Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Эффективным в Vitro транспонирования метод транскрипционно регулируемых Спящая красоты системой упакованы в дефектных лентивирусные вектор интеграции

8.2K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/56742

⸱

12 января 2018 г.

 ,  , 
1Centre for Regenerative Medicine, Department of Life Sciences, University of Modena and Reggio Emilia

В этой статье

Краткое содержание

Этот протокол описывает метод для достижения стабильной интеграции гена интереса в геноме человека транскрипционно регулируемой системой Спящая красавица . Как сообщается, подготовка интеграции дефектных лентивирусные векторы, трансдукция в пробирке клеток человека и молекулярного анализа на transduced клетки.

Аннотация

Спящая красавица (SB) transposon система-вирусных интеграции с доказанной эффективностью для переноса генов и функциональной геномики. Для оптимизации механизма transposon SB, заняты транскрипционно регулируемых гиперактивный Транспозаза (SB100X) и на основе T2 transposon. Как правило Транспозаза и transposon плазмиды transfection временно предоставляются и SB100X выражение определяется учредительными промоутер. Здесь мы описываем эффективный метод для доставки компонентов SB для клеток человека, которые устойчивы к несколько методов трансфекции физические и химические, контролировать выражение SB100X и стабильно интегрировать ген интереса (ГОИ) через «вырезать и вставить» SB механизма. Выражение гиперактивный Транспозаза жестко контролируется системой тет-ON, широко используется для управления экспрессии генов с 1992 года. Гена интереса в окружении Перевернутый повторяется (IR) T2 transposon. Оба компонента SB упакованы в интеграции дефектных лентивирусные векторы временно производится в HEK293T клетках. Клетки человека, линии клетки или клетки первичной из тканей человека, находятся в vitro временно преобразованы с вирусных векторов. После добавления доксициклин (dox, тетрациклин аналоговый) в питательной среды доработки Транспозаза выражение измеряется и приводит длинный длительный интеграции гена интереса в геноме клеток лечение. Этот метод является эффективным и применимым к клеточной линии (например, клетки HeLa) и главные ячейки (например, человека первичной кератиноцитов) и таким образом представляет собой ценный инструмент для генной инженерии и передача терапевтических генов.

Введение

Гиперактивный SB100X Транспозаза, в сочетании с transposon на основе T2 уже используется в доклинических гена терапии приложения1,2,3, геном модификации4,5, и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (iPSC) перепрограммирования6,7. Как правило компоненты SB временно предоставляемые плазмида transfection и сильный промоутер учредительный диски выражение Транспозаза. Однако несмотря на улучшение новых методов трансфекции, поставка системы 2 компонентных остается проблемой для многих приложений. Таким образом разработка нового протокола доставки имеет растущий интерес. Помимо методов трансфекции для плазмида8 и мРНК9, вирусный доставки на основе аденовирусных10,11аденоассоциированный вирусный (AAV)12, бакуловирусы13, gammaretroviral14 и в прошлом был предложен лентивирусные векторы15 . В частности системы выбора должны гарантировать переходных доставки компонентов SB без интеграции вирусный вектор. Тем не менее учредительный выражение Транспозаза поднимает проблемы безопасности ввиду опасности неконтролируемого rehopping transposon.

Таким образом регуляцию SB100X системой изысканный тет-ON является первой задачей. Клонированные изменение тет отзывчивым промоутер, полученные путем замены оригинального промоутер развитых минимальной цитомегаловирусом (CMV) с минимальными промоутер (-81) гена Timidine киназы (ТЗ) вирус простого герпеса-1 (ВПГ-1)16, вверх по течению КДНК SB100X (pTetOTKSB100X). Мутировавшие реверс тетрациклин transactivator rtTA2s-17 м2 выражается под контролем сильного учредительный промоутер (phosphoglycerate промоутер, ПГК) клонирован в различных плазмида (НКПС PGKrtTA2S-м2). При добавлении к питательной среды, dox связывает rtTA2s-модулятор м2 и тросов тет промоутер сложных или, полученный в жестко регулируемых индукции SB100X выражение18.

Вторая основная задача возникает от неэффективных transfection клетки человека первичной несколько физических и химических методов. Для эффективной доставки Транспозаза в клетках человека устойчив к трансфекции, SB100X и rtTA2s-м2 выражение кассеты упаковываются в два интеграции дефектных лентивирусные векторы (IDLVs)19: IDLVTKSB и IDLVrtTA2s- М2. Вирусных векторов временно производятся как третьего поколения векторов в HEK293T клетки20 и pseudotyped с гликопротеина G вируса Vescicular стоматит (VSV-G), который предоставляет широкий спектр инфекции. Вектор частицы сосредоточены на ultracentrifugation и титруют immunocapture p24 Gag ВИЧ-1. Передавать линии клетки и клетки первичной, вектор частицы complexed с Полибрен и инкубируют с клеток-мишеней в наличие или отсутствие dox. Снадобь зависимо активации выражения SB100X в transduced клетках измеряется количественного RT-PCR (qRT ПЦР)18.

После того, как продемонстрировал тет регулируется SB100X выражение, транспонирования ГОИ (например, Зеленый флуоресцирующий белок, GFP) в целевой ячейке геном следующим молекулярные события, четко схематизируются бак и Миккельсен21. Третий IDLV вектор, перевозящих что выражение кассету для ГОИ, клонированные между IRs T2-transposon (IDLVT2) должен быть построен и упакованы как упомянуто выше. Наконец три IDLV векторов может использоваться эффективно передают клетки человека (например, первичной кератиноцитов) в пробирке и интегрировать ГОИ присутствии доксициклин18.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. плазмид занятых

Примечание: Плазмида НКПС PGKrtTA2S-м2 был любезно предоставляемый профессор Zappavigna (Университет Модены и Реджо-Эмилии, Модена, Италия). PCMVSB100X плазмиды, перевозящих кодирующая последовательность гиперактивный Транспозаза и transposon плазмиды pT2/BH были любезно предоставленных профессор з. Ivics (Институт Пауля Эрлиха, Ланген, Германия) и профессор з. Izvak (центр Макса Дельбрюка молекулярной медицины, Берлин, Германия).

  1. Для всех форм клонирования в Escherichia Coli (E. coli), следуйте клонирования стратегия выбора и энзима ограничения процедуры или амплификации PCR фрагмента клонируемую.
    Примечание: В таблице 1 приведены все плазмид, используемые в настоящем Протоколе. Описание и ссылки для каждой плазмида предоставляются.

2. вирусный вектор производство

Примечание: Все вирусных векторов производятся в биологической капот на BSL2 уровне биобезопасности сдерживания согласно институциональных норм и правил.

  1. Культура сторонником HEK293T клетки в Дульбекко изменение орел среднего дополнена 10% HyClone сыворотки, 100 ед/мл пенициллин стрептомицином и глютамин 2 мм.
  2. День 0: Подготовьте пять 15 см пластины/вирусной подготовки и семян 5.5x106 ячеек в 30 мл среды.
  3. День 1: Transfection
    1. Перед началом трансфекции, подготовьте 100 мл физраствора буфера 2 x HEPES (ОБД):
      NaCl (5 М) 5,6 мл
      HEPES (1 М) 10,0 мл
      Na2HPO4 (0,5 М) 0,3 мл
      Стерильная вода 84,1 мл
      Отрегулируйте к пэ-ашу 7.1 с 37% HCl.
      Примечание: 2 x HBS можно хранить при 4 ° C. Точное рН является чрезвычайно важным для эффективного transfection. Оптимальный рН-7.10 в 7.12.
    2. Удаление средних и добавьте 22,5 мл/тарелка свежих средних 4 ч до transfection.
    3. Transfect HEK293T клетки с передачи плазмида, плазмида pMD.Lg/pRRE.D64VInt упаковка, конверт кодирования плазмида pMD2.G и pRSV-Rev (Таблица 1) согласно следующей суммы/пластину:
      Передача плазмида 25.00 мкг
      pMD.Lg/pRRE.D64VInt 16.25 мкг
      pMD2.G 8,75 мкг
      pRSV-Rev 6,25 мкг
      Примечание: Плазмида ДНК готовятся согласно протоколу CsCl описал Маниатис22 или используя набор очищения плазмиды эндотоксинов бесплатно.
      1. Ресуспензируйте 56,25 мкг ДНК (смесь 4 плазмид) в 1,125 мл стерильной воды и 125 мкл 2,5 М CaCl2 (решение A).
      2. Добавьте 1.250 мл 2 x HBS конические пластиковых пробирок стерильные 15 мл (раствор B).
      3. Добавить решение (1.250 мл) B (1.250 мл) каплям при восходящей с 1 или 2 мл пипетки (трансфекции решения, общий объем 2.500 мл).
      4. Проинкубируйте втечение 20 мин при комнатной температуре (RT).
      5. С помощью P1000 микропипеткой, распространите все решения трансфекции (2.500 мл) в монослое клеток каплям.
    4. Инкубируйте на ночь в инкубатор культуры клеток при 37 ° C, 5% CO2.
  4. День 2: Удалите среды и добавляют 15 мл свежего среды (см. шаг 2.1).
  5. День 3: Сбор и сконцентрировать лентивирусные частиц содержащих супернатант.
    1. Собирать супернатант (~ 70 мл) от всех (n = 5), transfected клеток пластины фильтра через 0.45 мкм PESS фильтра и заполнить 2 polyallomer трубы (1-дюйма x 3,5 дюйма) / вирусный подготовки.
    2. Концентрата вектор частицы ultracentrifugation в 106000 x g для 2,5 ч, при 15 ° C с тормозом.
    3. Сразу же после остановки ultracentrifugation (чтобы избежать ресуспендирования гранул в трубку), осторожно налить супернатант в контейнер, содержащие отбеливатель 10% и приостановить 2 едва видны гранулы в 100 мкл ПБС (+ 1% BSA). Это нормально, как гранулы ясно и очень маленький. Используйте концентрированный вектор свежеприготовленные, или аликвота и хранить вирусных препаратов-80 ° c.
      Предупреждение: Супернатант содержит лентивирусные частицы, которые должны быть тщательно отбеленные прежде чем выбросить в биологически опасных отходов.
  6. Для Титруйте вирусный вектор подготовки, используйте набор immunocapture p24 Gag ВИЧ-1, согласно протоколу производителя.
    Примечание: Чтобы стандартизировать производство вирусный вектор, могут быть использованы на основе липосом реагентов. Тем не менее титр вирусных вектор сильно зависит эффективность трансфекции и чистоты плазмидной ДНК.

3. трансдукции линий клеток человека (например, клетки HeLa)

Примечание: Клетки HeLa культивируемых в среде Дульбекко изменение орла с 10% плода телячьей сыворотки, 100 ед/мл пенициллин стрептомицином и глютамин 2 мм. В таблице 1 перечислены все векторов, используемые в настоящем Протоколе. Представлено описание для каждого вектора. Трансдукция клеток HeLa позволяет проверить регуляцию SB Транспозаза в лучших дозы комбинации двух векторов, IDLV. Вариация IDLV доз могут быть связаны с вектор частицы титрования и целевой тип ячейки.

  1. День 0: Семян 2 x 105 клеток в 3 мл среды для каждой скважины 6-ну плиты. Подготовка 4 скважины.
  2. День 1: Трансдукции НеЬа клетки.
    1. Для каждого условия, разбавить лентивирусные векторы для заключительного тома 1 мл среды (см. примечание выше) в присутствии 10 мкл Полибрен (конечная концентрация 8 мкг/мл):
      Разбавление хорошо # 1: макет transduced клетки (отрицательный контроль).
      Разбавление хорошо # 2: IDLVTKSB вектор (2600 нг p24).
      Разведение для скважин #3, #4: IDLVTKSB вектор (2600 нг p24) + IDLVrtTA2s-вектор м2 (9600 нг p24).
    2. Удалите носитель из каждой скважины, где клетки НеЬа были покрытием в день 0 и добавьте лентивирусные вектор разведений в соответствующий хорошо.
    3. Spinoculate 6-ну пластины в 754 x g за 45 минут на 20-25 ° C, а затем передачи пластину 6-ну инкубатор культуры клеток при 37 ° C и 5% CO2.
    4. После 6 часов замените свежей среды на всех скважинах средних содержащие векторов и добавьте доксициклин 1 мкм в хорошо #4. Положите пластину в инкубатор культуры клеток при 37 ° C за 48 ч.
  3. День 3: Подготовка клетки Пелле извлечение RNA.
    1. Перед отсоединением клетки, приготовьте рабочий раствор трипсина (1 x):
      2,5% трипсина (10 x) 5,0 мл
      500 мм ЭДТА (конечная концентрация = 5 мм) 0.5 мл
      1 x 44,5 PBS мл
    2. Теплый трипсина рабочего раствора при 37 ° C перед использованием. Сохранить рабочий раствор трипсина на 4 ° C.
    3. Удаление средних и вымыть клетки с ПБС. Добавить 0,5 мл подогретым 37 ° C трипсина рабочего раствора в каждой скважине и инкубировать при 37 ° C 7 мин (в инкубатор культуры клеток).
    4. После инкубации, добавить 0,5 мл сыворотки содержащих среднего для каждой скважины для инактивации трипсина и собирать клетки в пластиковых пробирок. Промыть хорошо один раз с 3 мл ПБС и центрифуги суспензию клеток для 5 мин на 240 x g.
    5. Вымыть клетки с 5 мл 1 x PBS, центрифуги для 5 мин на 240 x g и удалить супернатант. Используйте свеже собранных клеток гранулы или хранить при температуре-80 ° C. Извлечение всего РНК из окатышей для выполнения полуколичественного RT-PCR (см. шаг 6).

4. трансдукции начальных клеток человека (например, кератиноциты)

Примечание: Человека первичной кератиноцитов посеяна на смертельно облученного 3T3-J2 клетки (фидер слой)23, рода подарок от Янь Barrandon (EPFL, Лозанна, Швейцария).

  1. Рост клеток 3T3-J2 Швейцарский мыши в Дульбекко изменение орел среде с 10% доноров бычьим сывороточным, 50 ед/мл пенициллин стрептомицином и глютамин 4 мм (средний 3T3).
  2. Расти кератиноциты, покрытие на смертельно облученного 3T3-J2 клетки в cFAD средний, Дульбекко изменение Eagle среднего и ветчиной F12 СМИ смесь (3:1) содержащий плода бычьим сывороточным (10%), пенициллин стрептомицином (1%), глютамин (2%), инсулин (5 мкг/мл), аденин ( 0,18 мм), гидрокортизон (0,4 мкг/мл), токсинного холеры (0.1 Нм) и трийодтиронин (2 Нм).
  3. День 0: Семя 3 x 105 смертельно облученных клеток 3T3-J2, предварительно разводят в 3T3 среднего до конечной концентрации 1 Х 105 клеток/мл в каждую лунку 6-ну пластины. Подготовьте 9 скважин.
  4. День 1: Трансдукции первичного кератиноцитов
    Примечание: Трансдукции кератиноцитов позволяет количественная оценка регуляцию SB Транспозаза в лучшие комбинации двух векторов IDLV (qRT-PCR) и проверки интеграции ГОИ (ГПУП) в клетки-мишени (по cytofluorimetric анализ).
    1. Перед отсоединением клетки, приготовьте рабочий раствор трипсина:
      0,5% трипсина ЭДТА (10 x) 5,0 мл
      500 мм ЭДТА (конечная концентрация = 5 мм) 0.5 мл
      1 x 44,5 PBS мл
    2. Теплый трипсина рабочего раствора при 37 ° C перед использованием. Сохранить рабочий раствор трипсина на 4 ° C.
    3. Чтобы отсоединить subconfluent кератиноцитов в культуре, удалите среднего, вымыть клетки с ПБС и добавить 1 мл раствора рабочего подогретым трипсина в каждой скважине. Инкубируйте при 37 ° C 15 мин в инкубатор культуры клеток.
    4. После инкубации клеток хорошо Ресуспензируйте тщательно и передать пластиковых пробирок, содержащий 2 мл сыворотки, содержащего суспензию клеток среднего (если многие клетки по-прежнему прилагаются, Проинкубируйте дополнительных минут при 37 ° C). Промыть хорошо один раз с 3 мл 1 x PBS или свежие среднего и добавить полоскания решение для пластиковых пробирок с суспензию клеток.
    5. Центрифуга для 5 мин на 580 x g и удалить супернатант.
    6. Вымыть клетки с 5 мл 1 x PBS, центрифуги для 5 мин на 580 x g и удалить супернатант.
    7. В 15 мл полипропиленовые трубы разбавляют кератиноцитов5 1.6x10 в 1 мл cFAD среды, одного разрежения для каждого условия.
    8. Разбавьте лентивирусные векторы в 1 мл cFAD среды в присутствии 20 мкл Полибрен (конечная концентрация 8 мкг/мл на окончательный объем 2 мл):
      Разведениях для скважин #1, #2, #3: макет transduced клетки (отрицательный контроль без векторов).
      Разведениях для скважин #4, #5: IDLVTKSB вектор (13000 нг p24) + IDLVrtTA2s-вектор м2 (48000 нг p24).
      Разведениях для скважин #6, #7, #8, #9: IDLVTKSB вектор (13000 нг p24) + IDLVrtTA2s-вектор м2 (48000 нг p24) + IDLVT2 вектор (9,160 нг p24).
    9. Передают клеток в суспензии путем добавления каждого разведения лентивирусные вектор (1 мл) для соответствующего кератиноцитов подвеска (1.6x105 кератиноцитов в 1 мл).
    10. Удалите носитель из смертельно облученного 3T3-J2 клетки осеменены на день 0 и пластины преобразованы кератиноциты (1.6x105 кератиноцитов в 2 мл) на них. После преобразования и приступить к следующему.
    11. Инкубируйте на 25 ° C в течение 30 минут, а затем перенесите клетки до 37 ° C в инкубатор культуры клеток на 6 ч.
      Примечание: Сделать не spinoculate первичной кератиноцитов, как жизнеспособность и распространения будут сильно затронуты.
    12. После 6 часов добавьте 1 mL cFAD среды в каждой скважине. Добавьте 1 мкм доксициклин (конечная концентрация) в скважинах, #5, #8 и #9. Возвращение клетки до 37 ° C.
  5. День 2: Замените 3 мл KC среды с 10 нг/мл EGF среднего cFAD.
  6. День 3: Trypsinize и вымыть клетки из скважин #1, #4 и #5 как описано раньше (см. 4.4.1 в 4.4.6). Заблокировать ячейки окатышей на-80 ° C для извлечения всего РНК для qRT ПЦР-анализа (см. шаг 7).
  7. Trypsinize клетки от хорошо #2, #6 и #8, как описано в шагах 4.4.1 до 4.4.5 и выполнять cytofluorimetric анализ для экспрессия гена GFP (см. шаг 5).
  8. Держите культуры от скважин #3, #7 и #9 на по крайней мере 3-4 удвоений, достаточных для разбавления ООН комплексной IDLVT2 вектор (5 дней для человека первичной кератиноцитов, покрытие на фидер слой).
  9. День 6: Примерно 5 дней пост трансдукции, trypsinize клетки (см. шаги 4.4.1 до 4.4.5) из скважин, #3, #7 и #9 для выполнения анализа cytofluorimetric экспрессия гена GFP (см. шаг 5).
    Примечание: Эксперимент сроков и электромеханической эффективности являются весьма под влиянием главной ячейки типа и изменчивость собранных образцов.

5. Cytofluorimetric анализ на transduced первичной кератиноцитов

Примечание: Проточный цитометр, настроен с голубой лазер (488 нм), красный лазер (633 нм) и фильтров для обнаружения GFP и APC флуоресценции занятых (см. Таблицу материалов).

  1. Различать кератиноцитов от 3T3-J2 фидер слоя, лейбл преобразованы кератиноцитов отдельностоящий в день 3 и 6 (см. шаги 4,7 и 4,9) день с мыши моноклональные APC-конъюгированных антител анти фидера.
    1. Подготовка 4 мл окрашивания буфер для каждого образца:
      5% FBS 200 МКЛ
      500 мм ЭДТА (конечная концентрация = 2,5 мм) 20 мкл
      PBS 1 x 3780 мкл
    2. Стирайте отдельные клетки с 1 мл окрашивания буфера. Центрифуга для 5 мин на 580 x g и удалить супернатант.
    3. В трубке для приобретения цитометрии потока Ресуспензируйте 5 х 104 клетки в 100 мкл окрашивание буфера и добавить 2 мкл антител против подачи (1:50). Хорошо перемешайте и Инкубируйте 30 мин на льду в темноте.
    4. После 30 мин мыть с 2 мл окрашивания буфера. Центрифуга для 5 мин на 580 x g и удалить супернатант. Ресуспензируйте в 200 мкл окрашивания буфера.
    5. Приобрести APC и GFP сигналов, cytofluorimetric анализ18. Часть клетки GFP+ популяции клеток БТР– указывает transduced кератиноцитов.
      Примечание: При необходимости, исправить цветного образца до проточной цитометрии с 2% параформальдегида в PBS 1 x и хранить при 4 ° C в темноте до запуска.
  2. Анализ потока данных цитометрии путем построения соотношение между процент GFP+клеток на конечную точку (5 дней) и процент GFP+клетки 2 дней после трансдукции, нормализуется до остаточного уровня IDLVT2-преобразованы клетки.

6. полуколичественного RT-PCR

Примечание: Используйте ПЦР тепловая велосипедист.

  1. Извлечение RNA от преобразованы или управления ячейки, используя комплект для очистки РНК, по словам производителя протокол.
    Примечание: Общая РНК может храниться при температуре-80 ° C.
  2. Синтез cDNA в 20 мкл реакции с использованием 100 нг всего РНК и обратная транскриптаза комплекта, по словам производителя протокол.
    Примечание: cDNA может храниться при температуре-20 ° C.
  3. Дизайн праймеров для SB100X, rtTA2s-м2 и GAPDH (уборка гена).
    Предлагаемые проекты:
    SB вперед грунтовка: 5'-GCCACTCAGCAAGGAAGAAG-3'
    SB обратный грунтовка: 5'-GTGTTGGAAGACCCATTTGC-3'
    rtTAM2 вперед грунтовка: 5'- GACGACAAGGAAACTCGCTC-3'
    rtTAM2 обратный грунтовка: 5'-TTACCCGGGAGCATGTCAA-3'
    GAPDH вперед грунтовка: 5'-GACCACAGTCCATGCCATCAC-3'
    GAPDH обратный грунтовка: 5'–CCACCACCCTGTTGCTGTAG–3'
  4. Выполните ПЦР в окончательной реакции объем 50 мкл. В частности Соберите в каждую ПЦР-пробирку следующие реакции:
    cDNA (разбавления 1:5) (из шага 6.2) 1.00 мкл
    Вперед грунтовка (10 мкм сток) 1.00 мкл
    Обратный грунтовка (10 мкм сток) 1.00 мкл
    дНТФ (10 мкм сток) 1.00 мкл
    Буфер (+ MgCl2) (10 x сток) 5.00 мкл
    Taq-полимеразы (5 U/мкл бульон) 0.25 мкл
    Стерильную воду 40,75 мкл
  5. Используйте следующую программу тепловая велосипедист: 1 цикл при 95 ° C за 5 мин затем продолжить с 95 ° C за 30 s, 58 ° C за 30 s и 72 ° C для 30 s для 34 циклов для SB100X, 32 циклов для rtTA2s-M2 и 25 циклов для GAPDH.
  6. Подготовьте гель агарозы 1%. Растворите 1 g агарозы в 100 мл КЭ 1 x (10 x фондовой разводят в стерильной воде), в стакан или настой. Растопите в микроволновке, закрученной каждую минуту до тех пор, пока полностью не растворится агарозы. Охладить расплавленный агарозы до тех пор, пока он достигает приблизительно 50 ° C, а затем добавьте 5 мкл бромид ethidium (10 мг/мл бульона). Налейте растопленное агарозы в собранном каппу с гребнем, для литья гель.
  7. Загрузить образцы (по 10 мкл) на геле агарозы и провести электрофорез.
  8. При желании приобрести картину гель и денситометрических анализ на ПЦР диапазонах.

7. количественного RT-PCR (qRT-PCR)

Примечание: Коммерческая система обнаружения последовательности используется. Праймеры PCR и 6-Карбоксифлуоресцеина (FAM) зонд для Глицеральдегид-3-фосфат дегидрогеназа (GAPDH) приобретаются коммерчески.

  1. Ретро транскрипция шаг 6.2 см.
  2. Используйте программное обеспечение для разработки грунты и зонд конкретных для SB100X.
    Предлагаемая конструкция:
    SB.2 вперед грунтовка: 5'-GAAGAAGCCACTGCTCCAAAA-3',
    SB.2 обратный грунтовка: 5'-CCCCATGTGCAGTTGCAA-3'
    зонд SB FAM: 5'-CATAAGAAAGCCAGACTACGG-3'
  3. Выполните Real-Time PCR в 96-луночных пластины с ПЦР Мастер микс и грунтовки + зонд смесь, в окончательном реакции объем 25 мкл. В частности рассмотрим следующие реакции для каждой скважины:
    cDNA (1:10 разрежения в стерильной воде) 1.00 мкл
    2 x Мастер микс 12,50 мкл
    Праймеры + 20 x зонд смешать 1,25 мкл
    Стерильную воду 10.25 мкл
    Примечание: Выполните все реакции в трех экземплярах. Чтобы избежать ошибок, дозирования, готовят смесь для по крайней мере n + 3 реакций (без cDNA). Алиготе, используя многоканальные пипетки.
  4. Запуск ПЦР в реальном времени, используя следующую программу: 1 цикл на 95 ° C в течение 10 мин, затем 40 циклов 95 ° c 15 s и 60 ° C за 1 мин и удерживайте при 4 ° C.
  5. Анализ данных qRT-PCR, нормализующее относительное выражение (значение RQ) SB100X до уровня GAPDH того же образца cDNA, 2–ΔΔCT количественной, используя программное обеспечение для анализа типичных данных.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

С помощью процедуры представлены здесь, три IDLV векторы нося SB компоненты (SB100X, rtTA2S-transposon м2 и T2-GFP) были упакованы и используется для эффективной доставки и плотно регулировать систему SB в клетках человека. На рисунке 1A показана схема для в vitro трансдукции клеток HeLa, который был проведен для оценки регуляцию SB Транспозаза с лучшими дозы комбинации двух векторов IDLV (сообщается в таблице 2). Регуляци...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Здесь мы описываем широко доступной методологии стабильно интегрировать ГОЙ в геном клетки-мишени, Спящая красавица-опосредованной транспонирования. Хотя для обеспечения синцитиального метод для изменения генома была разработана система SB, эффективности механизма интеграции (Транспозаза и T2 transposon) является обязательным. Таким образом для использования системы SB на вряд ли transfectable Главные ячейки, вирусный доставки компонентов SB проводилась в последние годы10,

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Мы благодарим Zappavigna профессор, Университет Модены и Реджо-Эмилии, Модена, Италия для предоставления нам НКПС PGKrtTA2S-плазмида м2. Мы также признаем профессор з. Ivics (Институт Пауля Ehlrich, Ланген, Германия) и профессор з. Izvak (центр Макса Дельбрюка молекулярной медицины, Берлин, Германия) для pCMVSB100X и pT2/BH плазмид. Эта работа была поддержана Дебра международного и итальянского министерства университетов и исследований.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Дульбекко s модифицированный Eagle' Среда с глюкозой 4,5 г/л без L-глутаминаLonzaBE12-614FКлеточная культуральная среда.
Сыворотка HyClone Fetal Bovine Serum (США), характернаяGE Healthcare Life SciencesSH30071.03Сыворотка, используемая HEK293T культуре клеток для производства лентивирусных частиц.
Пенициллин 10.000 ЕД/мл Стрептомицин 10.000 ЕД/млЛонзаДЭ17-602ЕРеагенты для среды клеточных культур.
L-Glutamine 200mMРеагент LonzaBE17-605Eдля среды для культивирования клеток.
Реагент хлорид натрия (NaCl)Sigma-AldrichS7653для приготовления HBS 2X.
HEPES Buffer, 1M Stock in normal saltLonzaBE17-737EРеагент для приготовления HBS 2X.
Дигидрат гидрофосфата натрия (Na2HPO4· 2H2O), 99,5%Merck106580Реагент для приготовления HBS 2X.
Соляная кислота - реагент ACS 37% (HCl)Sigma-Aldrich320331Реагент для приготовления HBS 2X.
Стерильная вода для инъекцийFreseniusKabi-Реагентдля препарата HBS 2X.
0,45 & микро; m PESS фильтрВатман10462100Фильтры, используемые для удаления клеточного мусора из вирусной надосадочной жидкости.
Полиалломеровские пробирки BeckmanCoulter326823Tubes для концентрирования векторов IDLV методом ультрацентрифугирования.
PBS-1X без Ca, MgLonzaBE17-516FБуфер для промывки клеток и ресуспензии лентивирусных частиц.
Бычий сывороточный альбумин (БСА)Sigma-AldrichA2153(Опционально) Буфер для ресуспензии лентивирусных частиц.
Набор для иммунозахвата ВИЧ-1 Gag p24Perkin ElmerNEK50001KTНабор для титрования частиц IDLV.
ПолибренСигма-Олдрич107689реагент для повышения эффективности трансдукции.
Трипсин (10X) 2,5% в HBSS без Ca, MgGIBCOBE17-160Eреагент для отделения клеток HeLa (стоковый раствор, разбавляется).
Этилендиаминтетрауксусная кислота динатриевая соль (ЭДТА)100938BAnalaR BDHРеагент для приготовления рабочего раствора трипсина.
0,5% Трипсин-ЭДТА, без фенола красного (10X)GIBCO15400-054Реагент для отделения кератиноцитов (исходный раствор, разбавляется).
Донорская бычья сыворотка, новозеландского происхожденияGIBCO16030-074Сыворотка для швейцарской мышиной клеточной культуры 3T3-J2 (питательный слой).
Ветчина s F12 mediaGIBCO21765Среда для кератиноцитов.
Фетальная бычья сывороткаLonzaDE14-801FСыворотка для среды культивирования клеток HeLa.
Фетальная бычья сыворотка, сертифицированная, Австралия ПроисхождениеGIBCO10099-141Сыворотка для среды первичной культуры кератиноцитов человека.
Инсулин из поджелудочной железы крупного рогатого скотаSigma-AldrichI5500Реагенты для роста кератиноцитов.
АденинVWR1152-25Реагенты для роста кератиноцитов.
ГидрокортизонVWR3867-1Реагенты для роста кератиноцитов.
Холерный токсин из Vibrio choleraeSigma-AldrichC8052Реагенты для роста кератиноцитов.
ТрийодтиронинСигма-ОлдричT5516Реагенты для роста кератиноцитов.
Реагенты для роста кератиноцитовHuman EGFAustral BiologicalGF-010-9
Мышиное моноклональное APC-конъюгированное антитело Anti-FeederMiltenyi Biotech130-096-099Для мечения питающего слоя.
RNeasy Plus Mini KitQiagen74134Набор для очистки РНК.
SuperScript III Обратная транскриптазаLife Technologies18080051набор обратной транскриптазы.
Дезоксинуклеотидная смесь, 10 мМ (dNTP)Sigma-AldrichD7295Реагент для полуколичественной ПЦР.
(любой)ДНКазы/РНКазыдля полуколичественной ПЦР и для количественной ОТ-ПЦР.
GoTaq G2 Полимераза горячего стартаPromegaM740BTaq полимераза.
Агароза, для молекулярной биологииSigma-AldrichA9539Реагент для электрофореза в агарозном геле.
UltraPure TBE Buffer, 10XInvitrogen15581028Реагент для электрофореза в агарозном геле, разбавляемый (1X) в ddH2O.
Бромид этидияSigma-AldrichE1510Реагент для электрофореза в агарозном геле.
ДоксициклинСигма-ОлдричD-9891препарат для индуцирования экспрессии транспозазы в клетках HeLa и в кератиноцитах
TaqMan Universal PCR Master MixApplied Biosystem4304437TaqMan Universal PCR Master Mix включая праймеры и зонд.
Пробирка для центрифуги из полипропилена высокой прозрачности объемом 15 мл, коническое дно, с завинчивающейся крышкой с куполообразным уплотнением, стерильныеFalcon Corning352096для сбора клеток и подготовки векторного разведения.
150 мм TC-обработанная чашка для клеточных культур с сеткой 20 мм, стерильнаячашка для клеточных культур Falcon Corning353025чашка для клеточных культур для вирусного производства.
6 Хорошо прозрачная многолуночная клеточная культуральная пластина с плоским дном, обработанная TC, с крышкой, индивидуально упакованная, стерильнаяFalcon Corning353046клеточной культуры для HeLa и первичной трансдукции кератиноцитов человека.
Пробирки для микроцентрифуг Safe-Lock, объем 1,5 млEppendorf0030 120.086Пробирки для приготовления разбавления.
Микроцентрифужные пробирки Safe-Lock, объем 2 млEppendorf0030 120.094Пробирки для приготовления разбавления.
0,2 мл ПЦР-пробирки с плоскими колпачками, РНКаза, ДНКаза, ДНК и ПЦР-ингибиторы безлюбых)пробирок для полуколичественной ПЦР.
MicroAmp Fast Optical 96-луночный реакционный планшет со штрих-кодом, 0,1 млприкладной биосистемы434690696 лунок для qRT-PCR.
Полистирольная трубка с круглым дном объемом 5 мл, без колпачкаBD Falcon352052пробирки для получения проточной цитометрии.
Одноразовые серологические пипетки, полистирол, в индивидуальной упаковке, стерильные (разного объема)(любые)-пипетки для стерильных культур тканей.
Фильтрующие наконечники, стерильные и РНКазы, ДНКазы, ДНК и пирогены (разного объема)(любой)-Фильтрующие наконечники для стерильных тканей и молекулярной биологии.
pH-метр(любой)-Оборудование для измерения pH HBS 2X.
Термоамплификатор ПЦР(любой)-Оборудование для полуколичественной ПЦР.
Оборудование для электрофореза в агарозном геле(любое)-Оборудование для электрофореза в агарозном геле методом полуколичественной ПЦР.
BD FACS Canto II 2LSR 4/2BD-Flowцитометр.
7900HT Быстрая система ПЦР в реальном времениПрикладная биосистема7900HTоборудование для qRT-PCR.
Настольные центрифуги для эффективной обработки образцов в клеточных культурах, охлаждаемые, с ведрами для микропланшетов.(любая)-Центрифуга для обработки клеточных культур и спинокуляции.
Ультрацентрифуга Optima L-90K оснащена ротором SW32TIBeckman Coulter-Ultracentrifugeдля производства лентивирусных частиц.
Оборудование для лабораторий клеточных культур и молекулярной биологии (например, колпак класса II, предназначенный для работы с материалами BSL2, инкубатор для клеточных культур, холодильники и морозильники (+4 ° С, -20 и град; С, -80 °°; В), микропипетки и пипетки).
Защитные лабораторные халаты, перчатки, средства защиты лица в соответствии с правилами и нормами Института, в частности для производства и передачи лентивирусных частиц.
для .Ультрачистый реагент для дистиллированной воды без пробирки пластина (

Ссылки

  1. Mates, L., et al. Molecular evolution of a novel hyperactive Sleeping Beauty transposase enables robust stable gene transfer in vertebrates. Nat Genet. 41 (6), 753-761 (2009).
  2. Maiti, S. N., et al. Sleeping beauty system to redirect T-cell specificity for human applications. J Immunother. 36 (2), 112-123 (2013).
  3. Johnen, S., et al. Sleeping Beauty transposon-mediated transfection of retinal and iris pigment epithelial cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 53 (8), 4787-4796 (2012).
  4. Koso, H., et al. Transposon mutagenesis identifies genes that transform neural stem cells into glioma-initiating cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (44), E2998-E3007 (2012).
  5. Belay, E., et al. Novel hyperactive transposons for genetic modification of induced pluripotent and adult stem cells: a nonviral paradigm for coaxed differentiation. Stem Cells. 28 (10), 1760-1771 (2010).
  6. Grabundzija, I., et al. Sleeping Beauty transposon-based system for cellular reprogramming and targeted gene insertion in induced pluripotent stem cells. Nucleic Acids Res. 41 (3), 1829-1847 (2013).
  7. Kues, W. A., et al. Derivation and characterization of sleeping beauty transposon-mediated porcine induced pluripotent stem cells. Stem Cells Dev. 22 (1), 124-135 (2013).
  8. Turchiano, G., et al. Genomic analysis of Sleeping Beauty transposon integration in human somatic cells. PLoS One. 9 (11), e112712(2014).
  9. Jin, Z., et al. The hyperactive Sleeping Beauty transposase SB100X improves the genetic modification of T cells to express a chimeric antigen receptor. Gene Ther. 18 (9), 849-856 (2011).
  10. Latella, M. C., et al. Correction of Recessive Dystrophic Epidermolysis Bullosa by Transposon-Mediated Integration of COL7A1 in Transplantable Patient-Derived Primary Keratinocytes. J Invest Dermatol. 137 (4), 836-844 (2017).
  11. Zhang, W., et al. Integration profile and safety of an adenovirus hybrid-vector utilizing hyperactive sleeping beauty transposase for somatic integration. PLoS One. 8 (10), e75344(2013).
  12. Zhang, W., et al. Hybrid adeno-associated viral vectors utilizing transposase-mediated somatic integration for stable transgene expression in human cells. PLoS One. 8 (10), e76771(2013).
  13. Turunen, T. A., Laakkonen, J. P., Alasaarela, L., Airenne, K. J., Yla-Herttuala, S. Sleeping Beauty-baculovirus hybrid vectors for long-term gene expression in the eye. J Gene Med. 16 (1-2), 40-53 (2014).
  14. Galla, M., et al. Avoiding cytotoxicity of transposases by dose-controlled mRNA delivery. Nucleic Acids Res. 39 (16), 7147-7160 (2011).
  15. Moldt, B., et al. Comparative genomic integration profiling of Sleeping Beauty transposons mobilized with high efficacy from integrase-defective lentiviral vectors in primary human cells. Mol Ther. 19 (8), 1499-1510 (2011).
  16. Recchia, A., Perani, L., Sartori, D., Olgiati, C., Mavilio, F. Site-specific integration of functional transgenes into the human genome by adeno/AAV hybrid vectors. Mol. Ther. 10, 660-670 (2004).
  17. Urlinger, S., et al. Exploring the sequence space for tetracycline-dependent transcriptional activators: novel mutations yield expanded range and sensitivity. Proc Natl Acad Sci U S A. 97 (14), 7963-7968 (2000).
  18. Cocchiarella, F., et al. Transcriptionally regulated and nontoxic delivery of the hyperactive Sleeping Beauty Transposase. Mol Ther Methods Clin Dev. 3, 16038(2016).
  19. Yanez-Munoz, R. J., et al. Effective gene therapy with nonintegrating lentiviral vectors. Nat Med. 12 (3), 348-353 (2006).
  20. Dull, T., et al. A third-generation lentivirus vector with a conditional packaging system. J Virol. 72 (11), 8463-8471 (1998).
  21. Bak, R. O., Mikkelsen, J. G. Mobilization of DNA transposable elements from lentiviral vectors. Mob Genet Elements. 1 (2), 139-144 (2011).
  22. Green, M. R., Sambrook, J. Molecular Cloning: A laboratory Manual. , 4th edition, (2012).
  23. Dellambra, E., et al. Corrective transduction of human epidermal stem cells in laminin-5-dependent junctional epidermolysis bullosa. Hum Gene Ther. 9, 1359-1370 (1998).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Tet ON
Эффективным в Vitro транспонирования метод транскрипционно регулируемых Спящая красоты системой упакованы в дефектных лентивирусные вектор интеграции
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.