Методическая статья

Эндотрахеальной интубации кроликов с использованием полипропиленовых руководство катетер

DOI:

10.3791/56369

⸱

13 ноября 2017 г.

 ,  , 
1Department of Comparative Medicine, Mayo Clinic

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эндотрахеальной интубации в кроликов является сложной задачей из-за их необычные анатомии. Здесь мы представляем технику для прямого интубации трахеи, используя полипропиленовый катетер в качестве руководства. Этот метод использует сравнительно недорогих материалов, требует минимального обучения и могут быть легко выполнены в любых клинических условиях.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эндотрахеальной интубации в кроликов может быть сложным из-за их необычные анатомии. Достижение патент дыхательных путей во время анестезии имеет решающее значение для избегания обструкции, предупреждения, вздутие желудка и позволить вентиляторной поддержки. Из-за сложности интубации были изучены альтернативные методы, такие как использование Ларингеальные маски airways или гортани трубы. Однако эти методы не приводят к прямой доступ к трахеи и поэтому может представлять риск для развития осложнений. Кроме того отсутствие прямого интубации трахеи может привести к облучения персонала для анестезии газов. Были описаны различные методы эндотрахеальной интубации, включая слепых размещение, использование волоконно-оптические Ларингоскоп или эндоскопов и перстневидного размещения. Несмотря на эти многочисленные публикации многие по-прежнему бороться, чтобы добиться успеха. Здесь мы предоставляем подробное описание техники интубации, который может преподаваться с минимальной подготовки с короткое время знание. Вкратце после отправления инъекционный наркоз и правильного позиционирования кролика, полипропиленовые катетер помещается в трахею прямой визуализации с помощью Ларингоскоп. Катетер затем используется как руководство для прямой эндотрахеальную трубку в трахею. Этот метод позволяет для интубации без необходимости дорогостоящего оборудования и могут быть выполнены одним человеком без необходимости для помощника. В заключение, этот метод можно легко научил и выполнены на очень низкой цене в любой клинической или исследовательских параметр.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Кролики имеют узкие, глубокие устные полости, что ограничивает видимость гортани для эндотрахеальной интубации. Они также имеют очень большие мясистые язык и щеки зубов, в сочетании с узкой ротовой полости, может привести к проблемам при вставке ларингоскоп и визуализации глотки для вставки эндотрахеальной трубки1. Необходимо осторожность во избежание причинения травмы полости рта и дыхательных путей, при попытке интубации. Гортани ткани очень рыхлая и чрезмерное травмы от повторных попыток интубации может вызвать значительное воспаление, делая интубации сложнее2.

По этим причинам были описаны различные альтернативные методы, прежде всего устройства надъязычные дыхательных путей, включая гортани трубку3,4, Ларингеальные маски дыхательных путей (LMA)4,5, 6 и сократимость устройство вегетационных надъязычные7. Гортани трубка состоит из трубки с двумя шарами, которые направляют поток воздуха в трахею: больше шар в середине трубы образует слой в верхней глотки и меньший шар на дистальном конце уплотнения пищевода входе3. Лам состоит из трубки с эллиптической маски на дистальном конце который надувается сформировать герметичное уплотнение над глотки4,5,6. Вегетационных устройство является первым устройством сократимость ветеринарных вегетационных надъязычные, в настоящее время доступна для кошек и кроликов, разработанный, чтобы соответствовать анатомических структур для каждого вида для создания давления seal в глотки7. Однако потому что эти устройства не ввести непосредственно трахеи, они могут представить риск осложнений, таких как вздутие желудка. Отсутствие надлежащего уплотнения внутри трахеи представляет озабоченность по поводу адекватности для использования этих устройств для вентиляции с положительным давлением для респираторной поддержки, чрезвычайных ситуаций или торакальной хирургии3,8. Кроме того отсутствие прямого интубации трахеи может привести к подверженности персонала отходов анестезии газов5.

