Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Assay органоид растворения (ОРА) для функционального анализа кишечных стволовых и ниша клеток

11.3K просмотров

DOI:

10.3791/56329

20 ноября 2017 г.

В этой статье

Краткое содержание

Кишечные органоид культур устанавливаются от всей склепы и не позволяют анализ самообновления и дифференциации в клетки конкретных моды. Этот протокол описывает воссоздание отсортированных стволовых (Lgr5+) и ниши (Paneth) клетки, которые порождают organoids обеспечивая их предыдущие биохимических и генетических изменений и функционального анализа.

Аннотация

Кишечного эпителия характеризуется чрезвычайно быстрая текучесть. В млекопитающих весь эпителиальной выстилки обновляется в течение 4-5 дней. Кишечные стволовые клетки находятся в нижней части склепы Lieberkühn, выделяются по экспрессии гена Lgr5 и сохранения гомеостаза через их характерным Высокий пролиферативный1. На протяжении тонкого кишечника Lgr5+ стволовые клетки являются перемешан с специализированными секреторных клеток, называемых Paneth клеток. Paneth клетки секретируют антибактериальных соединений (то есть, лизоцима и cryptdins/дефензинов) и оказывают контрольный роль на кишечную флору. Совсем недавно Роман функция была обнаружена Paneth клеток, а именно их способность обеспечивать поддержку нишу Lgr5+ стволовые клетки через несколько ключевых лигандов как Wnt3, EGF и Dll12.

Когда изолированные ex vivo и культивировали при наличии конкретных факторов роста и компоненты внеклеточного матрикса, весь кишечные крипты порождают долгоживущих и самостоятельного обновления 3D структуры под названием organoids, весьма напоминающие склеп ворсинок Эпителиальный архитектура взрослых тонкой кишки3. Органоид культур, когда создана из всей склепы, позволяют исследования самообновления и дифференцировку стволовых клеток кишечника нишу, хотя без учета вклада ее отдельных компонентов, а именно Lgr5+ и Paneth клетки.

Здесь мы опишем новый подход к assay органоид, который использует способности Paneth и Lgr5+ клетки объединяться и создавать organoids когда совместно культивируемых. Этот подход, здесь называют «органоид воссоздание пробирного» (ОРА), позволяет генетических и биохимических изменений Paneth или Lgr5+ стволовых клеток, после растворения в organoids. Таким образом это позволяет функциональный анализ двух основных компонентов ниши стволовых клеток кишечника.

Введение

Кишечного эпителия является наиболее быстро самостоятельного обновления тканей в организме млекопитающих и, таким образом, был объектом множества исследований, направленных на выявление и функциональной характеристике стволовых клеток взрослых, проживающих в нижней части склепа из Lieberkühn, целевых, экспрессия гена Lgr5 и зависит от канонических Wnt сигналы1. В частности, Lgr5+ стволовые клетки бокам и поддержке специализированных нишевых клетки, то есть Paneth клетки, которые также зависеть Wnt сигнализации для их созревания2. Вместе, эти типы две клетки лежат в основе самообновлению эпителиальной выстилки кишечника и сохранить ежедневно гомеостатических равновесия: Lgr5+ стволовые клетки быстро разделить и порождают прародителем и более специализированных кишечного эпителия клетки; Paneth клетки обеспечивают ниши основных факторов (например, Dll1, Wnt3, EGF) для Lgr5+ стволовые клетки2. Количество кишечных склепы когда покрытием ex vivo в форме организованных и самостоятельного обновления структуры под названием organoids, или «мини кишки», была использована как экспериментальный инструмент для обеспечения понимания процессов, таких как самообновления и дифференциация в нормальных и патологических условиях, включая рак4. Из нескольких тканей, в том числе кишечника, поджелудочной железы, печени и почек, как мышь, так и человеческих пробах4были созданы органоид культур. Метод добычи и факторы роста, занятых в разработке этих культур органоид ткане- и предназначены для привода мульти линии дифференциации и максимально точно имитировать оригинальные ниши стволовых клеток в vivo. Organoids могут иметь потенциальные приложений, включая лечения генетических заболеваний, оценка терапевтической эффективности в рак, анализ лекарственной токсичности или изучению органогенеза в vitro5.

В целом основным ограничением органоид культурах когда создана из образцов тканей является отсутствие клеток специфика. К примеру, кишечные organoids с целом кишечные крипты не позволяют анализ отдельных клеточных компонентов, входили в источнике ткани (например, содержат весь склепы Lgr5+, Paneth, и клетки-предшественники).

Здесь мы опишем новый метод, именуемый ORA, который сочетает в себе преимущества кишечных органоид культур с функционального анализа его самых основных компонентов, а именно стволовых (Lgr5+) и ниши (Paneth) клетки. Это достигается за счет уникальной способности Paneth и Lgr5+ клетки к физически связаны друг с другом совместно инкубировали при породить organoids2,6,10. Мы воспользовались этой функции и предварительно индивидуально типы двух клеток перед предоставлением им для воссоздания organoids. При этом каждый компонент ячейки могут подвергаться любого данного препарата, фактор роста, биохимические ингибитор, генетической модификации или химической обработки до растворения и органоид формирования. Таким образом используя ORA assay позволит определение о том, имеет ли конкретный препарат лечения или генетической модификации специфическое воздействие на стволовые клетки или их двойники нишу.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все процедуры были сделаны согласно местных животных законов и руководящих принципов.

1. Подготовка документов, средства массовой информации культуры и блюда

  1. Автоклав 1 набор кишечника ножницы, ножницы нормальной и щипцами в стерильный контейнер.
  2. Поместите блюдо 96-луночных (плоское дно) в инкубаторе при 37 ° C.
  3. Подготовка 10 мл полной питательной среды с реагентами, перечисленных в таблице материалов.
  4. Инкубируйте полного среднего при 37 ° C на водяной бане.
  5. Оттепель воссоздана базальной мембраны, поместив его в ведро льда. Восстановленный базальной мембраны станет жидким при температуре 4 ° C.
  6. Заполните 4 чашки Петри с холодной фосфат амортизированное saline или сокращенно PBS (4 ° C).

2. изоляция малых кишечные крипты

  1. Пожертвуйте при вдыхании CO2 мыши - eGFP-IRES-CreERt2 Lgr5на фоне C57BL6/J. Рассечь брюшину продольно с ножницами.
  2. Держите живот с щипцами и резать поперек пополам.
  3. Теперь с помощью кишечной ножницы, вытащить кишечника и поместите его в чашку Петри, содержащие PBS.
    Примечание: Кишечные ножницы имеют острым и тупым кончиком. Тупым кончиком эти ножницы предназначен чтобы не повредить склеп ворсинок архитектуры при открытии в кишечнике.
  4. Начните с размещения тупой совет в желудок и осторожно протолкнуть пилоруса. Перейти резки ножницами и потянув с щипцами.
  5. После продольно открыт весь кишечник, стирать в холодной PBS, удерживая его с щипцами и осторожно промойте его в растворе PBS с U-образной движений.
  6. После того, как будут удалены все остатки стул, переходите к придавить кишечника на разделочную доску, просветный стороной вверх. Люминал сторона легко узнаваемы, отсутствие кровеносных сосудов и его бледный вид, по сравнению с внешней части.
  7. С на стеклянное скольжение аккуратно удалите ворсинки соскабливания уплощенных кишечника. Выполните этот шаг два раза по всей длине ткани.
  8. Нарежьте тонкой кишки с стерильные хирургические лезвия 2-5 мм.
  9. Место небольшой кишечных фрагментов в Тюбик 50 мл, содержащие 10 мл холодного льда PBS.
  10. Очистите фрагменты тканей, удаление любых оставшихся примесей, закупорить их вверх и вниз в PBS. Отменить супернатант и повторите этот шаг до тех пор, пока PBS совершенно ясно.
  11. Добавьте 15 мл холодной PBS, довести объем окончательный PBS до 25 мл. Добавить 2 мм Этилендиаминтетрауксусная кислота (ЭДТА) и проинкубируйте 45 мин на ролике на 4 ° C.
  12. Выбросите PBS/ЭДТА.
  13. Добавить 10 мл PBS и отсоедините склепы, жестко закупорить фрагменты тканей вверх и вниз (по крайней мере три раза). Соберите супернатант.
  14. Повторите шаг 2.13 четыре раза. Добавьте питательной среды для достижения окончательный объем 50 мл.
  15. Пелле клетки центрифугированием (300 x g 5 мин).
  16. Ресуспензируйте гранулы в 10 мл питательной среды и Пелле склепы центрифугированием (80 g x 3 мин).

3. одну ячейку подготовка

  1. Отменить супернатант гранулированных склепы и Ресуспензируйте их в 1 мл трипсина как ферменты вместе с 50 мкл DNAse (50 мкг/мл).
  2. Инкубируйте клетки в водяной бане при температуре 32 ° C на 2 мин.
  3. Добавьте 10 мл питательной среды. Отделить склепы в отдельные клетки, жестко закупорить вверх и вниз по крайней мере 5 раз.
  4. Фильтр решение через стрейнер 40 мкм (для устранения кусты и других примесей) и Пелле одной клетки на 300 g x 5 мин.

4. поток цитометрии и обшивка

  1. Подготовка 50 мл 1 x Хэнк буфферезированный раствор соли или HBSS/2% плода корова сыворотки (FCS) раствора и Ресуспензируйте гранулы в 1 мл на каждые 106 клеток
  2. Добавьте в суспензию клеток BV421 Линь(CD31, CD45, TER119) в концентрации 1: 100 и CD24-APC и CD117-PE как в концентрации 1: 250 антител на 30 мин.
  3. Сортировка Lgr5+ стволовых клеток и клеток Paneth в отдельный низкий связывать трубы. Дополнительные сведения о сортировке протоколы для Lgr5+ и Paneth клетки, смотрите рот и др. 7 и Шюи и др. 6
    1. Центрифуги, отсортированных клетки на 300 x g 5 мин Ресуспензируйте клетки в 100 мкл среде с компонентов, описанных в 1.3 (см. Таблицу материалов).
  4. Лечения (например, путем химического или генетические модификации) Paneth клетки (n = 2000) или Lgr5+ стволовые клетки (n = 2000).
    1. Для лечения ячейки, используйте 5 мкл Реагента липосомы опосредованной трансфекции в суммарный объем 100 мкл питательной среды и малые интерферирующие РНК (siRNA) в концентрации 100 Нм. Инкубируйте 30 минут при 37 ° C для малых интерферирующих РНК или время, необходимое для выбранной модификации.
  5. Вымойте клетки дважды в 500 мкл питательной среды.
  6. Центрифуга на 300 g x 5 мин и Ресуспензируйте клетки в 10 мкл питательной среды.
  7. Объединить два клетчатых компонентов (Paneth или Lgr5+ клетки) в 20 мкл общий объем и центрифуги на 300 x g 5 мин на RT.
  8. Совместное инкубировать Paneth и Lgr5+ клетки для 10 мин на RT.
  9. Удаление 10 мкл супернатант и оставить мениске жидкости быть уверенным не аспирационная Пелле ячейки.
  10. 30 мкл восстановленный базальной мембраны клеток для общего объема 40 мкл, Ресуспензируйте клетки и пластины в подогретым 96 пластины хорошо. После 10 минут, добавить 200 мкл полной среды (см. Таблицу материалов). Изменение среднего каждые 48 ч.
  11. Граф органоид кратности на 5 день.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Воссоздание пробирного органоид позволяет отдельный функциональный анализ основных компонентов ниши и стволовых клеток кишечного эпителия, здесь продемонстрировано малые интерферирующие РНК (siRNA) гена Apc .

Для достижения этой цели, мы впервые использовали флуоресцентный активированных клеток, сортируя (FACS), чтобы отделить 8000 Lgr5+ и 6000 Paneth ячейки от инбредных мышей C57BL6/J. На

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

ORA позволяет изысканный функциональный анализ двух основных компонентов ниши стволовых клеток кишечника, а именно: Lgr5+ и Paneth клетки. Этот подход ранее работали с нами и другими с незначительными изменениями6,10,11. Здесь мы представляем ORA процедуры как воспроизводимость и стандартизированных лабораторных протокол. Кроме того, мы доклад о воздействии Даунрегуляция Apc в Lgr5+

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы могут не конкурирующие финансового интереса или другие конфликты интересов

Благодарности

Это исследование стало возможным благодаря финансированию из голландского общества рака (KWF; EMCR 2012-5473) и рак исследований средств мирового (WCRF; проект № 2014-1181)

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Advanced DMEM F12 *Thermo Fisher Scientific12634-010
Глутамакс *Thermo Fisher Scientific35050061Конечная концентрация: 10 мМ
пенициллин/стрептомицин *Thermo Fisher Scientific15140122Конечная концентрация: 1%
Hepes *Thermo Fisher Scientific15630080Конечная концентрация: 10 мМ
Рекомбинантный мышиный EGF *Thermo Fisher ScientificPMG8041Конечная концентрация: 50 нг/мл
Рекомбинантный мышиный Noggin *Peprotech250-38Конечная концентрация: 100 нг/мл
y27632 *SigmaY0503Конечная концентрация: 10 & микро; M
Jagged-1 *Anaspec BioAS-61298Конечная концентрация: 1 & микро; M
Рекомбинантный мышиный R-спондин *R& D systems3474-RS-050Конечная концентрация: 1 мг/мл
Flexitube Раствор гена siRNA APCQiagenGS11789Конечная концентрация: 100 нМ
Липофектамин 2000Thermo Fisher Scientific11668019
CD24 APCBiolegend101814
c-kit PEBiolegend105808
BV 421 CD31Biolegend
BV 421 CD45Biolegend103134
BV421 TER119Biolegend116234
HBSSThermo Fisher Scientific14180046
B6.129P2-Lgr5tm1(cre/ERT2)Cle/JJackson Laboratories008875
пробирки с низким связываниемEppendorfZ666548-250EA
MatrigelCorning356230
* Комбинация этих реагентов представляет собой полноценную питательную среду
102424

Ссылки

  1. Barker, N., et al. Identification of stem cells in small intestine and colon by marker gene Lgr5. Nature. 449, 1003-1007 (2007).
  2. Sato, T., et al. Paneth cells constitute the niche for Lgr5 stem cells in intestinal crypts. Nature. 469, 415-418 (2011).
  3. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459, 262-265 (2009).
  4. Clevers, H. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 165, 1586-1597 (2016).
  5. Cantrell, M. A., Kuo, C. J. Organoid modeling for cancer precision medicine. Genome Med. 7, 32(2015).
  6. Schewe, M., et al. Secreted Phospholipases A2 Are Intestinal Stem Cell Niche Factors with Distinct Roles in Homeostasis, Inflammation, and Cancer. Cell Stem Cell. 19, 38-51 (2016).
  7. Roth, S., et al. Paneth cells in intestinal homeostasis and tissue injury. PLoS One. 7, e38965(2012).
  8. Rodriguez-Colman, M. J., et al. Interplay between metabolic identities in the intestinal crypt supports stem cell function. Nature. 543, 424-427 (2017).
  9. Dow, L. E., et al. Apc Restoration Promotes Cellular Differentiation and Reestablishes Crypt Homeostasis in Colorectal Cancer. Cell. 161, 1539-1552 (2015).
  10. Yilmaz, O. H., et al. mTORC1 in the Paneth cell niche couples intestinal stem-cell function to calorie intake. Nature. 486, 490-495 (2012).
  11. Igarashi, M., Guarente, L. mTORC1 and SIRT1 Cooperate to Foster Expansion of Gut Adult Stem Cells during Calorie Restriction. Cell. , 436-450 (2016).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Lgr5Wnt