Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

В естественных условиях Обнаружение и анализ SUMOylation белка Rb в клетках человека

6.8K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/56096

⸱

2 ноября 2017 г.

 ,  ,  , 
1Department of Ophthalmology, Eye and ENT Hospital of Fudan University, 2Shanghai Key Laboratory of Visual Impairment and Restoration, Fudan University

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Маленький убиквитин связанных модификатор (сумо) семьи белки конъюгированных остатков лизина целевых белков для регулирования различных клеточных процессов в. Этот документ описывает протокол для обнаружения ретинобластомы (Rb) белка SUMOylation условиях эндогенных и экзогенных в клетках человека.

Аннотация

Столб-поступательные изменения белки имеют решающее значение для надлежащего регулирования внутриклеточного сигнала. Среди этих изменений маленький убиквитин связанных модификатор (сумо) — убиквитин как белок, который придается ковалентно остатков лизина целого ряда белков-мишеней для регулирования клеточных процессов, таких как транскрипции гена, репарации ДНК, белки взаимодействие и деградации, субцеллюлярные транспорта и передачи сигнала. Наиболее распространенный подход к выявлению белка SUMOylation основан на выражение и очистки тегами рекомбинантных белков в бактериях, позволяющие в vitro биохимические реакции, которая проста и подходит для адресации механистический вопросы. Однако из-за сложности процесса SUMOylation в естественных условиях, это более сложно обнаружить и проанализировать белка SUMOylation в клетках, особенно когда в местных условиях. В недавнем исследовании авторы этого документа показал, что белок эндогенного ретинобластомы (Rb), супрессора опухолевого роста, что является жизненно важным для отрицательных регуляции клеточного цикла прогрессии, специально SUMOylated в ранней фазе G1. Этот документ описывает протокол для обнаружения и анализа РБ SUMOylation условиях эндогенных и экзогенных в клетках человека. Этот протокол является подходящим для Фенотипические и функциональные исследования сумо модификация РБ, а также многих других сумо целевых белков, в клетках человека.

Введение

Точный контроль клеточного цикла прогрессии в эукариотических клетках основан на жесткой регулирования сети, которая гарантирует, что конкретного события происходят в упорядоченной форме1,2. Одним из ключевых игроков в этой сети является белка ретинобластомы (Rb), первый клонированный опухоли подавитель1,3. Считается, что белка Rb негативный регулятор клеточного цикла прогрессии, особенно для G0/G1 S фазового перехода, и опухоль роста4,5. Неспособность РБ функции либо непосредственно приводит к наиболее распространенных злокачественных внутриглазных в детей, ретинобластома, или способствует развитию многих других видов рака5. Кроме того Rb участвует в многих клеточных пути, включая дифференцировки клеток, chromatin remodeling и апоптоз, митохондрии опосредованной3,6,7.

Столб-поступательные изменения играют ключевую роль в регуляции RB функция8,9. Фосфорилирование является одной такой модификации, и это обычно приводит к инактивации РБ. В неработающем G0 клеток Rb активен с уровнем низких фосфорилирования. Как клетки прогресс через G0/G1 фазе, Rb, последовательно гипер фосфорилированных ряд белков циклин зависимых киназ (CDKs) и циклинов, например циклин E/CDK2 и циклин D/CDK4/6, который инактивирует РБ и устранить ее способность подавлять клеточный цикл связанные с генной выражение4,10. RB также может быть изменен маленький убиквитин связанных модификатор (сумо)11,12,13.

Сумо это убиквитин как белок, который ковалентно придается ряд белков-мишеней. Это важно для различных клеточных процессах, включая регуляции клеточного цикла, транскрипция, белка клеточной локализации и деградации, транспорта и ДНК ремонт14,,1516, 17 , 18. спряжение путь сумо состоит из димерной сумо E1 активации фермента SAE1/UBA2, единого E2 спрягать фермента Ubc9, несколько ligases E3 и сумо конкретных протеаз. Как правило должны обрабатываться зарождающейся сумо белки proteolytically для создания Зрелые формы. Зрелые сумо активированную гетеродимера E1 и затем передана фермента E2 Ubc9. Наконец C-терминал глицин сумо ковалентно конъюгированных для целевого лизин субстрата, и этот процесс обычно способствует E3 ligases. СУМО белка могут быть удалены из модифицированных субстрата конкретных протеаз. Предыдущего исследования, авторы этого документа показали, что SUMOylation РБ увеличивает его привязки к CDK2, ведущих к гипер фосфорилирования в ранней фазе G1, процесс, который необходим для клеточного цикла прогрессии13. Мы также показали, что потеря РБ SUMOylation вызывает снижение пролиферации. Кроме того было недавно продемонстрировано, что SUMOylation РБ защищает белка Rb от протеосомной оборот, тем самым увеличивая уровень белка Rb в клетках19. Таким образом SUMOylation играет важную роль в РБ функции в различных клеточных процессах. Для дальнейшего изучения, функциональным последствием и физиологической значимости РБ SUMOylation, важно разработать эффективный метод для анализа состояния сумо РБ в человеческих клеток или тканей пациента.