Многие методы для прямого эндотрахеальной интубации были описаны9,10,11,12,13,14,15. Одним из популярных методов является слепой метод, который может уменьшить вероятность травмы полости ротоглотки, так как вставки Ларингоскоп не необходимые16,,1718,19 , 20. как визуально слепой метод, этот метод требует мониторинга для потока воздуха через эндотрахеальную трубку и тщательного манипуляции для размещения руководство. Хотя этот метод широко используется в области исследований и клинической ветеринарной практике, в опыте авторов, этот метод может быть много времени и не всегда успешно и таким образом более трудно учить и может потребовать дополнительной дозирование анестетиков 9 , 10. Кроме того, поскольку мониторинг для дыхания используется для правильного размещения трубки, этот метод будет более сложным и менее надежными во время дыхания. Другой популярный метод заключается в использовании традиционных Ларингоскоп технику для интубации, как это делается с более крупных видов. Однако традиционные Ларингоскоп технику в кроликов трудно, в том, что по мнению голосовых связок затруднено при эндотрахеальной трубки вставляется в рот. Таким образом использование этого метода может привести к интубации неоднократные попытки, увеличение дозировки обезболивающий и травмы в устной полости и сократимость10.

Существуют также более дорогой и технически сложных вариантов для интубации. Волоконно-оптические Ларингоскоп позволяет легко вставки эндотрахеальной трубки, вставив Ларингоскоп в трубку и визуализации вставки в трахею на экране. Аналогичным образом Эндоскопы может использоваться для визуализации области гортани и направлять размещение трубки. Однако оба этих метода требуют использования дорогостоящего оборудования, которое не может быть легко доступны в типичных клинических параметров9,,1112. Интубация через полость носа является альтернативный метод, который был описан, хотя это представляет риск введения оппортунистических патогенов из носовой полости в легких, особенно у кроликов, которые не являются конкретной возбудитель бесплатно21. И наконец более инвазивные методы интубации также были опубликованы, включая Ретроградная вставки руководство катетера через иглу помещают чрескожно в трахею, а также использование cricothyroidotomy иглы, следуют размещение руководство проволоки, расширитель сосуда и оболочка интродьюсер13,14. Как инвазивные методы эти методы имеют потенциальные осложнения, такие как боль после процедуры и инфекция. Методики, которую мы опишем здесь, с помощью ларингоскоп и руководство катетер, может преподаваться с минимальной подготовки с короткое время знание, является неинвазивным, могут быть выполнены одним человеком без необходимости для помощника и не требует использования специализированное оборудование.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Процедура интубации, изложенные ниже был одобрен Mayo Клинике институциональных животное уход и использование Комитетом.

1. подготовка ( Рисунок 1)

  1. получить 5 французский полипропиленовые катетера и сократить-округлые конца, поэтому общая длина составляет 8-10 дюймов. Марк вырезать конец трубки четко указать, какой конец должен не быть вставлен в трахею (стрелка, рис. 1).
  2. Размер 0 или 1 Миллер Ларингоскоп лезвие на ларингоскоп и убедитесь, что свет функционирует.
  3. Рисовать в шприц 1 мл 0,25 мл 2% лидокаин.
  4. Применять стерильной смазки в конец соответствующего размера uncuffed эндотрахеальной трубки (обычно 2,5-4,0 мм ID).
  5. Подготовить материалы для обеспечения эндотрахеальной трубки в месте, как только он вставлен (например, пупочной лента).
  6. Получить устройство для обнаружения потока воздуха в конце процедуры для подтверждения успешного интубации (#5, рис. 1). Это необязательный.

2. Анестезия

  1. Администрирование инъекционного наркоза, такие как кетамин и 5 мг/кг Ксилазина 35 мг/кг внутримышечно с помощью 3 мл шприца с иглой 25 датчиков на четырехглавой мышцы задние ноги примерно 4 месяца, 3,0-3,5 кг, Новая Зеландия Белый Кролик.
    Примечание: Этот режим цистит является сочетание часто используемых инъекционные в молодых, здоровых, конкретных исследований, возбудитель бесплатно кроликов, но на основе клинического состояния и/или экспериментальных целей, другой протокол может быть более подходящим.
  2. После того, как кролик наркоз, применить Стерильные глазные смазки для глаз для сохранения ткани роговицы.

3. Эндотрахеальной интубации

  1. меру эндотрахеальную трубку от резцов для грудной входе для определения надлежащей длины для вставки эндотрахеальной трубки. Размещение конца трубки на уровне грудной входе заверяет, что трубки открытие мимо но краниально к бифуркации трахеи гортани.
  2. Позиция кролика sternally на подготовке таблицы с ее головы, слегка расширены через край стола ( рис. 2). Кролик должен располагаться площадь с головы и позвоночника в прямой увязке.
  3. Подняв голову, использовать марлевый тампон, чтобы вытащить кролика ' s язык сбоку кролика ' s правом нижнем резцов (в диастема), заботясь, чтобы избежать травмы от резцов.
  4. Понять ларингоскоп и лезвие с правой стороны и поместите его в рот позади резцов, поступающих из кролика ' s слева.
  5. Следовать крыши рот с кончика лопасти хвостового направлении до тех пор, пока мягкого неба видны.
  6. С правой рукой, Совет Ларингоскоп вперед (изгиб запястья, держа Ларингоскоп вниз) при расширении кролика ' s голову назад и шеи вперед для поддержания открытых дыхательных путей и просмотра гортани ( рис. 3 A). как облигатными носовые breathers, надгортанник часто выше мягкого неба, и использование этого метода сжимает базу язык, чтобы вытеснить надгортанник и разоблачить глотки. Чтобы предотвратить десатурации кислорода, важно держать на шее, как описано для поддержания открытых дыхательных путей при интубации.
  7. Освободить язык и переключитесь левой рукой к свободный вверх правую руку для размещения катетера Руководство лезвие Ларингоскоп.
  8. Во время проведения ларингоскоп и поддержании зрения глотки ( рис. 3 B), заранее округлые кончик катетера руководство путем открытия мимо гортани ( Рисунок 4 ). Катетер придет к естественным остановки на бифуркации трахеи.
  9. При сохранении держать руководство катетера, понять эндотрахеальную трубку и поток через катетер, стараясь не применять силу к катетер, ловить его на разъеме эндотрахеальной трубки. Продвигать трубку до тех пор, пока существует сопротивление от голосовых связок ( рис. 5).
  10. Внушить 0,25 мл 2% лидокаин в открытии эндотрахеальной трубки. Лидокаина будет путешествовать вниз эндотрахеальной трубки для локально анестезировать голосовых связок, предотвращая ларингоспазм 22 ( рис. 6).
  11. Позволяют примерно две минуты для местной анестезией вступили в силу, и приступить, осторожно поворачивая эндотрахеальную трубку, продвигая его через голосовые связки ( рис. 7). После того, как трубка прошло голосовые связки, удалите Ларингоскоп лезвие и катетер, стараясь не выбить трубку.
  12. Проверить размещение эндотрахеальной трубки, наблюдая воздуха. Существует несколько способов для выполнения этого, включая размещение меха в конце трубки для обнаружения потока воздуха, ищет туманообразования трубки или запотевание стекла/зеркал в конце трубки и прослушивания для подачи воздуха или ткани. Устройства, предназначенные для обнаружения потока воздуха 23 или дыхание также могут быть используется для определения, был ли интубация успешно (см Таблицу материалы для вариантов) ( рис. 8). Закрепите эндотрахеальную трубку, с использованием предпочтительного метода, например пупочной ленты, связали вокруг трубки и головы. Приложите цепи анестезии и auscult обе стороны грудной клетки давая вдохов для обеспечения вентиляции по обе стороны легких.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В заведении авторов этот метод обычно преподается в лаборатории и ветеринарного персонала во время учебных занятий на кролика обработки и методы анестезии. Учебные занятия проводятся с учебного животных. Тренер демонстрирует технику один раз и затем слушателям выполнить технику под руководством тренера. Стажерам обычно добиться успеха в течение 1-3 попыток. После того, как они успешно интубированных Кролик один раз, люди являются обязательными для выполнения интубации во второй раз и обычно способны успешно интубировать кролика снова на первой дополнительной попытки. Обратной связи в ходе этих учебных сессиях, особенно от лиц, которые ранее прошли с альтернативными методами, последовательно включает в себя комментарии о как легко учиться и успешно завершить эту технику.

Инструменты для обеспечения проходимости дыхательных путей для интубации, включая ларингоскоп, шприц, проводник, эндотрахеальную трубку.
Рисунок 1. Поставляет для эндотрахеальной интубации: 1) Ларингоскоп с размером 0 или 1 Миллер Ларингоскоп лезвия, 2) пупочной ленты (или другие предметы снабжения для обеспечения эндотрахеальной трубки), 3) 0,25 мл 2% лидокаин, 4) 5-французский полипропиленовые катетер вырезать до 8-10 дюймов с округлые конец отмеченные перманентный маркер, чтобы четко указать, какой конец не должны быть включены в трахею (стрелка), 5) устройства для обнаружения потока воздуха, 6) стерильной смазки, чтобы применяться к дистального конца трубки, 7) uncuffed эндотрахеальной трубки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Препарат для анестезии кроликов с противогазом; ветеринарная процедура; клиническая установка и оборудование.
Рисунок 2 : Грудная позиционирования для эндотрахеальной интубации. Кролик sternally позиционируется с передних конечностей, продлен до конца таблицы. Задние конечности распространяются обратно, и голова кролика выравнивается с позвоночника. Левая рука используется для поднять голову в расширение в рамках подготовки для вставки Ларингоскоп. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Процесс анестезии и интубации кроликов; Ветеринарная процедура с настройкой медицинских инструментов.
Рисунок 3 : Вставки Ларингоскоп. A) Ларингоскоп вставляется в левой диастема, используя правую руку, после крыши рот с кончика лезвия до мягкого неба видны. После мягкого неба является видимым, ларингоскоп отклоняется вперед при расширении голову назад и вперед шеи кролика визуализировать гортани. B) визуализация гортани. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Осмотр полости рта кролика, ветеринарная процедура, использование стоматологического зеркала, осмотр крупным планом.
Рисунок 4 : Улучшение руководства катетера. A) после переключения Ларингоскоп лезвие левой рукой, правой рукой авансы округлые оконечности руководство катетер через отверстие мимо гортани. B) руководство катетер проходит через голосовые связки с прямой визуализации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Процедура интубации кроликов; ветеринарное оформление; индукция анестезии; уход за лабораторными животными.
Рисунок 5 : Улучшению трахеи трубку. Эндотрахеальные трубки резьбой через катетер руководство и развита до тех пор, пока существует сопротивление от голосовых связок. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Процедура перорального дозирования у животных, кролик, шприц, лабораторный эксперимент, ветеринария, организация клинических исследований.
Рисунок 6 : лидокаина инстилляции. Лидокаина (2%, 0,25 мл) привили в отверстие эндотрахеальной трубки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Оральный осмотр кролика; ветеринарная процедура; проверка здоровья животных; Клинические условия.
Рисунок 7 : Улучшению эндотрахеальную трубку. Две минуты после инстилляции лидокаина, эндотрахеальной трубки продвигается, осторожно поворачивая его пройти через голосовые связки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Процедура тестирования на животных; лабораторные анализы; исследовательская этика; Техника работы с образцами.
Рисунок 8 : Проверка потока воздуха через эндотрахеальную трубку. Устройство обнаружения воздуха может использоваться для проверки потока воздуха через эндотрахеальную трубку, или стоматологические зеркала может также использоваться для выявления конденсации из вдохов, указывающий успешное интубации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Здесь мы предоставляем подробное описание Кролик интубации технику, которая может быть легко освоен в любых клинических условиях. Этот метод похож на ранее опубликованные прямой визуализации техники10,15,20,25 с некоторых дополнительных улучшений, включая использование эндотрахеальной трубки 3,5 мм uncuffed и 5 французский мочевой катетер, как наши выбрали руководства, которые вырезать и отмеченные перманентный маркер в конце разреза. Кролик трахеи легко подвержены травмам и таким образом uncuffed эндотрахеальные трубки обычно рекомендуется использовать при интубирование кроликов для предотвращения повреждения слизистой оболочки трахеи от давления манжеты. 26 5 французский мочевой катетер мы выбрали как руководство является достаточно небольшим, чтобы легко пройти через Голосовые складки не препятствует мнению во время прямой визуализации гортани. Хотя и невелик этот катетер является достаточно жесткой, чтобы оставаться на месте, как руководство для эндотрахеальной трубки. Чтобы помочь уменьшить травму при достижении бифуркации округляется дистального наконечника катетера. Проксимальный конец катетера разрезается таким образом, чтобы катетер на реальные длины (не слишком долго) и удалить конец, который расширяет для вложения в шприц. Вырезать конце помечен как визуальный индикатор не вставить этот конец в трахею, которая может привести к повреждению слизистой оболочки трахеи с постоянным маркером.

Основным ограничением этой методики является, что, потому что он требует использования Ларингоскоп лезвие, не возможно для очень молодых кроликов или очень маленьких пород из-за меньшего размера рот. Кроме того некоторые объекты могут не иметь такого размера Ларингоскоп лезвие легко доступны. В заведении автора этот метод используется для Новой Зеландии белый (≥6 недель) и взрослых кроликов, голландский опоясанный, но мы не пытались этот метод в молодых животных или мелких пород. В ситуациях, где маленький кролик пациента, или если Ларингоскоп с лезвием небольшой Миллер недоступен, альтернативным вариантом является использование портативных отоскоп, вместо того, чтобы Ларингоскоп. 15 , 20 с помощью отоскоп с зеркало #5 уха, визуализируется гортани, руководство катетер находится прямой визуализации и зеркало удаляется перед после те же шаги, описанные выше.

Важно использовать большую осторожность, когда руководство катетер помещается во избежание нанесения травмы или бронхоспазма, как к концу катетера проходит в трахею и затрагивает бифуркации трахеи. Риск развития этих осложнений можно уменьшить или избежать кормления катетер с очень мягкими движениями, останавливается, как только есть сопротивление, и избегая движения головы и шеи, когда катетер на месте. Кроме того при продвижении эндотрахеальную трубку через катетер, существует потенциал для катетер поймать на разъеме эндотрахеальной трубки. Таким образом важно, чтобы убедиться, что катетер слайды через разъем без перехвата; Кроме того, соединитель могут быть удалены и заменены при обеспечении эндотрахеальной трубки или прикрепление к анестезии цепи.

С любым методом интубации существует потенциал для осложнения и побочные эффекты. С помощью метода прямой визуализации с ларингоскопа, неправильной вставки Ларингоскоп лезвия или агрессивным размещение эндотрахеальной трубки может привести в гортани, язык, или зуб травмы. Правильное позиционирование животного является первым важным шагом к минимуму травмы во время визуализации гортани. Позвоночник должна быть прямой, с головой в прямой увязке с позвоночника; Если животное не является прямой, или если шея закручивается вправо или влево, это затруднит визуализации гортани и может привести к чрезмерным травмы с лезвием Ларингоскоп. Другой критический ключом к успеху при использовании этой методики является следовать за крышу полости рта к гортани, и после мягкого неба визуализируется, сдвигать лезвие в надлежащее положение, сгибая на запястье. Это держит голову на месте, при перемещении кончик лезвия в положение оптимального просмотра голосовых связок, которые расположены довольно вентральной кролик20,24.

Поскольку прямая визуализация гортани может быть сложно, если не соблюдаются точные методы, которые мы наметим выше, использование альтернативных интубации стратегий, которые не требуют визуализации гортани может быть привлекательным. Например метод слепой является одним возможным вариантом, который не требует использования Ларингоскоп16,,1718,19,20. Однако использование этой техники опирается на способность обнаруживать потока воздуха через эндотрахеальную трубку с целью прямого размещения трубки, и если животное дышит очень неглубоко или арестованных, использование этого метода не является надежным. Надъязычные устройства могут также рассматриваться, поскольку размещение этих устройств не требуется визуализация гортани, и они, как правило, очень легко поставить. Эти устройства не ввести непосредственно трахеи, однако и таким образом существует потенциал из-за отсутствия прямого потока сократимость, невозможности проветрить если развивается ларингоспазм, отсутствие печати достаточно жесткой для вентиляции во время открытой груди процедуры или чрезвычайной ситуации реанимации и развитие желудка вздутие3,4,8. Новые устройства, специально предназначенные для кроликов может предложить перспективные альтернативу, но необходимы дополнительные исследования для оценки этих устройств, и по-прежнему остаются опасения относительно отсутствия вступления в трахею. Желудка вздутие также могут быть потенциальные осложнения в интубированных животного, если эндотрахеальной трубки случайно помещены в пищевод; Однако использование прямой визуализации техники минимизирует риск этого осложнения, проверяя правильное размещение руководство катетера в гортань.

Травма слизистой оболочки трахеи или arytenoid является еще одной потенциальной проблемой при вставке эндотрахеальную трубку, особенно при использовании надувной манжетой трубы26,27,28. Трахеи у кроликов может быть легко ранены, которая может привести к осложнениям, например подкожной эмфиземы легких, пневмоторакс и даже смерть10,27,,2829. При выполнении технику, которую мы опишем здесь, ухода должны быть приняты для предотвращения повреждений трахеи использования uncuffed эндотрахеальных трубок, гарантируя округлые кончик катетера руководство вставляется в трахею и не заставляя руководство катетер в глотки. Кроме того выбор подходящего размера эндотрахеальной трубки имеет решающее значение. Размер эндотрахеальной трубки следует рассматривать с размером животного, а также по сравнению с открытия гортани впускного, так как он меньше в диаметре трахеи. Эндотрахеальную трубку слишком большой диаметр может привести к травме arytenoid слизистую оболочку или хряща. С другой стороны использование меньших эндотрахеальной трубки приводит к увеличению сократимость сопротивления и увеличивает шансы препятствие из-за слизи или излом. По этой причине мониторинг дыхания является очень важным в интубированных кроликов. В дополнение к пульсоксиметрии измерение расхода воздуха должно быть monitored с capnography; Если Капнограф недоступен, сократимость мониторы являются альтернативой, которая может использоваться для обнаружения потока воздуха (но не обеспечивают измерения выдыхаемого диоксида углерода). Кроме того предоставление вспомогательной вентиляции легких может быть ценным, особенно в тех случаях, когда меньший диаметр трубы используются в24,30.

Помимо уже упомянутых преимуществ использования этого метода другим основным преимуществом этого метода является, что она может быть выполнена одним человеком без необходимости для помощника, который может быть важным в занят клинических условиях. В этой ситуации важно собрать все необходимые материалы и их легко добраться во время процесса интубации, особенно когда руководство катетер на месте и следует избегать движения головы.

Техника, которую мы опишем здесь используется ветеринарной и научных сотрудников в нашем заведении для всех кролик интубации, который составляет около 200-400 интубации в год. Это очень легко преподавал в типичный кролик анестезии тренировки, который занимает приблизительно 30 минут. Мы нашли, что это сравнительно легко учиться, с студентов, которые изучают его в течение первых 3 попытки и общем состоянии повторить процесс успешно в следующую дополнительную попытку. Для будущего изучения было бы полезно сравнить время знание и способность поддерживать знания со временем для этого метода по сравнению с другими методами интубации. Хотя это была изучена для вариаций слепые методы16, всеобъемлющую оценку кривой обучения для широкого спектра техники интубации еще не выполнена. Другим потенциальным будущее направление исследования могут включать сравнение прямой эндотрахеальной интубации для более новых приборов вегетационных надъязычные дыхательных путей, особенно о функции во время вентиляции с положительным давлением.

В заключение техника для интубации кроликов, которую мы опишем здесь неинвазивная, надежный, не требует использования специального оборудования, легко освоить и могут быть выполнены одним человеком без необходимости для помощника. Все методы доступа сократимость представляют определенный уровень риска, но методом прямой визуализации и следуя шаги, которые мы описали выше, чтобы свести к минимуму осложнения, риски далеко перевешивают преимущества наличия адекватного дыхательных путей во время анестезии.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы хотели бы отметить тех сотрудников и научных кадров, которые участвовали в кролика обработки и анестезии учебных сессий для их обратной связи во время обучения этой техники интубации.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Кеталар<бр/> кетамин гидрохлоридный инъект.JHP PharmaceuticalsNDC 42023-113-1035 мг/кг в/м в эпаксиальные мышцы или четырехглавую мышцу (предпочтительно)
Anased
Ксилазин (100 мг/мл)		Lloyd LabsNADA #139-2365 мг/кг в/м в эпаксиальных мышцах или четырехглавой мышце (предпочтительно)
Ручка ларингоскопа Welch AllynWelch Allyn60300Требуется 2 щелочные батарейки размера
C размера 0 или 1 лезвие ларингоскопа Miller WelchAllyn68040
2,5 – 4,0 мм ID Эндотрахеальная трубка без манжетыJorgensonJ0149VПодходит для кроликов весом 2,5-5 кг
3,5 мм Наиболее часто используемый
полипропиленовый катетер Sovereign, 5 Fr x 22"Medtronic8890703310Разрежьте до 8-10 дюймов< бр/> Отметьте конец разреза перманентным маркером, чтобы указать, с какого конца не следует вставлять
Lidocaine 2% HCL InjVetOneL-2000-04
4-слойный нестерильный, упакованный навалом Versalon Sponges (марлевые салфетки)CovidienKC9024A
лента, саржа, отбеленная ½ ” x 72 ярдаEncompass Textiles48210-025Используется для крепления эндотрахеальной трубки
HR Lubricating JellyHR Pharmaceuticals201Для смазки наконечника эндотрахеальной трубки
Great Plains Ballistics: BAAM (Beck Airway Airflow Monitor) 22BoundTree Medical21410Для подтверждения успешной интубации
Ambu Pediatric Co2 DetectorAMBU INC172713Для подтверждения успешной интубации

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Quesenberry, K. E., Carpenter, J. W. Ferrets, rabbits, and rodents : clinical medicine and surgery. 3rd edn . , Elsevier/Saunders. (2012).
  2. Dugdale, A. Veterinary Anaesthesia: Principles to Practice. , Wiley-Blackwell. (2010).
  3. Yamamoto, Y., Inoue, S., Abe, R., Kawaguchi, M., Furuya, H. Airway management with the laryngeal tube in rabbits. Lab animal. 36 (5), 33-35 (2007).
  4. Belena, J. M., et al. Laryngeal mask, laryngeal tube, and Frova introducer in simulated difficult airway. J Emerg Med. 48 (2), 254-259 (2015).
  5. Smith, J. C., et al. Endotracheal tubes versus laryngeal mask airways in rabbit inhalation anesthesia: ease of use and waste gas emissions. Contemp Top Lab Anim Sci. 43 (4), 22-25 (2004).
  6. Kazakos, G. M., et al. Use of the laryngeal mask airway in rabbits: placement and efficacy. Lab Anim (NY). 36 (4), 29-34 (2007).
  7. Crotaz, I. R. Initial feasibility investigation of the v-gel airway: an anatomically designed supraglottic airway device for use in companion animal veterinary anaesthesia. Vet Anaesth Analg. 37 (6), 579-580 (2010).
  8. Bateman, L., Ludders, J. W., Gleed, R. D., Erb, H. N. Comparison between facemask and laryngeal mask airway in rabbits during isoflurane anesthesia. Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 32 (5), 280-288 (2005).
  9. Johnson, D. H. Endoscopic intubation of exotic companion mammals. The veterinary clinics of North America. Exotic animal practice. 13 (2), 273-289 (2010).
  10. Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A., Lumb, W. V. Lumb & Jones' veterinary anesthesia and analgesia. 4th edn. , Blackwell Pub. (2007).
  11. Worthley, S. G., et al. Rapid oral endotracheal intubation with a fibre-optic scope in rabbits: a simple and reliable technique. Laboratory Animals. 34 (2), 199-201 (2000).
  12. Miranda, A., Pego, J. M., Correia-Pinto, J. Animal facility videoendoscopic intubation station: tips and tricks from mice to rabbits. Laboratory animals. , (2016).
  13. Irazuzta, J., Hopkins, J., Gunnoe, P., Brittain, E. Simple method of multipurpose airway access through percutaneous tracheostomy in rabbits (Oryctolagus cuniculus). Lab Anim Sci. 47 (4), 411-413 (1997).
  14. Bertolet, R. D., Hughes, H. C. Endotracheal intubation: an easy way to establish a patent airway in rabbits. Lab Anim Sci. 30 (2), Pt 1 227-230 (1980).
  15. Gilroy, B. A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents. J Am Vet Med Assoc. 179 (11), 1295(1981).
  16. Morgan, T. J., Glowaski, M. M. Teaching a new method of rabbit intubation. J Am Assoc Lab Anim Sci. 46 (3), 32-36 (2007).
  17. Inglis, S., Strunk, A. Rabbit anesthesia. Lab Anim (NY). 38 (3), 84-85 (2009).
  18. Falcao, S. C., Pereira Junior, J. R., Coelho, A. R. Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization. Acta Cir Bras. 26 (5), 352-356 (2011).
  19. Su, H. P., et al. A miniature lighted stylet for fast oral endotracheal intubation in rabbits. Vet J. 195 (2), 254-256 (2013).
  20. Weinstein, C. H., Fujimoto, J. L., Wishner, R. E., Newton, P. O. Anesthesia of six-week-old New Zealand White rabbits for thoracotomy. Contemp Top Lab Anim Sci. 39 (3), 19-22 (2000).
  21. Stephens DeValle, J. M. Successful Management of Rabbit Anesthesia Through the Use of Nasotracheal Intubation. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 48, 166-170 (2009).
  22. A Guidance on the Use of Topical Anesthetics for Naso/Oropharyngeal and Laryngotracheal Procedures. , U.S. Department of Veterans Affairs. (2006).
  23. Cook, R. T., Stene, J. K., Marcolina, B. Use of a Beck Airway Airflow Monitor and controllable-tip endotracheal tube in two cases of nonlaryngoscopic oral intubation. Am J Emerg Med. 13 (2), 180-183 (1995).
  24. Fish, R. E., Brown, M. J., Danneman, P. J., Karas, A. Z. Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. , Elsevier. (2008).
  25. Gografe, S. I., et al. Successful management of long-term general anesthesia in rabbits used as an animal model of human disease. Contemp Top Lab Anim Sci. 42 (2), 16-19 (2003).
  26. Nordin, U. The trachea and cuff-induced tracheal injury. An experimental study on causative factors and prevention. Acta Otolaryngol Suppl. 345, 1-71 (1977).
  27. Phaneuf, L. R., Barker, S., Groleau, M. A., Turner, P. V. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits. J Am Assoc Lab Anim Sci. 45 (6), 67-72 (2006).
  28. Grint, N. J., Sayers, I. R., Cecchi, R., Harley, R., Day, M. J. Postanaesthetic tracheal strictures in three rabbits. Lab Anim. 40 (3), 301-308 (2006).
  29. Squire, R., Siddiqui, S. Q., DiNunizio, G., Brodsky, L. Quantitative study of the tracheotomy and endotracheal intubation on the rabbit tracheobronchial tree. Ann Otol Rhinol. , (1990).
  30. Kumar, R. A., Boyer, M. I., Bowen, C. V. A reliable method of anesthesia for extensive surgery in small rabbits. Lab Anim Sci. 43 (3), 265-266 (1993).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи