРИМЕЧАНИЕ: После сбора всех данных перевезите каждого молодого самца в случайно назначенное вспомогательное помещение с помощью прицепа.

5. Получение потомства первого и второго поколений

  1. Классифицируйте шестимесячных оленят, пойманных в дикой природе, а также потомство, рожденное в условиях неволи от матерей из дикой природы, как особей первого поколения.
  2. В период размножения помещайте двух самцов с 7–16 самками для достижения среднего соотношения полов при разведении — один самец на восемь самок.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Отбирайте самцов для разведения из вспомогательных центров содержания на основании их внешнего вида, так как наиболее здоровые самцы (с самыми крупными рогами и наибольшим размером тела) с наибольшей вероятностью смогут обслуживать самок на протяжении всего сезона размножения, не получив травм из-за агрессивного поведения самцов в этот период.
    1. Допускайте размножение оленей только с особями из того же региона происхождения (например, самцы из региона Delta спариваются с самками из региона Delta, самцы из региона Thin Loess — с самками из региона Thin Loess, а самцы из региона LCP — с самками из региона LCP).
  3. Классифицируйте оленей, зачатых родителями первого поколения, как потомство второго поколения. Выращивайте этих особей в неволе с рождения и кормите тем же высококачественным рационом, что и их родителей.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Самки могут приносить потомство на протяжении нескольких лет, но обычно от разных самцов в каждом году. Собирайте о потомстве второго поколения те же данные, что собирались для особей первого поколения и особей, пойманных в дикой природе.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Индивидуальные возраста, питательные качества и генетики влияние мужской белохвостый олень фенотип. Наш дизайн исследования позволили нам контролировать качество питания оленя были потребления и позволил нам определить возраст каждого оленя для допустимых сопоставлений в рамках года классы. Контролируя питания и возраста с дизайн нашего исследования, мы смогли лучше понять ли генетики уровня населения ограничения фенотип мужчин от двух исследуемых групп населения. Улучшение питания имели ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Есть несколько шагов, связанных с нашей протокола; Однако есть четыре важнейшие шаги, которые должны быть приняты для обеспечения успеха с настоящим Протоколом. Во-первых во время захвата диких оленей, должны быть несколько захвата мест во всем регионе единого источника (шаг 1.1.1). Наличие нескольких местах захвата гарантирует, что любой генетической изменчивости, связанные с областью источника будут представлены среди оленей. Во-вторых олень должен храниться разлученных региона-источника во время сезона размножения (ша...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Мы благодарим Департамент дикой природы Миссисипи, рыболовства и парки (MDWFP) за финансовую поддержку, с использованием ресурсов из федеральной помощи в Закон о восстановлении дикой природы (W-48-61). Мы благодарим MDWFP биологи W. Мак-Кинли, A. Blaylock, A. Gary и L. Уилф за их активное участие в сборе данных. Мы также благодарим S. Tucker как Координатор Фонда и несколько студентов, аспирантов и специалистов за их помощь в сборе данных. Эта рукопись является вкладом WFA427 Миссисипи государственного университета леса и научно-исследовательский центр дикой природы.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Лущенная кукуруза
Приподнятая подставка
Страховочный ремень
Шторка
Модель 196 ПроекторPneu-Dart, Пенсильвания, США
3cc Радиотелеметрические дартсы(Pneu-Dart, Пенсильвания, США)
Различные размеры Дартс (Pneu-Dart, Пенсильвания, США)
Teletamine HCl (Телазол, Форт Додж Animal Health, Айова, США)
Ксилазин гидрохлорид;(Аптека Западного Техаса Rx, Амарилло, Техас, США)
Yhoimbine HCl
Tolazoline HCl
Военная каталка
ректального термометра
Салфетка
20% сырого белка Оленьи гранулы (Purina AntlerMax Professional High Energy Breeder 59UB, Пурина, Миссури, США)
Кормушки
Коммерческий клевер (Дурана Кловер, Pennington Seed Co., Джорджия, США)
Коммерческая овсяница (Max-Q Focue, Pennington Seed Co., Джорджия, США)
Одеяла
Пакеты
Борьба с широколистными сорняками (2, 4-DB Herbacide, Butyrac 200)
Борьба с травой (Poast Herbacide, BASF Co.)
Гранулированный гельминтизаторSafeguard Co., действующее вещество фенбендазол
Средство от паразитов (Ивомек, Мериал Ко.)
ИнсектицидRiptide, McLaughlin Gormley King Co.) 
Средние и большие пластиковые ушные бирки (Allflex, Техас, США)
который назначил родствоDNA Solutions Animal Solutions Manager (DNA Solutions, Оклахома, США)
Цифровые весы (Моултри, EBSCO Industries, Inc.) 
Рулетка
Clostridium perfringens типов C и D Анатоксин эссенциальный 3 (Колорадская сывороточная компания)
Clostridium perfringens типов C и D Антитоксин лошадиного происхождения(Colorado Serum Co.)
Ивермектин в антибиотике пропиленгликоля
(Nuflor, Schuering-Plough Animal Health Corp., Нью-Джерси, США)
Ивермектин  (Norbrook Labratories, LTD., Даун, Северная Ирландия, Великобритания)
Клостидриальная вакцина(Vision 7 с SPUR, Ivesco LLC, Айова, США)
Вакцина против лептоспироза (Лептоферм-5, Pfizer, Inc., Нью-Йорк, США)
Прицеп для транспорта
Сабельная пила (DEWALT, Мэриленд, США)
Научный цифровой масштаб (Global Industrail, Global Equipment Company Inc)
Измерительная лента
туманообразовательная
пластиковая ушные бирки (Allflex, Техас, США)
Пластиковая палочка для ушей(Allflex, Техас, США)
для для затененияв виде корытасо льдомУдаленный сайт, для оленьих рогов,

Ссылки

  1. Bernardo, J. Maternal effects in animal ecology. Amer Zool. 36 (2), 83-105 (1996).
  2. Forchhammer, M. C., Clutton-Brock, T. H., Lindstrom, J., Albon, S. D. Climate andpopulation density induce long-term cohort variation in a northern ungulate. J Anim Ecol. 70 (5), 721-729 (2001).
  3. Freeman, E. D., Larsen, R. T., Clegg, K., McMillan, B. R. Long-lasting effects of maternal condition in free-ranging cervids. PLoS ONE. 8 (3), 5873(2013).
  4. Geist, V. Environmentally guided phenotype plasticity in mammals and some of its consequences to theoretical and applied biology. Alternative life-history styles of animals. Burton, M. N. , Kluwer Academic Publishers. Dordrect. 153-176 (1989).
  5. Clutton-Brock, T. H., Guinness, F. E., Albon, S. D. Reproductive success in stags. Red Deer: Behavior and ecology of two sexes. , The University of Chicago Press. Chicago. 151-152 (1982).
  6. Coltman, D. W., Festa-Bianchet, M., Jorgenson, J. T., Strobeck, C. Age-dependent sexual selection in bighorn rams. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 269 (1487), 165-172 (2002).
  7. Festa-Bianchet, M. The cost of trying: Weak interspecific correlations among life-history components in male ungulates. Can J Zool. 90 (9), 1072-1085 (2012).
  8. Kie, J. G., et al. Reproduction in North American elk Cervus elaphus.: Paternity of calves sired by males of mixed age classes. Wildlife Biol. 19 (3), 302-310 (2013).
  9. Welch, C. A., Keay, J., Kendall, K. C., Robbins, C. T. Constraints on frugivory by bears. Ecology. 78 (4), 1105-1119 (1997).
  10. Madsen, T., Shine, R. Silver spoons and snake body sizes: Prey availability early in life influences long-term growth rates of free-ranging pythons. J Anim Ecol. 69 (6), 952-958 (2000).
  11. Saino, N., Romano, M., Rubolini, D., Caprioli, M., Ambrosini, R., Fasola, M. Food supplementation affects egg albumen content and body size asymmetry among yellow-legged gull siblings. Behav Ecol Sociobiol. 64 (11), 1813-1821 (2010).
  12. Strickland, B. K., Demarais, S. Age and regional differences in antlers and mass of white-tailed deer. J Wildl Manage. 64 (4), 903-911 (2000).
  13. Jones, P. D., Demarais, S., Strickland, B. K., Edwards, S. L. Soil region effects on white-tailed deer forage protein content. Southeast Nat. 7 (4), 595-606 (2008).
  14. Strickland, B. K., Demarais, S. Influence of landscape composition and structure on antler size of white-tailed deer. J Wildl Manage. 72 (5), 1101-1108 (2008).
  15. DeYoung, R. W., Demarais, S., Honeycutt, R. L., Rooney, A. P., Gonzales, R. A., Gee, K. L. Genetic consequences of white-tailed deer (Odocoileus virginianus) restoration in Mississippi. Mol Ecol. 12 (12), 3237-3252 (2003).
  16. Sumners, J. A., et al. Variable breeding dates among populations of white-tailed deer in the southern United States: The legacy of restocking. J Wildl Manage. 79 (8), 1213-1225 (2015).
  17. Mech, D. L., Nelson, M. E., McRoberts, R. E. Effects of maternal and grandmaternal nutrition on deer mass and vulnerability to wolf predation. J Mammal. 72 (1), 146-151 (1991).
  18. Therrien, J. F., Còtê, S., Festa-Bianchet, D. M., Ouellet, J. P. Maternal care in white-tailed deer: trade-off between maintenance and reproduction under food restriction. Anim Behav. 75 (1), 235-243 (2008).
  19. Parker, K. L., Barboza, P. S., Gillingham, M. P. Nutrition integrates environmental responses of ungulates. Funct Ecol. 23 (1), 57-69 (2009).
  20. Monteith, K. L., Schmitz, L. E., Jenks, J. A., Delger, J. A., Bowyer, R. T. Growth of male white-tailed deer: consequences of maternal effects. J Mammal. 90 (3), 651-660 (2009).
  21. Tollefson, T. N., Shipley, L. A., Myers, W. L., Keisler, D. H., Nairanjana, D. Influence of summer and autumn nutrition on body condition and reproduction in lactating mule deer. J Wildl Manage. 74 (5), 974-986 (2010).
  22. Guynn, D. C., Mott, S. P., Cotton, W. D., Jacobson, H. A. Cooperative management of white-tailed deer on private lands in Mississippi. Wildl Soc Bull. 11 (3), 211-214 (1983).
  23. Pettry, D. E. Soil resource areas of Mississippi. Mississippi Agricultural and Forestry Experiment Station. , Mississippi State. Information Sheet 1278 (1977).
  24. Snipes, C. E., Nichols, S. P., Poston, D. H., Walker, T. W., Evans, L. P., Robinson, H. R. Current agricultural practices of the Mississippi Delta. Office of Agricultural Communications. , Mississippi State. Bulletin 1143 (2005).
  25. Baker, R. H. Origin, classification, and distribution of the white-tailed deer. White-tailed deer: ecology and management. Halls, L. K. , Stackpole, Pennsylvania. 1-18 (1984).
  26. Barbour, T., Allen, G. M. The white-tailed deer of eastern United States). J Mammal. 3 (2), 65-80 (1922).
  27. Rouleau, I., Crête, M., Ouellet, J. P. Contrasting the summer ecology of white-taileddeer inhabiting a forested and an agricultural landscape. Ecoscience. 9 (4), 459-469 (2002).
  28. Kreeger, T. J. Handbook of wildlife chemical immobilization. , International Wildlife Veterinary Services. Laramie. (1996).
  29. Pound, J. M., Miller, J. A., Oethler, D. D. Depletion rates of injected and ingested Ivermectin from blood serum of penned white-tailed deer, Odocoileus virginianus (Zimmermann) (Artiodactyla: Cervidae). J Medl Entomol. 41 (1), 65-68 (2004).
  30. Jones, P. D., Demarais, S., Strickland, B. K., DeYoung, R. W. Inconsistent relation of male body mass with breeding success in captive white-tailed deer. J Mammal. 92 (3), 527-533 (2011).
  31. Michel, E. S., Flinn, E. B., Demarais, S., Strickland, B. K., Wang, G., Dacus, C. M. Improved nutrition cues switch from efficiency to luxury phenotypes for a long-lived ungulate. Ecol Evol. 6 (20), 7276-7285 (2016).
  32. Miller, B. F., Muller, L. I., Doherty, T., Osborn, D. A., Miller, K. V., Warren, R. J. Effectiveness of antagonists for tiletamine-zolazepam/xylazine immobilization in female white-tailed deer. J Wildl Dis. 40 (3), 533-537 (2004).
  33. Nesbitt, W. H., Wright, P. L., Buckner, E. L., Byers, C. R., Reneau, J. Measuring and scoring North American big game trophies. 3rd edn. , Boone and Crockett Club. Missoula. (2009).
  34. Michel, E. S., Demarais, S., Strickland, B. K., Smith, T., Dacus, C. M. Antler characteristics are highly heritable but influenced by maternal factors. J Wildl Manage. 80 (8), 1420-1426 (2016).
  35. Severinghaus, C. W. Tooth development and wear as criteria of age in white-tailed deer. J Wildl Manage. 13 (2), 195-216 (1949).
  36. Gee, K. L., Webb, S. L., Holman, J. H. Accuracy and implications of visually estimating age of male white-tailed deer using physical characteristics from photographs. Wild Soc Bull. 38, 96-102 (2014).
  37. Storm, D. J., Samuel, M. D., Rolley, R. E., Beissel, T., Richards, B. J., Van Deelen, T. R. Estimating ages of white-tailed deer: Age and sex patterns of error using tooth wear-and-replacement and consistency of cementum annuli. Wild Soc Bull. 38 (1), 849-865 (2014).
  38. Montero, D., Izquierdo, M. S., Tort, L., Robaina, L., Vergara, J. M. High stocking density produces crowding stress altering some physiological and biochemical parameters in gilthead seabream, Sparus aurata., juveniles. Fish Physiol Biochem. 20 (1), 53-60 (1999).
  39. Charbonnel, N., et al. Stress demographic decline: a potential effect mediated by impairment of reproduction and immune function in cyclic vole populations. Physiol Biochem Zool. 81 (1), 63-73 (2008).
  40. Crews, D., Gillette, R., Scarpino, S. V., Manikkam, M., Savenkova, M. I., Skinner, M. K. Epigenetic transgenerational inheritance of altered stress responses. Proc Natl Acad Sci. 109 (23), 9143-9148 (2012).
  41. Maher, J. M., Werner, E. E., Denver, R. J. Stress hormones mediate predator-induced phenotypic plasticity in amphibian tadpoles. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 280 (1758), 20123075(2013).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

белохвостый оленьразмер роговмасса телапитательная ценностьпопуляционная генетикаконтролируемая средаморфометрические измеренияпротокол седацииудаление роговсбор данных