Методическая статья

Методология для разработки таблиц продолжительности жизни для скального насекомых в поле с помощью белокрылки, Bemisia tabaci, хлопок как модель системы

DOI:

10.3791/56150

⸱

1 ноября 2017 г.

 , 
1USDA-ARS, Arid-Land Agricultural Research Center, 2Department of Entomology, Maricopa Agricultural Center, University of Arizona

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Таблицы позволяют количественная оценка источников и уровень смертности в популяции насекомых и способствовать пониманию, прогнозирование и Управление динамикой народонаселения в агроэкосистемах. Представлены методы для проведения и анализа на основе когортных жизни таблицы в поле насекомое с этапов скальный незрелых жизни.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Жизни таблицы предоставляют средства измерения графиков рождения и смерти от населения с течением времени. Они также могут использоваться для количественного определения источников и смертности населения, которая имеет целый ряд применений в области экологии, в том числе сельскохозяйственных экосистем. Горизонтальный, или на основе когортных, жизнь, таблицах для наиболее прямым и точный метод количественного определения жизненно населения, потому что они следуют группы особей в популяции от рождения до смерти. Здесь представлены протоколы для проведения и анализа на основе когортных жизни таблицы в поле, которое использует скальный природы жизни незрелых стадий глобального насекомых-вредителей, Bemisia tabaci. Индивидуальные насекомых расположены на нижней стороне листьев хлопка и отмечены рисунок небольшой круг вокруг насекомых с помощью нетоксичных пера. Это насекомое можно затем наблюдать неоднократно со временем с помощью рук линзы для измерения развития от одного этапа к следующему и для определения стадии конкретных причин смерти, связанных с естественным и внедрены смертности силами. Анализ объяснить, как правильно измерить несколько смертности силы закона одновременно в каждой сцене и как использовать такие данные для обеспечения значимого населения динамических показателей. Метод не учитывает напрямую взрослых выживанию и размножению, что ограничивает вывод динамики незрелых стадий. Пример представлен которая сосредоточена на измерении влияния снизу вверх (завод качество) и сверху вниз (естественных врагов) воздействия на динамику смертности B. tabaci в системе хлопка.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Таблицы являются общим инструментом с долгой историей в экологии1,2. Таблицы являются по существу график рождений и смертей в популяции с течением времени и такие данные могут использоваться для количественного определения ряда параметров, важных для понимания и прогнозирования динамики народонаселения. Таблицы могут также представлять информацию о причинах смерти, которые являются важными для понимания трофических взаимодействий и в разработке стратегий управления для управления вредителей в сельскохозяйственных и природных систем. Были построены многочисленные таблицы на местах жизни насекомых3,4,5, и анализы предоставили важное понимание динамики, регулирование и прогнозирование популяции насекомых во многих управляемых и естественные системы6,,78,9,10,11,12,13,14. В таблице жизни термин также часто используется для описания на основе лабораторных исследований, которые во многом изучения графиков рождений и смертей, но в искусственных условиях, которые не подвергайте насекомое естественной смертности сил и реалистичные переменные среды. Как правило лабораторных исследований призвана оценить сравнительные биотические потенциал видов. Методы, описанные здесь сосредоточена для поля на основе понял потенциал по отношению к окружающей среде исследования, определяющие.

Таблицы можно охарактеризовать как по горизонтали, в котором следуют реальные когорты равных пожилых лиц с самого начала их жизни до смерти, или по вертикали, где частые образцы принимаются через время населения с предполагаемой стабильной возрастной структуры и затем жизненно важные показатели выводятся из математически построенных когорты2,15. Тип таблицы жизни, которая может быть развернута зависит от характера насекомых. Горизонтальные таблицы часто могут быть разработаны для насекомых круглогодично (одно поколение в год), в то время как такой подход может быть очень сложным для multivoltine насекомых многочисленных и широко перекрывающихся поколений каждый год. Целый ряд аналитических методов были предложены и использованы для разработки вертикальной таблицы смертности для популяции насекомых (см. Саутвуд2 примеры). Методология, продемонстрировали здесь позволяет для развития жизни на основе когортных, горизонтальной таблицы в поле для multivoltine насекомых с характеристиками конкретных истории жизни, в частности, наличие этапов скальный жизни. Метод показал для основных вредителей в хлопка как модель системы.