SUMOylation является обратимой, высоко динамичный процесс. Таким образом обычно трудно обнаружить сумо модифицированные белки полностью эндогенного условиях. Этот документ представлен метод обнаружения эндогенного РБ SUMOylation. Кроме того он показывает, как обнаруживать экзогенных SUMOylation РБ одичал типа Rb и его сумо недостаточным мутации11. В частности Jacobs et al. описал метод для увеличения сумо модификации данного субстрата конкретно на Ubc9 направленного синтеза SUMOylation (Рассматриваемое)20. На основе этого метода, этот протокол описывает как анализировать принудительного SUMOylation РБ и ее функциональных последствий. Учитывая, что сотни субстратов сумо были описаны ранее, и было выявлено более предполагаемый сумо субстратов из многих на основе протеомных анализов, этот протокол может применяться для анализа сумо модификация этих белков в клетках человека.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Обнаружение эндогенного SUMOylation РБ на ранней фазе G1

  1. клетки культуры и клеточного цикла синхронизации.
    1. Поддерживать HEK293 клетки в среднего роста, содержащие Дульбекко ' s Modified Eagle среднего (DMEM) дополнены 1% перо-стрептококк и 10% плода бычьим сывороточным (ФБС) при 37 ° C и 5% CO 2 в инкубаторе.
    2. Синхронизация HEK293 клетки в G0 этап.
      1. Фото HEK293 клетки, с помощью Горяева и семян ~1.5 x 10 7 клеток в 15 см блюдо с 25 мл средний рост за 24 часа до начала лечения. После достижения впадения аспирата 70% - 80%, средних и вымыть клетки дважды с 5 мл подогретую фосфат амортизированное saline (PBS).
      2. Добавить 25 мл DMEM, содержащей 1% пенициллина и стрептомицина и инкубации клеток при 37 ° C за 72 ч. вымыть клетки от пластину с помощью 3 мл ледяной PBS. Перевести клетки в новой трубки 5 мл.
      3. Анализ клеточного цикла подвергать небольшая часть клеток подачей cytometry (шаг 1.2); сбор оставшихся большинство клетки центрифугированием на 200 x g 5 мин при комнатной температуре и затем сохранять их в ультра нижней температуры морозильной камеры до анализа из РБ SUMOylation.
    3. Получить G1-фаза клетки, в конце процесса синхронизации G0, удалите DMEM и добавить обратно свежие рост средний, таким образом позволяя HEK293 клетки, чтобы повторно войти клеточного цикла. Затем, собирать клетки на различных этапах G1 (раннего G1: 30 min; G1: 2 h) для клеточного цикла пробирного анализа и дальнейшего сумо.
    4. Синхронизация HEK293 клеток в S фазе с помощью метода двойной тимидина блока.
      1. Клетки растут HEK293 confluency 50% и вымыть клетки с подогретую PBS. Затем добавьте среднего роста, дополнена тимидина 2,5 мм для 18 h (первый блок).
      2. Удаление среднего, тимидина содержащих, а затем вымыть клетки дважды с подогретую PBS. Добавить свежие роста среднего для 14 h освободить клетки.
      3. Отменить в среду с пипеткой и добавить среднего роста, дополнена тимидина 2,5 мм для другой 18 h (второй блок) до проведения анализа клеточного цикла и РБ SUMOylation.
    5. Для G2/М синхронизации, плита ~1.5 × 10 7 HEK293 клетки в 15 см блюдо с 25 мл средний рост за 24 ч. Затем добавьте Нокодазол к средству до конечной концентрации 400 нг/мл. Наконец, инкубации клеток для 16 h до проведения анализа клеточного цикла и РБ SUMOylation.
  2. Анализ клеточного цикла подачей cytometry.
    1. Вновь приостановить синхронизированные HEK293 в PBS и затем исправить суспензию клеток с помощью ледяной 70% этиловом спирте 2 h на 4 ° C. Обратите внимание, что к минимуму клеток кластеризации, добавьте суспензию клеток каплям ледяной 100% этанола для получения конечной концентрации 70% этиловом спирте во время нежно vortexing.
    2. Центрифуга клетки для 5 мин на 500 x g, затем тщательно удалить супернатант и вымыть клетки дважды с PBS. Повторите шаг центрифуги.
    3. Добавить 500 мкл PBS содержащие 50 мкг/мл нуклеиновых кислот пятна пропидий йодидом, 0.1% тритон X-100 и 1 мкг/мл РНКазы A к клеткам и хорошо перемешать. Инкубировать клетки для 15 мин при 37 ° с.
    4. Хранить образцы на 4 ° C до анализа подачей cytometry.
  3. Иммунопреципитации эндогенного белка Rb.
    1. Подготовить HEK293 lysates клетки.
      1. Lyse синхронизированных клеток HEK293, нежно вновь приостановить их в 1 мл ледяной радио иммунопреципитация пробирного буфера lysis (RIPA) (Таблица 1), содержащий свежие добавил 20 мм N-Ethylmaleimide, ингибитор isopeptidase, которые могли бы блокировать сумо протеаз и стабилизировать сумо конъюгатов.
      2. Далее гомогенизировать клетки на льду Dounce гомогенизации, sonication или просто проходящей через 10 раз через 21 G иглу на шприц 2 мл. Затем, инкубации клеток на льду на 5 мин
        Примечание: Анионные стиральный порошок натрия лаурилсульфат (СДП) в буфер RIPA имеет решающее значение для последующего определения Rb-сумо, как он может устранить неспецифических сигнал сумо, который является производным от non ковалентные взаимодействия между белка Rb и другими -Rb сумо видов.
    2. Центрифуга lysates клетки на 18,000 x г за 30 мин при 4 ° C. передать новый 1,5 мл микро-пробирок supernatants.
      Примечание: Протокол может быть приостановлена здесь. Белки могут храниться при температуре-80 ° C для по крайней мере 6 месяцев.
    3. Подготовить элемент управления вводом каждого образца для более поздних западной помарки, сохранить небольшую часть описанных выше супернатант новой трубки и магазина на -80 ° C.
    4. Для выше supernatants, добавить 1 мкг мыши неспецифических иммуноглобулинов G (IgG) того же вида и изотипа моноклональные антитела РБ, а также 20 мкл 50% протеина A/G-sepharose шлама. Затем, инкубировать 1 час при 4 ° C с нежным вращение.
    5. Центрифугуйте образцы на 3000 x g 3 мин при 4 ° C. тщательно собирать supernatants не нарушая бисер и передавать их на новый 1,5 мл микро-пробирок. Для каждого из образцов добавьте 5 мкл РБ основное антитело и 40 мкл 50% белка A/G-sepharose навозной жижи. Затем, инкубировать на ночь при 4 ° C с нежным вращение.
    6. Собирать бусы центрифугированием в 3000 x g 3 мин при температуре 4 ° C и тщательно удалить супернатант, закупорить. Обратите внимание, что для того, чтобы избежать потери шарик, не аспирационная сухой бусины.
    7. Мыть бусины четыре раза с 1 мл раствора в буфер RIPA. Каждый раз, mix трубы хорошо ротации их на 4 ° C на 15 мин собирать бусы центрифугированием низкой скорости на 3000 x g 3 мин при температуре 4 ° C и затем удалить supernatants.
    8. После удаления supernatants из окончательной стирки, вновь приостановить бусины в 30 мкл 1 x натрия Додециловый сульфат полиакриламидных гель электрофореза (SDS-PAGE) загрузки буфера (Таблица 1) и хорошо перемешать.
      1. Инкубировать трубы при 100 ° C в жару блока за 10 мин Центрифугуйте образцы на 12000 g x 1 мин для пеллет бисер. Тщательно собирать supernatants не нарушая бисер и передавать их на 1,5 мл микро-пробирок.
    9. Анализ образцов градиента SDS-PAGE 4-20% гель и западной помарки или хранить их при-20 ° C для последующего использования.

2. Анализ 6XHis-тегами экзогенных SUMOylation Rb в клетках человека

  1. клетки культуры и transfection.
    1. Семя ~ 6 × 10 6 HEK293 клетки в 10 см блюдо и проинкубируйте 24 ч в среднего роста в условиях нормальной клеточной культуры приобрести 75% - 85% вырожденная клетки. Перед трансфекции, удалите среднего роста и добавить 6 мл подогретую сокращение сыворотке среды (см. Таблицу материалы) и затем поместите блюда обратно в инкубатор.
    2. Для РБ учредительного SUMOylation assay, добавьте 15 мкг 6XHis-тегами Rb-Ubc9-WT, Rb-Ubc9-C93S, Ubc9-WT и Ubc9-C93S плазмид в 500 мкл сокращение сыворотке среде в 1,5 мл микро-пробирок, соответственно.
      1. Для анализа сумо спряжение дикого типа Rb и его SUMOylation дефектные мутант, смешать 10 мкг либо 6XHis-тегами плазмида Rb-WT или Rb-K720R вместе с GFP-SUMO1 (10 мкг) в 500 мкл сокращение сыворотке среднего в 1,5 мл микро центрифуга трубы 13.
    3. Между тем, в отдельном трубку, смешайте 50 мкл Реагента трансфекции (см. Таблицу материалы) в 500 мкл сокращение сыворотке среднего и инкубации при комнатной температуре на 5 мин
    4. Полностью объединить два отдельных труб, описанных выше и инкубации при комнатной температуре 15 мин добавить трансфекции реагент/плазмида комплексов в клетки и продолжают культуры для 8 h на 5% CO 2 и 37 ° C.
    5. Заменить сокращение сыворотке среднего роста среднего и инкубировать после transfection клетки в условиях нормальной культуры для 48 ч.
  2. Никель сродство тянуть вниз белка Rb 6XHis-тегами.
    1. Лизируют transfected клеток HEK293 и экстракт всего белки как описано в разделе 1.3.1.
    2. Центрифуг lysates клетки на 18,000 x g за 30 мин при 4 ° C. тщательно собирать supernatants и передавать их на чистой трубы.
      Примечание: Белка могут быть заморожены в этот момент для более чем 6 месяцев -80 ° C.
    3. Подготовить элемент управления вводом каждого образца для более поздних западной помарки, сохранить небольшую часть supernatants, описанных выше на новой трубки и магазина на -80 ° C.
    4. Мыть 25 мкл 50% никель Нитрилотриуксусная кислота (Ni-НТА) агарозы бусины с Буфер RIPA дважды в микро пластиковых пробирок 1.5 мл для каждого образца. Собирать бусы центрифугированием в 3000 x g 3 мин при 4 ° C.
    5. Добавить 1 M имидазола для каждого образца для получения конечной концентрации 10 мм. Затем добавьте каждый образец в пробирку, содержащую подготовленный бусины агарозы Ni-НТА.
    6. Инкубировать бусины и лизатов втечение 2 ч при 4 ° C с нежным вращения. Спиновые бусы на 3000 x g 3 мин при температуре 4 ° C и тщательно удалить supernatants, закупорить. Чтобы избежать потери шарик, не аспирационная сухой бусины.
    7. Мыть бусины с 1 мл раствора мыть буфер, содержащий 20 мм имидазола (Таблица 1). Каждый раз, mix трубы хорошо вращением на 4 ° C на 15 мин собирать бусы спиннинг на 3000 x g 3 мин при температуре 4 ° C и отбросить supernatants.
    8. После окончательной стирки, добавить 30 мкл Элюирующий буфер содержащий 250 мм имидазола (Таблица 1) для каждой выборки и Флик смешивать. Затем, Проинкубируйте 20 мин при 4 ° C до элюировать белки.
    9. Смесь каждого образца с 6 × SDS-PAGE загрузки буфера (Таблица 1). Затем, инкубировать трубы при 100 ° C в блоке тепла на 10 мин
    10. Центрифуг на 12000 x g за 1 мин до Пелле бисер. Тщательно собирать supernatants не нарушая бисер и передавать образцы 1,5 мл микро-пробирок. Образцы могут быть проанализированы на западной помарке или температуре-20 ° C для последующего использования.

3. Западной помарке

  1. загрузить иммунопреципитации или тянуть вниз образцы, полученные из предыдущих шагов на градиент гелях SDS-PAGE 4-20%. Проводить электрофорез на 120 V 90 мин отделить белки.
  2. Передачи белки от геля винилидена фторид (PVDF) мембраны, electroblotting на 300 мА для 90 мин при 4 ° C, с использованием метода transfer танк. Блокировать PVDF мембрану в блоке буфер, содержащий 5% обезжиренное молоко (Таблица 1) за 1 ч при комнатной температуре.
  3. Инкубировать мембраны с основное антитело в буфер разбавления антитела, содержащий 3% бычьим сывороточным альбумином (БСА) (Таблица 1) на ночь при 4 ° C. Для первичных антител, использовать рабочую концентрацию 0,5 мкг/мл (антитела анти SUMO1), или разбавления 1: 2000 (анти Rb и анти тубулин антитела), или 1:5,000 (анти GFP и против его антитела).
  4. Мыть мембраны 3 x 10 минут каждый раз, когда с помощью 1 x трис амортизированное saline с буфером анимации (TBST) (Таблица 1). Проинкубируйте мембрану с видов HRP пероксидазы хрена конъюгированных вторичные антитела разбавленных 1:5,000 в блоке буфер, содержащий 5% обезжиренное молоко (Таблица 1). Промойте мембрану 3 x 10 минут каждый раз, используя буфер 1 x TBST.
  5. Проинкубируйте мембрану с увеличенная хемолюминесценция (ЭСЛ) рабочим раствором. Покрытие мембраны с полиэтиленовой пленкой и подвергать рентгеновской пленки, в зависимости от силы сигнала.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Обнаружить эндогенного РБ SUMOylation во время цикла клетки прогрессии, это исследование первой синхронизации HEK293 клеток на пяти различных стадиях клеточного цикла (G0, раннего G1, G1, S и G2/М), как описано в разделе протокол этой бумаги. Качество синхронизации было подтверждено с помощью пятен нуклеиновой кислоты с пропидий йодидом следуют cytometry анализ потока (рис. 1). Далее клетки были собраны и анализироваться, денатурации Буфер RIPA. СУМО ингибито...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Этот документ описывает протокол обнаружения и анализа эндогенных SUMOylation Rb в клетках человека. Как этот метод специально ориентирована на эндогенного белка Rb без каких-либо чередование глобальной связанных с сумо сигнала, он является важным инструментом для расследования Rb-сумо модификация полностью естественный физиологический обстоятельствах.

Для достижения этой цели, важно иметь в виду, что: 1) хотя сумо состоит из четырех изоформ (SUMO1-4, каждая кодируемых различными генами) по ср...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Это исследование было поддержано грантов от науки и техники Шанхая Комиссии (Грант № 14411961800) и Национальный фонд естественных наук Китая (Грант № 81300805).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Модифицированная среда Dulbecco Eagle Medium (DMEM)Thermo Fisher Scientific11995065
Opti-MEM Thermo Fisher Scientific31985070
фетальная бычья сыворотка (FBS)Thermo Fisher Scientific26140079
пенициллин-стрептомицинThermo Fisher Scientific15140122
фосфатно-солевой буфер (PBS)Thermo Fisher Scientific10010023
трипсин-ЭДТАThermo Fisher Scientific25200056
ТимидинSigmaT9250
НокодазолSigmaM1404
йодид пропидияThermo Fisher ScientificP3566
Triton X-100 AMRESCO694
РНКаза А Thermo Fisher ScientificEN0531
N-этилмалеимидсигмаE3876 
Додецилсульфат натрия (SDS)AMRESCOM107
Заменитель нондета P-40 (NP-40)AMRESCOM158
Roche5892970001
мышиный иммуноглобулин G (IgG)Santa Cruz Biotechnologysc-2025
Rb антителаCell Signaling Technology#9309
Белок A/G-сефарозные шарикиSanta Cruz Biotechnologysc-2003
Lipofectamine-2000 Thermo Fisher Scientific11668019
никелевая нитрилотриуксусная кислота (Ni-NTA) Агарозные шарикиQIAGEN30230
имидазолсигмаi0250
4%-20% градиент SDS-PAGE гельBIO-RAD4561096
поливинилидендифторид (PVDF)МиллипорыIPVH00010
Tween-20AMRESCOM147
Антитело к тубулинуAbmartM30109
Антитело SUMO1Thermo Fisher Scientific33-2044
Антитело к GFPAbmartM20004
Пероксидаза хрена (HRP) вторичное антителоJackson ImmunoResearch Laboratories715-035-150
Набор для усиленной хемилюминесценции (ECL)Thermo Fisher Научный32106
Ингибитор протеазы

Ссылки

  1. Bertoli, C., Skotheim, J. M., de Bruin, R. A. Control of cell cycle transcription during G1 and S phases. Nat Rev Mol Cell Biol. 14 (8), 518-528 (2013).
  2. Massague, J. G1 cell-cycle control and cancer. Nature. 432 (7015), 298-306 (2004).
  3. Weinberg, R. A. The retinoblastoma protein and cell cycle control. Cell. 81 (3), 323-330 (1995).
  4. Giacinti, C., Giordano, A. RB and cell cycle progression. Oncogene. 25 (38), 5220-5227 (2006).
  5. Burkhart, D. L., Sage, J. Cellular mechanisms of tumour suppression by the retinoblastoma gene. Nat Rev Cancer. 8 (9), 671-682 (2008).
  6. Ferreira, R., Naguibneva, I., Pritchard, L. L., Ait-Si-Ali, S., Harel-Bellan, A. The Rb/chromatin connection and epigenetic control: opinion. Oncogene. 20 (24), 3128-3133 (2001).
  7. Hilgendorf, K. I., et al. The retinoblastoma protein induces apoptosis directly at the mitochondria. Genes Dev. 27 (9), 1003-1015 (2013).
  8. Munro, S., Carr, S. M., La Thangue, N. B. Diversity within the pRb pathway: is there a code of conduct. Oncogene. 31 (40), 4343-4352 (2012).
  9. Macdonald, J. I., Dick, F. A. Posttranslational modifications of the retinoblastoma tumor suppressor protein as determinants of function. Genes Cancer. 3 (11-12), 619-633 (2012).
  10. Ezhevsky, S. A., et al. Hypo-phosphorylation of the retinoblastoma protein (pRb) by cyclin D:Cdk4/6 complexes results in active pRb. Proc Natl Acad Sci U S A. 94 (20), 10699-10704 (1997).
  11. Ledl, A., Schmidt, D., Muller, S. Viral oncoproteins E1A and E7 and cellular LxCxE proteins repress SUMO modification of the retinoblastoma tumor suppressor. Oncogene. 24 (23), 3810-3818 (2005).
  12. Li, T., et al. Expression of SUMO-2/3 induced senescence through p53- and pRB-mediated pathways. J Biol Chem. 281 (47), 36221-36227 (2006).
  13. Meng, F., Qian, J., Yue, H., Li, X., Xue, K. SUMOylation of Rb enhances its binding with CDK2 and phosphorylation at early G1 phase. Cell Cycle. 15 (13), 1724-1732 (2016).
  14. Geiss-Friedlander, R., Melchior, F. Concepts in sumoylation: a decade on. Nat Rev Mol Cell Biol. 8 (12), 947-956 (2007).
  15. Flotho, A., Melchior, F. Sumoylation: a regulatory protein modification in health and disease. Annu Rev Biochem. 82, 357-385 (2013).
  16. Eifler, K., Vertegaal, A. C. SUMOylation-Mediated Regulation of Cell Cycle Progression and Cancer. Trends Biochem Sci. 40 (12), 779-793 (2015).
  17. Wilkinson, K. A., Henley, J. M. Mechanisms, regulation and consequences of protein SUMOylation. Biochem J. 428 (2), 133-145 (2010).
  18. Gill, G. SUMO and ubiquitin in the nucleus: different functions, similar mechanisms. Genes Dev. 18 (17), 2046-2059 (2004).
  19. Sharma, P., Kuehn, M. R. SENP1-modulated sumoylation regulates retinoblastoma protein (RB) and Lamin A/C interaction and stabilization. Oncogene. 35 (50), 6429-6438 (2016).
  20. Jakobs, A., et al. Ubc9 fusion-directed SUMOylation (UFDS): a method to analyze function of protein SUMOylation. Nat Methods. 4 (3), 245-250 (2007).
  21. Gareau, J. R., Lima, C. D. The SUMO pathway: emerging mechanisms that shape specificity, conjugation and recognition. Nat Rev Mol Cell Biol. 11 (12), 861-871 (2010).
  22. Bernier-Villamor, V., Sampson, D. A., Matunis, M. J., Lima, C. D. Structural basis for E2-mediated SUMO conjugation revealed by a complex between ubiquitin-conjugating enzyme Ubc9 and RanGAP1. Cell. 108 (3), 345-356 (2002).
  23. Saitoh, H., Hinchey, J. Functional heterogeneity of small ubiquitin-related protein modifiers SUMO-1 versus SUMO-2/3. J Biol Chem. 275 (9), 6252-6258 (2000).
  24. Ayaydin, F., Dasso, M. Distinct in vivo dynamics of vertebrate SUMO paralogues. Mol Biol Cell. 15 (12), 5208-5218 (2004).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

RbRbSUMOHEK293G1
В естественных условиях Обнаружение и анализ SUMOylation белка Rb в клетках человека
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.