Белокрылки, Bemisia tabaci биотипа B (= Bemisia argentifolii, Ближний Восток Азия незначительные 116) является глобальной вредителей сельского хозяйства, что негативно влияет на урожайность и качество многих агрономической и садовых культур, в том числе Защита сельскохозяйственных систем в умеренных регионах17. Воздействие происходит из-за флоэма кормления, что нарушает поток питательных веществ, заболеваний неизвестной этиологии, вызванных nymphal кормления, передачи многочисленных вирусов растений и урожай качество эффектов вследствие осаждения нектар18,19 . Насекомое имеет широкий принимающей диапазон и multivoltine, имея так много как 12-13 поколений в год в зависимости от региона и имеющегося продовольствия ресурсов20. Проблемы управления также усугубляется его высокий репродуктивный потенциал, его способность разогнать и мигрируют в пределах и между сельскохозяйственных систем, его отсутствие фазу покоя (диапауза или спячки) и его готовность быстро развивается устойчивость чтобы инсектициды, используемые для подавления21,22.

Значительный прогресс был достигнут в разработке комплексной борьбы с вредителями (IPM) стратегии эффективно и экономично управлять населения этого вредителя в затрагиваемых культур23,24,25. Эти системы управления были основаны на звук фундаментальное понимание динамики населения B. tabaci и таблиц продолжительности жизни были ключевым технику, которые позволили это понимание. В Аризоне таблиц продолжительности жизни позволили оценки и идентификации важных смертности сил для B. tabaci в нескольких культур систем13,26, позволили измерение динамики смертности относительно стратегии управления, включая нецелевые эффекты инсектицидов14, предоставили средства оценки потенциальных функциональных эффектов непромысловых трансгенного хлопка производства инсектицидные белки27, поддерживали жесткие Оценка классической биологического контроля программы28 (Наранхо, неопубликованные данные) и помог изучить сравнительные эффекты сверху вниз и снизу вверх воздействие на динамику Пешт29. Все эти приложения развернуты по методике, описанной здесь. Этот подход может быть полезным для изучения экологии популяции насекомых в ряд естественных и управляемых систем.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Примечание: описанные ниже методы считаются частичной жизни таблицы, потому что они не включают в себя явно воспроизведение или смертности взрослых этапов. Когорта термин эквивалентно поколения потому, что он рассматривает смертность от яйца до стадии взрослого.

1. создать поле сайты

  1. поведения таблиц продолжительности жизни в любое время во время роста урожая, когда присутствуют насекомые. Выбор когда начать исследования будет зависеть от целей и задач исследования.
  2. Выбрать два ряда культур, недалеко от центра участка для сведения к минимуму краевых эффектов от окружающих участков или необрабатываемых районах. Марк руководитель каждой строки с провод флаг или деревянные кола для облегчения легко переселения после урожая становится большим.
  3. Переместить 3-4 м от границы участка параллельно к строке. Используйте одну строку создать яйцо когорты и вторая установить Нимфа когорт

2. Создание когорты яйцо

  1. используйте 8 X рукой объектив для поиска для вновь установленных яйца на нижней стороне листьев в верхней части главного стебля хлопчатника (как правило второй или третий узел сверху).
    Примечание: Этапы жизни B. tabaci обычно распределяются вертикально в завод Купол с яйцами в верхней части растений и постепенно старые nymphal этапов ниже. Это приводит, потому что 1 st instar нимфы поселиться на том же листе как яйцо и завод добавляет листья выше первоначального откладка сайт, как он растет.
    1. Использования более высокой мощности 15 X объектив для наблюдения свежие яйца и проверки идентификации перед использованием объектива 8 x для обозначения насекомых. Свежие яйца имеют ярко белой окраской под объективом и выделиться из яйца, которые старше (цифры 1A и 1B). Яйца темнее в tannish цвет, как они зрелые.
  2. Используйте нетоксичные, ультра-тонкий-точка черного перманентный маркер для сделать небольшой круг вокруг яйцо. Нарисуйте круг достаточно мал, чтобы свести к минимуму вероятность самкой кладки еще яйцо в пределах круга позже.
    1. Вырезать отверстие или слот в сторону 8 X рукой объектив с ножовкой или сверло, чтобы перо может быть вставлена и рассматривать через призму при рисовании ( рис. 2A).
  3. Повторите этот процесс на том же листе, если это возможно, чтобы отметить другие яйца, маркировки в общей сложности не более чем четыре яйца на один лист и не более чем одно яйцо на лист сектор. Для хлопка, лист подразделяется на четыре сектора, три крупных листьев вен ( рис. 3).
  4. Галстук небольшой легкий картонный язычок вокруг черешок листа, содержащей помеченные яйцеклетки. Номер тега и включают в себя обозначение для номера участка или лечения в зависимости от экспериментальный дизайн ( рис. 2B).
  5. Галстук длиной длиной 1 м Пометка ленты вокруг главного стебля в верхней части растения. Использовать лук стиль галстук, так что ленты могут быть легко перемещены при необходимости держать его видимым для повторных посещений в это расположение в поле.
  6. Запись конечного числа и информацию на портативный ноутбук аналоговый или электронной (Таблица 1). Позиционные информации использует секторов листа более мелко Примечание местоположение (например, 1-1, 1-2, 1-4 обозначения яйца в секторах 1, 2 и 4 на лист #1).
  7. Создать каждой группы на один день.
    Примечание: Когорты в данный участок состоит из минимум 50 яиц всего.
    1. Использования не более чем один лист на растение лучше распределять членов когорты.
      Примечание: В зависимости от плотности насекомых, это может включать любой из 13 листьев с 3-4 яйца, или 50 листья с одним яйцом. Отдельные растения выбираются распространить заметное листья вдоль столько строки как можно скорее.

3. Создание Нимфа когорт

  1. использования, 8 X объектив рука для поиска недавно поселились 1 st Инстар нимфы на нижней стороне листьев о 3-5 листьев вниз от верхней части главного стебля хлопчатника. Использовать 15 X объектив для проверки идентификации до маркировки с помощью 8 X объектив.
  2. Использовать не токсичен, ультра-тонкий-точка черного перманентный маркер для сделать небольшой круг вокруг Нимфа. Нарисуйте круг достаточно мал, чтобы свести к минимуму вероятность урегулирования в пределах круга позже сканер.
    Примечание: Только что вылупившихся 1 st instar нимфы, называются сканеров, которые можно перемещать несколько см в течение первых нескольких часов после яйца люк. Затем он " оседает " на сайт, где он будет кормить и линьки без когда-либо двигаться снова до тех пор, пока Взрослый возникает. Они поселились, 1 st instar нимф ( рис. 1 c) отличаются от сканеров. Во-первых, они неподвижно и второй, они более 2-мерной и заложить жесткой и плоский лист и имеют несколько более полупрозрачный янтарный цвет.
    1. Вырезать отверстие или слот в сторону 8 X рукой объектив с ножовкой или сверло, чтобы перо может быть вставлена и рассматривать через призму при рисовании ( рис. 2A).
  3. Повторить этот процесс на том же листе, если это возможно, чтобы отметить другие нимфы, маркировка не более четырех нимфы на один лист и не более чем одного нимфа на лист сектор. Для хлопка, лист подразделяется на четыре сектора, три крупных листьев вен ( рис. 3).
  4. Галстук небольшой легкий картонный язычок вокруг черешок листа, содержащей помеченные Нимфа. Номер тега и включают в себя обозначение для номера участка или лечения в зависимости от экспериментальный дизайн ( рис. 2B).
  5. Галстук длиной длиной 1 м Пометка ленты вокруг главного стебля в верхней части растения. Использовать лук стиль галстук, так что ленты могут быть легко перемещены при необходимости держать его видимым для повторных посещений в это расположение в поле.
  6. Запись конечного числа и информацию на портативный ноутбук аналоговый или электронной (Таблица 1). Позиционные информации использует секторов листа более мелко Примечание местоположение (например, 1-1, 1-2, 1-4 обозначения нимфы в секторах 1, 2 и 4 на лист #1).
  7. Обеспечить, которые поселились 1 st Инстар нимф и отмечены не роботы, вернитесь к каждой помеченной листьев и наблюдать заметное насекомых около 1-2 ч после первоначальной настройки. Перемаркировка поселились нимфы могут оказаться необходимыми.
  8. Установить на один день каждая когорта.
    Примечание: Когорты в данный участок состоит из минимум 50 нимфы всего. Не более чем один лист используется одно растение лучше распределять членов когорты. В зависимости от плотности насекомых это может включать любой из 13 листьев с 3-4 нимф или 50 листья с одной Нимфа. Отдельные растения выбираются распространить заметное листья вдоль столько строки как можно скорее. Из-за этапа 1 Гусеничный instar st яйца, отмеченные в Протоколе 2 являются не же насекомых, которые затем как Нимфаs. Таким образом измеряется не гусеничный смертности и таблице жизни слегка является несвязанным вовремя, потому что яйцо и Нимфа когорты обычно устанавливается в тот же день. Исследования показали обходчик смертности является незначительным и может быть по существу игнорируется 30.

4. Наблюдение и запись яйца люк и смертности

  1. после 8-10 d (28-32 ° C; среднее Аризона летних условий) после создания яйцо когорт, собирают листья, содержащей помеченные яйца и вернуться в лабораторию для наблюдения под Пройдя через микроскоп. Яйца слишком малы, чтобы четко оценить смертности и причин смертности в поле.
  2. Определения причин смерти для яиц и записывать в блокнот, начатого в когорте учреждения (Таблица 1).
    Примечание: Смерть характеризуется как смещения, хищничество или нежизнеспособности. Смещения: яйцо отсутствует из-за погодных явлений (ветер, выдувания пыли, дождь) или жевать хищничество. Хищничество: сосание хищников оставить позади рухнул хориона ( рис. 4 K). Заштрихованная яйца могут появиться рухнула, но будет вертикальной щели в яйцо хориона. Используйте ПИН-код minuten дразнить Хорион на листе под микроскопом, чтобы искать эту щель. Нежизнеспособности: яйца не люк после периода 8-10 d и Темный загар цвета. Под Аризона летних условий (28-32 ° C) яйца будут обычно люк в 5-7 дней. Это может отличаться в других регионах и корректировки могут быть необходимы в коллекции время от поля.

5. Наблюдение и запись Nymphal развития и смертности

  1. одного до двух дней после создания когорты, используйте 15 X объектив для оценки развития нимф и назначить причиной смертности, если мертвые. Сделать замечания по крайней мере три раза в неделю (каждый день).
    1. Использовать относительный размер ( Рисунок 1 c -G) и времени после создания оценить instar.
      Примечание: Есть четыре nymphal тела и развития является быстрое Аризона летних условиях (28-32 ° C) с каждой из первых трех этапов, продолжительностью около 2 d и заключительный этап продолжительностью 3-5 d (всего развитие nymphal 2 wk или меньше). Новые наблюдатели должны научиться instar размеров, наблюдая насекомых, выращены в лабораторных или парник на растения-хозяина интерес. Относительный объем в живот bacteriosomes (Симбионт укрывательстве органов белокрылки) относительно общего размера тела является полезным показателем nymphal instar ( Рисунок 1 c -G). Недавно расплавленная нимфы очень плоский и полупрозрачные. Нимфы готовы линьки более напыщенный, купольные в профиль и непрозрачный вид.
    2. Определить причины смерти нимф и записывать в блокнот, начатого в когорте учреждения (Таблица 1).
      Примечание: Смерть характеризуется как смещения, паразитизм, хищничество или неизвестных в зависимости от возраста ( рис. 4). Смещения: нимфы любой стадии пропавших без вести из-за погодных явлений (ветер, выдувания пыли, дождь) или жевать хищничество. Оценка стадии выбили нимфы как средний этап мертвых и живых нимфы на дату данного наблюдения. Паразитизм: только наблюдаемые в 4 й Инстар нимф. Парные желтоватым bacterisomes перемещенных в результате развивающихся диморфизмом личинка ( рис. 4A); личиночной стадии иногда является видимым ( рис. 4 c). Стадия куколки Паразитоид отличительные и родов конкретные ( рис. 4б , 4 D). Хищничество: сосание хищников будет эвакуировать содержимое нимфы и оставить позади рухнул трупа ( Рисунок 4 g -4I). Редко жевательные хищник может оставить доказательств ( Рисунок 4J). Неизвестный: смерть, которые нельзя отнести к одной из вышеуказанных причин. Во влажной среде грибковые заболевания может быть дополнительной причиной смерти. Эта категория может включать нимфы, убит диморфизмом хост кормления. Нимфы, которые выживают возникают как взрослые, оставляя отличительные т образный слот в exuviae ( рис. 1 H)
  2. запись стадии развития (если жив) и привести к смерти и стадии в записной книжке, начатого в когорте Создание (Таблица 1).
  3. После того как все нимфы, наблюдаемые на одном листе либо умерли или возникла как взрослый белокрылки, сбор листьев и вернуться в лабораторию. Используйте увеличение рассечения микроскопа для подтверждения, что причиной смерти, отметил в поле является точной и сделать какие-то корректировки.
    Примечание: Не все не выбили мертвых насекомых будет оставаться на листе в течение типичного двух недельного наблюдения и поэтому некоторых проверок не будет возможным.

6. Данные резюме и анализ

  1. Consult ресурсы доступны, чтобы помочь в построении таблиц продолжительности жизни из данных, собранных 2 , 8 , 11 , 31. В таблице 2 представлена таблица жизни пример.
    Примечание: Надежные жизни таблицы анализы требуют несколько таблиц самостоятельной жизни, проведенных в течение времени и/или различных сайтов. Для multivoltine насекомых как B. tabaci это может быть несколько таблиц продолжительности жизни в течение одного сезона и/или несколько сезонов и сайтов.
    1. Оценку реальных смертности (d x/l 0) на основании количество насекомых, созданная в начале поколения.
      Реальный смертность = (d x/l 0)
      где d x — это номер, умирает во время этапа x и l 0 количество насекомых в начале поколения. Эти показатели смертности являются добавки и сумма d x через этапы оценки общей смертности для поколения (Таблица 2).
    2. Оценки очевидной смертности в сцене (x q) на основании количество насекомых живых в начале конкретной стадии (таблица 2). Оценки стадии конкретных q x или фактор в рамках стадии конкретных q x. Эти показатели являются добавка только в рамках этапа.
    3. Определить маргинальных смертности по формуле:
      M B = d B / (1-d A)
      предельная ставка коэффициента смертности, где M B B, d B является очевидным, уровень смертности от фактор B и d A является очевидным коэффициент смертности, суммируются для всех факторов смертности, которые могут переиграть фактор B 13 , 32 (Таблица 3).
      Примечание: Сидячие насекомых, как белокрылки и многие другие насекомые, несколько причин смерти в течение этапа конкретной жизни не последовательно. Вместо этого они действуют одновременно и поэтому оценка маргинальных ставок требуется точно оценить, что этап-коэффициенты смертности от любого из 32 , 34. Например Паразитоид может атаковать Нимфа белокрылки. Может Люк диморфизмом яйца и личинки могут развиваться в принимающей. Эта деятельность, первоначально бессимптомной для наблюдателя,, или скорее бы, убить насекомое хост и должны зачисляться в качестве причины смерти. Но в некоторых случаях, хищник может атаковать этот же Нимфа или нимфы могут быть смещены от листьев, ведущих наблюдателя обратить внимание на причины смерти как хищничества или смещения. Маргинальные смертности исправляет это.
      1. Преобразование маргинальных этап-коэффициенты до 35 k значения как k = - ln (1 - М), где ln < / EM> Это натуральный логарифм и M является маргинальным смертности интерес. k-значения добавки и это упрощает дальнейшего анализа. k значения может быть преобразован обратно в пропорциональной смертности на 1 - e [-k].
    4. Оценки незаменимым смертности как [1 - е (-TotalK)]-[1 - e (-{TotalK - kvalue я })].
      Примечание: Это дает часть общей смертности поколений, которые не будут реализованы, если фактор особенно смертности был удален. Например сколько поколений смертности могут быть потеряны, если хищничества или паразитизм были удалены из-за Инсектицид спрей? Незаменимый смертности, по оценкам, таким образом предполагается, что не плотность зависимость смертности.
      5. Факторы
    5. ключ
      1. использовать простой графический анализ для k значение для любой одной стадии, или какой-либо один фактор смертности (или один коэффициент смертности в течение одного этапа) против значение всего-K для целого поколения (всего K = сумма значений всех отдельных k-).
        Примечание: Фактором смертности, который наиболее тесно имитирует модель всего-K лучших является ключевым фактором, фактором, который способствует наиболее изменения поколений смертности 35. Более количественный метод откатывается отдельных k значений на всего-K и идентифицирует ключевым фактором как один с наибольший наклон значение 3.
    6. Тест зависимость плотности регрессирующим k-значения для факторов интереса в журнале естественной плотности популяции насекомых, измеряется независимо (например, 13). Значительные положительные склона предлагает прямой плотность зависимость и отрицательный наклон обратная зависимость.
      Примечание: С дополнительной жизни таблице информацию о взрослых выживания и воспроизводства, множество дополнительных параметров (например, время генерации, чистый показатель репродуктивного, мгновенно темпы увеличения, ожидаемая продолжительность жизни на данной стадии и т.д.) и анализы (может проводиться матричных моделей и эластичность анализов 36 , 37.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Пример когорты, представлена в таблице 2 Показать типичной презентации и расчет жизни таблицы результатов. Самые полезные данные фиксируются в маргинальных смертности для каждого фактора в рамках каждого этапа. Путем преобразования этих ставок в k значения (протокол раздел 6), этап-смертности над всеми факторами и коэффициент смертности на всех этапах можно легко оценить, как можно всего поколений смертности. Это также облегчает незаменимым анализа смертности, ключ фактор...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Как правило в развитие жизни, которую таблицы для multivoltine насекомых с широко перекрывающихся поколений ограничиваются вертикальный подход, где население неоднократно выборку во времени и различных графических и математические методы используются для оценки вербовки в различные этапы и вывести показатели смертности от изменения плотности различных этапов жизни2. Сила подход здесь является, что он переходит это ограничение, изолировать группу неподвижной равных возрасте насекомых от населения и...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы благодарим D. Эштон, V. Barkley, K. Beimfohr, F. Bojorquez, J. Кантрелл, G. Кастро, р. Кристенсен, J. фирн, C. Jara, D. Meade, G. Owens, L. Rodarte, D. Sieglaff, A. Sonoqui, M. Стефанек, б. Стюарт, J. Трехо, A. Slade и э. Йескас для оказания технической помощи. Частичная поддержка была оказана USDA-сельскохозяйственных исследований, USDA-Национальный институт службы для производства продовольствия и сельского хозяйства КБСВ расширение программы и Пешт управления альтернативы специальных проектов, хлопковой Incorporated, Аризона Ассоциация производителей хлопка, хлопка Фонды, USDA-кри, NAPIAP (Западный регион) и Западном регионе IPM специальных проектов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Маркировочная лентаGempler, Джейнсвилл, Висконсин США52273Пятицветные
бирки товаров ManilaAmerican Tag Company, Пико Ривера, Калифорния США12-104
Ультратонкий маркерSanford, Беллвуд, Иллинойс, США 451898Доступно в Office Max, Amazon
Peak Loupe 8XAdorama, Нью-Йорк, Нью-Йорк США2018 г
.Peak Loupe 15XAdorama, Нью-Йорк, Нью-Йорк, США19621

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Deevey, E. S. Life tables for natural populations of animals. Quart. Rev. Biol. 22, 283-314 (1947).
  2. Southwood, T. R. E. Ecological Methods. , 2nd Ed, Chapman and Hall. (1978).
  3. Podoler, H., Rogers, D. A new method for the identification of key factors from life-table data. J Anim Ecol. 44, 85-114 (1975).
  4. Stiling, P. Density-dependent processes and key factors in insect populations. J Anim Ecol. 57, 581-593 (1988).
  5. Cornell, H. V., Hawkins, B. A. Survival patterns and mortality sources of herbivorous insects: some demographic trends. Am Nat. 145, 563-593 (1995).
  6. Morris, R. F. The interpretation of mortality data in studies on population dynamics. Can Entomol. 89, 49-69 (1957).
  7. Morris, R. F. Single-factor analysis in population dynamics. Ecology. 40, 580-588 (1959).
  8. Varley, G. C., Gradwell, G. R., Hassell, M. P. Insect Population Ecology: An Analytical Approach. , Blackwell Sci. Pub. London. 212(1973).
  9. Southwood, T. R. E., Reader, P. M. Population census data and key factor analysis for the viburnum whitefly, Aleurotrachelus jelinekii, on three bushes. J Anim Ecol. 45, 313-325 (1976).
  10. Royama, T. Fundamental concepts and methodologies for the analysis of animal population dynamics, with particular reference to univoltine speices. Ecol Monogr. 51, 473-493 (1981).
  11. Carey, J. R. The multiple decrement life table: a unifying framework for cause-of-death analysis in ecology. Oecologia. 78, 131-137 (1989).
  12. Hawkins, B. A., Mills, N. J., Jervis, M. A., Price, P. W. Is the biological control of insects a natural phenomenon? Oikos. 86, 493-506 (1999).
  13. Naranjo, S. E., Ellsworth, P. C. Mortality dynamics and population regulation in Bemisia tabaci. Entomol Exp Appl. 116, 93-108 (2005).
  14. Naranjo, S. E., Ellsworth, P. C. The contribution of conservation biological control to integrated control of Bemisia tabaci in cotton. Biol Control. 51, 458-470 (2009).
  15. Applied Demography for Biologist: With Special Emphasis on Insects. Carey, J. R. , Oxford, NY. (1993).
  16. Dinsdale, A., Cook, L., Riginos, C., Buckley, Y. M., De Barro, P. Refined global analysis of Bemisia tabaci (Hemiptera: Sternorrhyncha: Aleyrodoidea: Aleyrodidae) Mitochondrial cytochrome oxidase 1 to identify species level genetic boundaries. Ann Entomol Soc Am. 103, 196-208 (2010).
  17. Oliveira, M. R. V., Henneberry, T. J., Anderson, P. History, current status, and collaborative research projects for Bemisia tabaci. Crop Protect. 20, 709-723 (2001).
  18. Jones, D. R. Plant viruses transmitted by whiteflies. Eur J Plant Pathol. 109, 195-219 (2003).
  19. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service. Sticky Cotton - Causes, Impacts and Prevention. Hequet, E. F., Henneberry, T. J., Nichols, R. L. , Technical Bulletin No. 1915 (2007).
  20. Palumbo, J. C., Horowitz, A. R., Prabhaker, N. Insecticidal control and resistance management for Bemisia tabaci. Crop Protect. 20, 739-765 (2001).
  21. Horowitz, A. R., Kontsedalov, S., Khasdan, V., Ishaaya, I. Biotypes B and Q of Bemisia tabaci and their relevance to neonicotinoid and pyriproxyfen resistance. Arch Insect Biochem Physiol. 58, 216-225 (2005).
  22. Nauen, R., Denholm, I. Resistance of insect pests to neonicotinoid insecticides: current status and future prospects. Arch Insect Biochem Physiol. 58, 200-215 (2005).
  23. Naranjo, S. E., Ellsworth, P. C. Fifty years of the integrated control concept: moving the model and implementation forward in Arizona. Pest Manage Sci. 65, 1267-1286 (2009).
  24. Palumbo, J. C., Castle, S. J. IPM for fresh-market lettuce production in the desert southwest: the produce paradox. Pest Manage Sci. 65, 1311-1320 (2009).
  25. Ellsworth, P. C., Martinez-Carrillo, J. L. IPM for Bemisia tabaci: a case study from North America. Crop Protect. 20, 853-869 (2001).
  26. Naranjo, S. E., Ellsworth, P. C., Cañas, L. Mortality and populations dynamics of Bemisia tabaci within a multi-crop system. , USDA Forest Service (2009).
  27. Naranjo, S. E. Long-term assessment of the effects of transgenic Bt cotton on the function of the natural enemy community. Environ Entomol. 34, 1211-1223 (2005).
  28. Naranjo, S. E. Establishment and impact of exotic Aphelinid parasitoids in Arizona: A life table approach. J Insect Sci. 8, 36(2008).
  29. Asiimwe, P., Ellsworth, P. C., Naranjo, S. E. Natural enemy impacts on Bemisia tabaci (MEAM1) dominate plant quality effects in the cotton system. Ecol Entomol. 41, 642-652 (2016).
  30. Naranjo, S. E. Survival and movement of Bemisia tabaci (Homoptera: Aleyrodidae) crawlers on cotton. Southwest Entomol. 32, 17-23 (2007).
  31. Bellows, T. S., Van Driesche, R. G., Elkinton, J. S. Life-table construction and analysis in the evaluation of natural enemies. Annu Rev Entomol. 37, 587-614 (1992).
  32. Buonaccorsi, J. P., Elkinton, J. S. Estimation of contemporaneous mortality factors. Res Popul Ecol. 32, 151-171 (1990).
  33. Royama, T. Evaluation of mortality factors in insect life table analysis. Ecol Monogr. 51, 495-505 (1981).
  34. Elkinton, J. S., Buonaccorsi, J. P., Bellows, T. S., Van Driesche, R. G. Marginal attack rate, k-values and density dependence in the analysis of contemporaneous mortality factors. Res. Pop. Ecol. 34, 29-44 (1992).
  35. Varley, G. C., Gradwell, G. R. Key factors in population studies. J Anim Ecol. 29, 399-401 (1960).
  36. Caswell, H. Matrix population models. , 2nd ed, Sinauer Associates, Inc. Publishers. (2001).
  37. Mills, N. J. Selecting effective parasitoids for biological control introductions: Codling moth as a case study. Biol Control. 34, 274-282 (2005).
  38. Foltyn, S., Gerling, D. The parasitoids of the aleyrodid Bemisia tabaci in Israel: development, host preference and discrimination of the aphelinid wasp Eretmocerus mundus. Entomol Exp Appl. 38, 255-260 (1985).
  39. Headrick, D. H., Bellows, T. S., Perring, T. M. Behaviors of female Eretmocerus sp nr californicus (Hymenoptera: Aphelinidae) attacking Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) on sweet potato. Environ Entomol. 24, 412-422 (1995).
  40. Liu, T. X., Stansly, P. A. Oviposition, development, and survivorship of Encarsia pergandiella (Hymenoptera: Aphelinidae) in four instars of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae). Ann Entomol Soc Am. 89, 96-102 (1996).
  41. Ardeh, M. J., deJong, P. W., vanLenteren, J. C. Selection of Bemisia nymphal stages for oviposition or feeding, and host-handling times of arrhenotokous and thelytokous Eretmocerus mundus and arrhenotokous E-eremicus. BioControl. 50, 449-463 (2005).
  42. Zang, L. S., Liu, T. X. Host-feeding of three parasitoid species on Bemisia tabaci biotype B and implications for whitefly biological control. Entomol Exp Appl. 127, 55-63 (2008).
  43. Hagler, J. R., Naranjo, S. E. Determining the frequency of heteropteran predation on sweetpotato whitefly and pink bollworm using multiple ELISAs. Entomol Exp Appl. 72, 63-70 (1994).
  44. Hagler, J. R., Naranjo, S. E. Qualitative survey of two Coleopteran predators of Bemisia tabaci (Homoptera, Aleyrodidae) and Pectinophora gossypiella (Lepidoptera, Gelechiidae) using a multiple prey gut content ELISA. Environ Entomol. 23, 193-197 (1994).
  45. Hagler, J. R., Jackson, C. G., Isaacs, R., Machtley, S. A. Foraging behavior and prey interactions by a guild of predators on various lifestages of Bemisia tabaci. J Insect Sci. 4, (2004).
  46. Price, J. F., Taborsky, D. Movement of immature Bemisia tabaci (Homoptera, Aleyrodidae) on poinsettia leaves. Florida Entomol. 75, 151-153 (1992).
  47. Simmons, A. M. Settling of crawlers of Bemisia tabaci (Homoptera : Aleyrodidae) on five vegetable hosts. Ann Entomol Soc Am. 95, 464-468 (2002).
  48. Royama, T. A fundamental problem in key factor analysis. Ecology. 77, 87-93 (1996).
  49. Stiling, P., Throckmorton, A., Silvanima, J., Strong, D. R. Does spatial scale affect the incidence of density dependence - A field test with insect parasitoids. Ecology. 72, 2143-2154 (1991).
  50. Hassell, M., Latto, J., May, R. Seeing the wood for the trees: detecting density dependence from existing life table studies. J Anim Ecol. 58, 883-892 (1989).
  51. Berryman, A. A. Population regulation, emergent properties, and a requiem for density dependence. Oikos. 99, 600-606 (2002).
  52. Sibly, R. M., Smith, R. H. Identifying key factors using lambda contribution analysis. J Anim Ecol. 67, 17-24 (1998).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи